АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Определение концентрации эритроцитов

Прочитайте:
  1. I. Доход от прироста стоимости при реализации ценных бумаг (инвестор самостоятельно несет ответственность за определение и выплату налогов в бюджет Республики Казахстан)
  2. I. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОСНОВНЫХ ТЕРМИНОВ
  3. I. Определение СКФ по клиренсу креатинина
  4. I. Определение, классификация, этиология и
  5. I. Приблизительное определение порога коагуляции
  6. II . Определение степени риска
  7. II. Договорные отношения могущие влиять на определение управомоченного лица
  8. II. Определение степени риска
  9. R агглютинация и разрушение эритроцитов
  10. S-локус – определение белых пятен

Современные электронные счетчики форменных элементов крови по­зволяют автоматизировать процесс подсчета. В основе их работы лежит кон-дуктометрический принцип. Этот принцип заключается в том, что разведен­ная суспензия клеток крови засасывается черезмикроотверстие датчика, при прохождении клетки крови резко возрастает омическое сопротивление, что вызывает импульс напряжения, который подсчитывается электронным бло­ком прибора. Отверстие датчика обычно имеет диаметр 70-100 мкм. Ампли­туда импульса напряжения зависит от объема клетки, что позволяет одно­временно определять распределение клеток по объему.

В настоящее время эти приборы являются полностью роботизирован­ными, то есть способны самостоятельно осуществлять забор крови из про­бирки, ее разведение, гемолиз эритроцитов для подсчета лейкоцитов или тромбоцитов и другие операции.

Фотометрические мегоды, основанные на измерении степени светорас­сеяния, применять не следует, так как при этом возникают значительные не­систематические ошибки, обусловленные влиянием размеров и форм эритро­цитов.

При отсутствии «гематологического робота» для определения концентрации эритроцитов (и лейкоцитов) используют камеру Горяева. Оснащение

1. Пипетка объемом 0,02 мл.

2. Пипетка объемом 4 мл.

3. Пробирка.

4. Камера Горяева.

5. 0,9%-ный раствор хлорида натрия.

6. Микроскоп.

Камера Горяева (рис.9) представляет собой толстое прямоугольное стекло с двумя сетками, выгравированными на его поверхности. Сетки отде­лены друг от друга поперечной канавкой во избежание затекания жидкости. Двумя глубокими продольными канавками сетки отделены от стеклянных прямоугольных пластинок, к которым притирают шлифованное покровное стекло. Плоскость поверхности этих пластинок находится на 0,1 мм выше плоскости, в которой нанесены сетки.

Сетка камеры Горяева образована системой перпендикулярных линий. Сетка состоит из 225 больших квадратов со стороной 1/5 мм, площадью 1/25 мм2 и объемом 1/250 мкл, в том числе 100 из них не разлинованы. 25 больших квадратов разделены каждый на 16 малых со стороной 1/20 мм, площадью 1/400 мм2 и объемом 1/4000 мкл Камеру перед заполнением промывают водой и насухо вытирают. На участок камеры, где нанесены сегки, укладывают обезжиренное покровное стекло. При этом нижняя поверхность камеры находится на средних пальцах обеих рук, два указательных пальца придерживают ее спереди. Двумя боль­шими пальцами притирают покровное стекло, плавно продвигая его по по­верхности прямоугольных пластинок до появления цветных колец Ньютона в местах соприкосновения покровного стекла с поверхностью пластинок каме­ры.

Техника выполнения

1.В пробирку вносят 4 мл раствора хлорида натрия и добавляют 0,02 мл крови, тщательно промывая пипетку разводящей жидкостью. Пере­мешивают. Получают разведение крови 1:200.

2.Заполняют камеру Горяева. Для этого перед подсчетом разведенную кровь в пробирке повторно тщательно перемешивают. Каплю исследуемой жидкости пипеткой помещают перед щелью, образованной покровным стек­лом и пластинкой камеры Горяева с нанесенной сеткой. Под действием ка­пиллярных сил жидкость заполняет камеру. При этом необходимо следить за тем, чтобы в пространстве над соткой не было пузырьков воздуха и избытка жидкости.

3.До начала подсчета оставляют счетную камеру на 1-2 минугы для осаждения форменных элементов.

4.Камеру кладут на столик микроскопа и настраивают его на малое увеличение (объектив 8-9х; окуляр 1 Ох или 15х). Подсчет следует произво­дить при несколько опущенном конденсоре. Хорошую контрастность обес­печивает фазово-контрастное устройство.

5.Эритроциты считают в 5 больших квадратах (5 х 16 = 80 малых), расположенных по диагонали. Подсчету подлежат все эритроциты, лежащие внутри малого квадрата, и те, которые находятся на его верхней и левой гра­нице.

6.Вычисляют количество эритроцитов в 1 литре крови (Э) по формуле:

 

 

N - количество эритроцитов в 5 больших квадратах; 80 - количество малых квадратов, в которых был произведен подсчет; 4000 - множитель, приводящий объем малого квадрата (1/4000 мкл) к объему 1 мкл крови;

200 - поправка на степень разведения крови; 106 - количество микролитров в 1 литре.

Множитель 10 2 в системе СИ принято заменять приставкой "Т" (тэра). На практике число эритроцитов, подсчитанных в 5 больших квадратах, делят на 100 и получают результат в "Т/л".


Дата добавления: 2015-11-02 | Просмотры: 449 | Нарушение авторских прав







При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.003 сек.)