АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Материалы и методы. Для экспериментального повреждения спинного мозга были использованы 18 лабораторных крыс (самок) смешанной линии весом около 250 – 300 г

Прочитайте:
  1. I. Иммунология. Определение, задачи, методы. История развитии иммунологии.
  2. III. Материалы для доаудиторной самостоятельной работы.
  3. V3:Пломбировочные материалы
  4. VІІ. Материалы методического обеспечения занятия.
  5. АБРАЗИВНЫЕ МАТЕРИАЛЫ
  6. Абразивные материалы и инструменты для препарирования зубов. Свойства, применение.
  7. Альгинатные оттискные материалы.
  8. Аналитические эпидемиологические методы.
  9. Арт-терапевтическое пространство и материалы
  10. Аттестационно-педагогические измерительные материалы по патологической анатомии для специальности «педиатрия»

Для экспериментального повреждения спинного мозга были использованы 18 лабораторных крыс (самок) смешанной линии весом около 250 – 300 г. Наркоз осуществлялся комбинированием внутрибрюшинным введением этаминала и эфирной маски. Травма спинного мозга осуществлялась путем его полного поперечного пересечения с иссечением блока спинного мозга на протяжении 3-4 мм (на уровне Т9-Т10 позвонков). Животные были разделены на две группы. В опытной группе дефект спинного мозга заполнялся веществом стерильного денатурированного куриного желтка. В контрольной группе крыс трансплантация не использовалась, и дефект мозга заполнялся свертком крови. После пробуждения регистрировалось наличие полного поперечного повреждения спинного мозга. Умершвление животных производилось в следующие периоды после травмы: 4 часа, 3 суток, 14 суток, 40 суток и 3 месяца.

Спинной мозг фиксировался в 10% растворе забуференного формалина в течение 24 часов с последующей заливкой в парафин. Иммуно-гистохимическое исследование апоптоза методом ISEL проводилось на серийных срезах толщиной 5 мк. Детальное описание методики представлено в работе, опубликованной нами ранее [3].

Для количественной оценки процесса производился подсчет позитивно окрашенных элементов (ядер клеток и апоптозных телец) в 20 полях зрения. Продольные сагиттальные срезы всех препаратов были так же окрашены гематоксилином и эозином.


Дата добавления: 2015-02-05 | Просмотры: 643 | Нарушение авторских прав



1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 | 22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 | 29 | 30 | 31 | 32 | 33 | 34 | 35 | 36 | 37 | 38 | 39 | 40 | 41 |



При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.004 сек.)