АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Правило взятия материала для исследования

Прочитайте:
  1. I. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ РЕЗУЛЬТАТЫ
  2. II. ДАННЫЕ ФИЗИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
  3. III ДАННЫЕ ФИЗИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
  4. III. Данные физических и инструментальных методов исследования.
  5. III. Диагностические исследования и лечебно-профилактические обработки свиней в период карантина.
  6. IV. ДАННЫЕ ЛАБОРАТОРНЫХ И ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
  7. IX. РЕЗУЛЬТАТЫ ЛАБОРАТОРНЫХ И СПЕЦИАЛЬНЫХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
  8. VI. Данные лабораторных, инструментальных методов исследования, их оценка. Осмотр узких специалистов
  9. VI. ЛАБОРАТОРНЫЕ И ИНСРУМЕНТАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.
  10. X. Освенцим: научные исследования

Лабораторное занятие 13

Микробиологическая диагностика сепсиса

Контрольные вопросы

1. Определение понятия «сепсис». Пути проникновения микробов в кровяное русло.

2. Возможные возбудители инфекций кровяного русла.

3. Условия для возникновения сепсиса.

4. Методика исследования крови. Оценка результата посева крови.

5. Схема посева крови при использовании «ручных» автоматизированных систеом.

6. Алгоритм микробиологического обследования больного при сепсисе.

Этиологические агенты инфекций кровяного русла

  Грамотрицательные Грамположительные
  Escherichia coli Staphylococcus aureus
  Klebsiella spp. Staphylococcus epidermidis
  Enterobacter spp. α-гемолитические стрептококки
  Proteus spp. Streptococcus pneumoniae
  Salmonella typhi Enterococcus faecalis
Salmonella spp. Streptococcus pyogenes  
Pseudomonas aeruginosa Listeria monocytogenes  
  Neisseria meningitidis Clostridium perfringens (анаэроб)
  Haemophilus influenzae Peptostreptococcus spp. (анаэробы)
  Bacteroides fragilis (анаэроб) Peptococcus spp. (анаэробы)
  Brucella spp. Candida albicans и др. Candida spp.
  Pseudomonas pseudomallei Cryptococcus neoformans
         

 

Предположительная этиология сепсиса в зависимости от локализации первичного очага

Локализация первичного очага Наиболее вероятные возбудители
Легкие S.pneumonia, Enterobacteriaceae, S.aureus, P.aeruginosa и Acinetobacter spp. (ИВЛ)
Брюшная полость Enterobacteriaceae, Bacteroides spp., Enterococcus spp., Streptococcus spp.
Почки E.coli и др. грамотрицательные бактерии, Enterococcus spp.
Ротоглотка Streptococcus spp., Staphylococcus spp., анаэробы
После спленэктомии S.pneumoniae, H.influenzae
Внутривенный катетер S.epidermidis, S.aureus

 

Метод гемокультур

Правило взятия материала для исследования

• Кровь для посева берут с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с материалами, потенциально опасными на заражение инфекциями, передающимися через кровь (например, использование медперсоналом резиновых перчаток).

• Нельзя брать кровь из внутрисосудистых катетеров, кроме случаев, когда ее получение непосредственно из вены затруднено или предполагается сепсис катетерного происхождения.

• В большинстве случаев острого течения сепсиса достаточно исследовать 2 − 3 образца крови, взятых раздельными венопункциями с интервалом 30 мин до назначения антибиотиков (лучше во время подъема температуры, а не на высоте лихорадки). При подостром эндокардите кровь исследуют в первый день троекратно с интервалом 15 − 20 мин, а при отрицательных результатах через 24 ч проводят еще 3 посева. Если в предшествующие 1 − 2 недели больному проводилась антимикробная терапия, кровь исследуют по 2 раза в течение 3х дней. При лихорадке неясного происхождения кровь исследуют 2 раза в течение 1 ч, при отрицательных результатах − по той же схеме через 24 и 36 ч (как правило, увеличение числа посевов свыше 4х существенно не влияет на результативность анализа).

• Немаловажное значение имеет объем исследуемой крови, так как концентрация микробов при бактериемиях, как правило, низкая, особенно у пациентов, получающих антибиотики. У взрослых обычно требуется от 10 до 30 мл крови на каждую венопункцию, у детей 15 мл крови.

• Для взятия крови необходимо использовать стерильные шприцы или системы для одноразового пользования. Кожу над пунктируемой веной тщательно обрабатывают 70 % этиловым спиртом, затем 1 − 2-й % настойкой йода 30 с (начиная обработку кожи от центра будущего прокола по направлению к периферии). Дают высохнуть обработанному участку кожи, затем производят венопункцию, после чего вновь обрабатывают участок 70 % этиловым спиртом для удаления избытка йода, во избежание раздражения кожи, возникающего у некоторой части пациентов.

• Посев осуществляют во флаконы с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования. При использовании коммерческих сред резиновую пробку флакона дезинфицируют 70 % спиртом и настойкой йода, давая подсохнуть. Затем прокалывают пробку флакона иглой шприца и производят посев крови. Рекомендуемое соотношение объемов крови и среды 1:10.


Дата добавления: 2015-11-26 | Просмотры: 301 | Нарушение авторских прав







При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.003 сек.)