ВКЛЕЙКА
Отсюда начинается список подписей к иллюстрацим на вклейках. ЭГ, 28.01.2000.
Техническое редактирование (кегль и стиль не изменять).
Потом: редактировать последовательности указателя. В текст метки указателя перед последовательностью < "> вставить последовательность <, рис. [такой-то, вставить номер рисунка] на вклейке>
Пример:
Было:
Стало после вставки:
НАДО (окончательный вариант):
После полного окончания редактирования мои пометки от заголовка «ВКЛЕЙКА» до моей подписи (ЭГ, 30.09.00.) ПЕРЕВЕСТИ в СКРЫТЫЙ текст, а «Пример» полностью уничтожить.
ЭГ, 30.09.00.
Рис. 1. Колонии Staphylococcusepidermidis (слева) и Staphylococcusaureus (окружены зоной гемолиза) на КА. Для лучшей визуализации зон гемолиза (отмечены стрелками) фотография сделана в проходящем свете, и колонии выглядят синеватыми вместо беловато-жёлтых.
Рис. 2. Колонии Streptococcuspyogenes на КА. Видны характерные гладкие блестящие полупрозрачные колонии с ровными краями (отмечены стрелками), окружённые зонами гемолиза.
Рис. 3. Колонии зеленящих стрептококков на КА. В культуру внесён диск с пенициллином, ингибирующим их рост.
Рис. 4. Колонии Bacilluscereus (слева) и Bacillusmegaterium на КА. Дифференцирующий признак Bacillus cereus — способность лизировать эритроциты (зоны гемолиза отмечены стрелками). Bacillus megaterium не проявляет гемолитической активности и образует большие плоские колонии.
Рис. 5. Колонии Bacillusanthracis на КА. Хорошо видна зона задержки роста вокруг диска с пенициллином (указан стрелкой).
Рис. 6. Колонии Listeriamonocytogenes на агаре с кровью кролика. Листерии образуют мелкие беловатые полупрозрачные колонии, иногда окружённые зоной гемолиза. На фотографии показаны колонии штамма бактерий, не проявляющих гемолитических свойств.
Рис. 7. Колонии лактобацилл на молочно - печёночном агаре с дрожжевым экстрактом.
Рис 8. Колонии Corynebactriumdiphtheriae (внизу) и Corynebactriumpseudodiphtheriticum (hofmannii) на кровяно - теллуровом агаре. Дифтерийная палочка восстанавливает теллур, в результате чего колонии приобретают серовато-чёрный цвет. Палочка ХЏфманна не восстанавливает теллур и образует колонии бежевого цвета с тёмным центром.
Рис. 9. Колонии Clostridiumperfringens на агаре ЦЌйсслера. После кратковременного контакта с воздухом серовато-белые колонии приобретают оливковый цвет.
Рис. 10. Лецитиназная активность Clostridiumperfringens на желточном агаре (посев бляшками). Под действием бактериальной лецитиназы лецитин куриного желтка образует зоны преципитата вокруг колоний (указаны стрелками).
Рис. 11. Рост Clostridiumperfringens на среде КЋтта – ТарЏцци, проявляющийся помутнением среды и образованием пузырьков газа. В среду внесены кусочки печени для поглощения кислорода.
Рис. 12. «Штормовая реакция». Clostridium perfringens интенсивно сворачивают молоко с образованием крупноячеистого губчатого сгустка уже через 3 ч.
Рис. 13. Колонии Neisseriameningitidis на КА.
Рис. 14. Колонии Branhamellacatarrhalis на КА.
Рис. 15. Пигментообразование Pseudomonasaeruginosa. Бактерии синтезируют пигмент пиоцианин, окрашивающий питательную среду в сине-зелёный цвет.
Рис. 16. Биохимическая активность Shigellaflexneri. Биохимическую активность исследуют на укороченном «пёстром ряду», включающем глюкозу (1), маннит (2), лактозу (3), сахарозу (4), дульцит (5) и мочевину (6). Ферментация углеводов с образованием кислоты приводит к покраснению среды (в среды добавлен индикатор нейтральный красный); газообразование проявляется появлением пузырей газа в поплавках. При гидролизе мочевины происходит защелачивание среды за счёт образования аммиака и её посинение (в пробирку добавлен индикатор бромтимоловый синий). Shigella flexneri ферментируют с образованием кислоты без газа глюкозу (1) и маннит (2).
Рис. 17. Биохимическая активность Salmonellatyphimurium на укороченном «пёстром ряду» (см. также пояснения к рис. 16). Бактерии ферментируют с образованием кислоты и газа глюкозу (1), маннит (2) и дульцит (5).
Рис. 18. Биохимическая активность Proteusmirabilis на укороченном «пёстром ряду» (см. также пояснения к рис. 16). Бактерии ферментируют с образованием кислоты и газа глюкозу (1), а также разлагают мочевину (6).
Рис. 19. Реакция с метиловым красным. Бактерии семейства Enterobacteriaceae дифференцируют по уровню кислотообразования при ферментации глюкозы. Индикатор метиловый красный изменяет окраску среды при значениях рН более 5,0. Отрицательная реакция слева (Klebsiella pneumoniae), положительная справа (Escherichia coli).
Рис. 20. Тест с о - нитрофенил - † - галактопиранозидом (ОНПГ) на способность к замедленной ферментации лактозы. Подобные бактерии лишены пермеаз, облегчающих транспорт лактозы внутрь клетки, но синтезируют †-галактозидазу. ОНПГ является структурным аналогом лактозы, в молекуле которого глюкоза замещена на ОНПГ. Соединение легко проникает в клетку, где †-галактозидаза разлагает бесцветный субстрат на галактозу и ортонитрофенол, окрашивающий среду в жёлтый цвет. Отрицательная реакция слева (Proteus mirabilis), положительная справа (Escherichia coli).
Рис. 21. Тест на утилизацию цитрата выявляет способность бактерий утилизировать цитрат как источник углерода. При положительном результате происходит защелачивание среды и индикатор бромтимоловый синий меняет окраску с жёлто-зелёного на синий. Слева отрицательный (Escherichia coli), справа положительный (Klebsiella pneumoniae) результаты.
Рис. 22. Рост энтеробактерий на агаре КлЋглера. Среда позволяет дифференцировать бактерии семейства Enterobacteriaceae, ферментирующие глюкозу и лактозу и образующие H2S. Бактерии, ферментирующие оба углевода, закисляют среду, что приводит к её пожелтению; виды, ферментирующие только глюкозу, дают пожелтение только в глубине среды (язычок среды остаётся красным). Виды, образующие H2S, дают почернение среды. Появление пузырьков указывает на образование газа при ферментации углеводов. Слева направо: контроль (среда не изменена), Escherichia coli (пожелтение всего столбика среды), Shigella sonnei (пожелтение глубины среды, окраска «язычка» осталась неизменённой), Salmonella enterica (почернение среды и образование пузырьков газа, отмечены стрелкой), Proteus mirabilis (почернение среды).
Рис. 23. Биохимическая активность Escherichiacoli на укороченном «пёстром ряду» (см. также пояснения к рис. 16). Escherichia coli ферментирует с образованием кислоты и газа глюкозу (1), маннит (2) и лактозу (3), а также не разлагает мочевину.
Рис. 24. Колонии Escherichiacoli (справа) и Shigelladysenteriae (слева) на среде ПлЏскирева. Кишечные палочки ферментируют лактозу с образованием кислоты, что приводит к локальному изменению окраски индикатора нейтрального красного, вследствие чего колонии окрашиваются в красный цвет. Шигеллы не ферментируют лактозу и образуют на среде ПлЏскирева беловато-жёлтые колонии.
Рис. 25. Рост сальмонелл на висмут - сульфитном агаре. Salmonella paratyphi A не восстанавливает сероводород и образует коричневато-зеленоватые колонии (справа). Колонии Salmonella paratyphi B, образующих H2S, — коричнево-чёрного цвета (слева).
Рис. 26. Рост Klebsiellapneumoniae на среде ПлЏскирева. Бактерии образуют большие капсулы, что придаёт колониями сочный куполообразный вид. Розовая окраска колоний обусловлена способностью ферментировать лактозу.
Рис. 27. ФенЏмен Диенеса. На твёрдых средах подвижные (Н-) штаммы видов Proteus дают «фенЏмен роения», образуя концентрически расходящиеся круги голубовато-серого цвета. При этом у штаммов с различными Н-Аг зоны роения никогда не сливаются, образуя чёткую демаркационную линию (отмечена стрелками).
Рис. 28. Рост Serratiamarcescens на МПА (через 48 ч культивирования). Первоначально колонии серовато-белые, через 24–48 ч они становятся красными за счёт образования красного пигмента.
Рис. 29. ФенЏмен саттелизма у гемофильных бактерий. Staphylococcus aureus (засеян в центре чашке) синтезирует V-фактор, а также высвобождает Х-фактор из разрушенных эритроцитов (зона гемолиза отмечена стрелками). В близи от зоны роста стафилококка колонии Haemophilus influenzae имеют более крупные размеры.
Рис. 30. Колонии Campylobacterjejuni на шоколадном агаре.
Рис. 31. Аутофлюоресценция колоний Porphyromonasasaccharolytica при длинноволновом УФ - облучении.
Рис. 32. Колонии Mycobacteriumtuberculosis на среде ЛевенштЊйна – ЙЌнсена.
Рис. 33. Ниациновый тест на способность микобактерий синтезировать никотиновую кислоту (ниацин). При положительном результате внесение в культуру 1 мл 5% раствора хлорамина Б и 1 мл 1% раствора цианида калия вызывает окрашивание среды в канареечно-жёлтый цвет. Левая пробирка — контроль.
Рис. 34. Люминесцентная микрофотография альвеолярного макрофага, содержащего дрожжеподобные клетки Histoplasmacapsulatum (отмечены стрелкой).
Рис. 35. Микрофотография культуры Candidaalbicans. Хорошо видны нити псевдомицелия (1) с дрожжеподобными клетками — бластоспорами (2) и более крупными толстостенными хламидиоспорами (3).
Рис. 36. Микрофотография конидиеносцев Aspergillusflavus. Дифференцирующим признаком служит характерное строение конидиеносцев, напоминающих носик лейки (отмечены стрелкой).
Рис. 37. Микрофотография серповидного гаметоцита Plasmodiumfalciparum в мазке периферической крови.
Рис. 38. Микрофотография трофозоита Plasmodiumvivax в мазке периферической крови. Следует обратить внимание на увеличенные и деформированные эритроциты и обильные диффузные скопления пигмента в трофозоите.
Рис. 39. Микрофотография лентовидной формы трофозоита Plasmodiummalariae в мазке периферической крови. Следует обратить внимание на увеличенные и деформированные эритроциты, а также грубые крупнодисперсные скопления пигмента в трофозоите.
Рис. 40. Микрофотография трофозоитов Toxoplasmagondii в цитоплазме макрофагов (окрашенный мазок СМЖ). Видны токсоплазмы характерной формы, напоминающей дольку апельсина, расположенные вблизи ядер макрофагов.
Дата добавления: 2015-09-27 | Просмотры: 532 | Нарушение авторских прав
|