АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

РАЗДЕЛ: « ФИЗИОЛОГИЯ МИКРОБОВ »

Прочитайте:
  1. I. ОБЩАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
  2. III. Физиология органа зрения.
  3. Адам физиологиясы кафедрасы
  4. Адгезия микробов к пломбировочным, реконструктивным и ортопедическим материалам
  5. Анализаторлар физиологиясы.
  6. Анатомия и физиология базальных ганглиев и лимбической системы.
  7. Анатомия и физиология зрительного анализатора
  8. Анатомия и физиология зрительного анализатора.
  9. Анатомия и физиология органа зрения
  10. Анатомия и физиология поджелудочной железы

Занятие 6. Дата ______. Тема: «Принципы культивирования бактерий. Выделение и идентификация чистых культур бактерий. Культивирование анаэробов Дезинфекция, антисептика, стерилизация и асептика. Микрофлора воды и воздуха»

Таблица 4. Методы стерилизации и аппаратура

Стерилизуемый материал Метод стерилизации Режим стерилизации
ü Инфекционный материал Автоклавирование 1,5-2 атм., 131оС, 20-25 мин.
ü Среды, не содержащие веществ, разлагающихся при 120оС ü Бактериальные фильтры Автоклавирование 1 атм., 120оС, 20 мин.
ü Среды, не выдерживающие нагревания до 120оС ü Мембранные фильтры Автоклавирование 0,5 атм., 110оС, 15-30 мин.
ü Среды, не выдерживающие нагревания выше 100оС Дробная стерилизация Текучий пар, 60оС, 3 раза по 30-40 мин., через сутки
ü Свернутая сыворотка, яичные среды Аппарат Коха До 65оС 3 раза по 45 мин., через сутки
ü Питательные среды и вещества, разрушающиеся при нагревании Фильтрование через стерильные бактериальные фильтры: фильтры Зейтца, свечи Шамберлана или Беркефельда Фильтрование
ü Колбы, пробирки, чашки Петри, пипетки и прочая стеклянная посуда и инструменты Печь Пастера 165-170оС, 45 мин.

 

 

Таблица 5. Классификация питательных сред

Группа питательных сред Жидкие Плотные
Основные (простые)
Простые среды Мясо-пептонный бульон (МПБ) Мясо-пептонный агар (МПА)
Специальные (сложные)
А. Сложные специальные ¨ Сахарный МПБ для стрептококков и др. ¨ Сахарный МПА ¨ 5% кровяной агар и др.
Б. Элективныеилиизбирательные (преимущественно растет определенный вид микроорганизмов, другие не растут или растут плохо) ¨ 1% щелочная пептонная вода для холерного вибриона ¨ 10% желчный бульон для сальмонелл и др. ¨ Желточно-солевой агар (ЖСА) для стафилококков ¨ Свернутая сыворотка для дифтерийной палочки ¨ Кровяной агар с ванкомицином для бактероидов и др.
В. Среды обогащения (всегда жидкие; используются для накопления микробов определенного вида) ¨ Селенитовый бульон для дизентерийной палочки ¨ 10% желчный бульон для сальмонелл и др.     ________
Г. Дифференциально-диагностические (применяются для первичной дифференциации бактерий преимущественно по биохимическим свойствам, а также для идентификации бактерий)   ¨ Среды Гисса (“пестрый ряд” для определения сахаролитической активности бактерий)   ¨ Среда Эндо ¨ Среда Левина ¨ Среда Плоскирева ¨ Среда МакКонки ¨ Среды Гисса (полужидкие) и др.
Д. Хромогенные (всегда плотные; применяются для дифференциации бактерий по культуральным свойствам)   ________   ¨ «УриселектТМ» и др.
Е. Транспортные (для доставки исследуемого материала в лабораторию) ¨ Среда Стюарта и др. ¨ Среда Стюарта (полужидкая) и др.
Синтетические
  -------- ¨ Среда Сотона

Протокол “ВЫДЕЛЕНИЕ И ИДЕНТИФИКАЦИЯ ЧИСТЫХ КУЛЬТУР БАКТЕРИЙ”

(бактериологический метод исследования)

1 ЭТАП. Посев исследуемого материала на чашки Петри с плотной питательной средой (МПА) методом штриха.

Инкубация при 37оС в течение 24 часов.

Примечание 1: в том случае, если в исследуемом материале содержится незначительное количество возбудителя (например, в крови), то его предварительно накапливают путем посева материала в жидкую питательную среду (см. среды обогащения), а затем после инкубации (как правило, при 37оС в течение 18-24 часов) производят пересев на плотную среду.

Примечание 2: выделение и идентификация чистой культуры анаэробов производится в анаэробных условиях.

2 ЭТАП. Идентификация выделенной чистой культуры (чистых культур) по культуральным, морфологическим и тинкториальным свойствам. Для этого проводят:

а) макро- и микроскопическое исследование колоний, выросших на плотной питательной среде (культуральные свойства);

б) приготовление мазка из половины колонии каждого вида и окраску препарата по Граму (морфологические и тинкториальные свойства);

Примечание: микроскопия материала из колоний производится также с целью проверки чистоты культуры.

в) пересев оставшейся части колонии на скошенный агар для накопления выделенной чистой культуры. Инкубация при 37оС в течение 24 часов.

Таблица 6. Схема описания колоний

Размеры Форма Цвет Поверхность Края Консистенция Структура Морфология; Окраска по Граму Предполагаемый возбудитель
                   
                   

ЭТАП.


Дата добавления: 2015-12-15 | Просмотры: 446 | Нарушение авторских прав







При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.004 сек.)