 |
|
АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология |
Схема гемолитического титрования активности системы комплемента1. Разводим исследуемую сыворотку буферным раствором в 10 раз: 1 мл сыворотки = 9 мл буферного раствора 2. Исследуемую сыворотку разливают по пробиркам по схеме, затем уравнивают объемы вероналовым буфером и вносят гемсистему:
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Все пробирки инкубируют при + 37 °С в течение 30 минут, что необходимо для активации классического пути системы комплемента. Затем для остановки реакции все пробирки ставят в холодильник на 10мин. Затем все пробирки центрифугируют при 2000 об./мин. 10 минут. Регистрацию результатов проводят либо визуально, сравнивая цвет супернатанта опытных пробирок со стандартом (контрольное разведение), но лучше - с помощью спектрофотометра (измерение проводят на длине волны поглощения гемоглобина, 412 – 432 нм). Определяют гемолитическую активность системы комплемента, выражая ее в условных единицах СН50. Например, интенсивность окраски супернатанта стандарта наиболее близка к интенсивности окраски супернатанта 5-й опытной пробирки, в которой содержится 0,25 мл сыворотки, тогда – 0.25 мл – это 1 единица СН50, а 1 мл - это х единиц СН50, составив пропорцию, получаем результат: 4 СН50, но так как сыворотка исходно была разведена в 10 раз, то умножаем 4 СН50 ´10 = 40 СН50. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Протокол лабораторной работы | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Задания | Выполнение | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 4. Учет и зарисовка результатов | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 5. Расчет показателей активности классического пути активации системы комплемента | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Лабораторная работа 3. Иммунофенотипирование лимфоцитов периферической крови | ||
| Вопросы к занятию |
| |
| Литература |
| |
| Методический материал Иммунофенотипирование - это установление мембранных маркеров клеток. Мембранные маркеры представляют собой гликопротеиновые, гетеропептидные и др. молекулы, выполняющие различные функции и экспрессируемые на цитоплазматической мембране клеток. В силу высокой степени морфологического сходства разных субпопуляций лимфоцитов их иммунофенотипирование приобретает особую важность, так как лимфоциты разных субпопуляций отличаются экспрессией разных маркеров. В наши дни иммунофенотипирование осуществляется с помощью моноклональных антител, получаемых с помощью особых иммунобиотехнологических методик и специфичных конкретным маркерам. Такие моноклональные антитела при добавлении к суспензии клеток связываются лишь с теми лимфоцитами, которые экспрессируют данный маркер. Для визуализации этого взаимодействия, а значит для отнесения лимфоцита к той или иной субпопуляции, моноклональные антитела ковалентно связывают с флуорохромной меткой. Таким образом, результаты реакции (реакции прямой иммунофлуоресценции) регистрируют по световому сигналу испускаемому клеткой после облучения ее квантами света с определенной длиной волны (длина волны определяется особенностями поглощения флуорохромов). Результаты исследования регистрируют с помощью лазерного проточного цитофлуориметра. Ранее (до середины 80-х годов 20 века) принадлежность лимфоцитов к той или иной субпопуляции лимфоцитов определяли с помощью реакций розеткообразования. Эти реакции отличаются ограниченными возможностями (можно определить лишь небольшой спектр мембранных маркеров), высокой степенью субъективизма (из-за рутинной регистрации - с помощью обычного светового микроскопа), невысокой воспроизводимостью результатов, а также достаточно трудоемкими процедурами подготовки образцов к исследованию. Поэтому реакции розеткообразования имеют преимущественно историческое значение. Феномен розеткообразования заключается адгезии к лимфоциту эритроцитов других видов млекопитающих. Эта адгезия осуществляется вследствие сродства эритроцитов некоторым мембранным рецепторам (маркерам) лимфоцитов. Если к лимфоциту прикрепилось не менее 3 эритроцитов, то такой лимфоцит относят к розеткообразующим. Изначально экспериментальным путем было обнаружено, что Т-лимфоциты способны прикреплять к своей цитоплазматической мембране эритроциты барана. В дальнейшем рецептор к эритроцитам барана был идентифицирован как CD2-маркер. Таким образом, смешивание лимфоцитарной суспензии с суспензией эритроцитов барана дает возможность отличить Т-лимфоциты, экспрессирующие маркер CD2, а данная реакция получила название реакции Е-розеткообразования (Е - эритроцит). Точнее, реакция Е-розеткообразования позволяет дифференцировать субпопуляцию Е-РОК (розеткообразующих клеток). Затем было обнаружено, что В-лимфоциты экспрессируют рецептор к С3-компоненту комплемента (сейчас это CD21). Для его определения (а значит для идентификации субпопуляции В-лимфоцитов) была разработана методика ЕАС-розеткообразования. Данная аббревиатура - "эритроцит - антитело - комплемент" - означает, что на эритроцитах барана или быка создается специальный комплекс. Суспензия эритроцитов обрабатывается антителами к эритроцитам (этот процесс называется сенсибилизацией), а затем - комплементом, получаемым из сыворотки крови морских свинок или других видов животных. Таким образом эритроцит по сути является антигеном, с которым связывается антитело, а этот комплекс в свою очередь способен запускать классический путь активации системы комплемента. Все ингредиенты этой реакции подбираются таким образом, чтобы активация комплемента не проходила полностью (иначе будет разрушен эритроцит), а лишь способствовала бы фиксации С3 на комплексе антиген-антитело. Дальнейшее смешивание суспензии лимфоцитов с суспензией сенсибилизированных антителами и комплементом эритроцитов дает возможность идентификации ЕАС-РОК, являющихся В-лимфоцитами. Реакции розеткообразования дают возможность идентификации только части популяции Т-клеток (не все Т-лимфоциты экспрессируют CD2) и части популяции В-лимфоцитов (CD21 является маркером только зрелых В-лимфоцитов). NK-лимфоциты невозможно определить с помощью реакции розеткообразования. Поэтому при начале работ по иммунофенотипированию количество NK-лимфоцитов определяли по отсутствию меркеров, характерных для Т-лимфоцитов (в Е-РОК), и маркеров В-лимфоцитов (в ЕАС-РОК). Эти клетки долгое время обозначали как 0-лимфоциты. Исследуемый материал: Для проведения реакции розеткообразования нужно изолировать суспензию лимфоцитов из периферической крови. Эту манипуляцию выполняют с помощью градиента плотности фиколл-верографин (фиколл - это полисахарид растительного происхождения, а верографин - ренгеноконтрастное вещество с высокой плотностью) с r = 1,077 г/см2. Разные популяции клеток крови обладают разными физико-химическими характеристиками, включая плавучесть. Наслаивая цельную кровь на градиент плотности при последующем центрифугировании, достигается разделение крови на отдельные клеточные фракции, каждую из которых можно отобрать в отдельную пробирку: на дне пробирки оказывают самые тяжелые клетки - эритроциты, сразу на них располагаются полинуклеарные лейкоциты (нейтрофилы, эозинофилы, базофилы), выше - располагается сам градиент плотности, а над ним - суспензия мононуклеарных лейкоцитов, включая лимфоциты, моноциты в виде кольца, а также - тромбоциты. Кольцо мононуклеаров отбирают в отдельную пробирку, трижды отмывают буферным раствором и приготавливают суспензию лимфоцитов с необходимой концентрацией. Общая схема исследования Условия проведения реакции: 1. Эритроциты барана отмывают три раза и готовят 0,5% суспензию. 2. В пробирке смешивают в равных объемах суспензию выделенных лимфоцитов (2 ´ 106/мл) и эритроцитов барана. 3. Смесь инкубируют при 370С 5 минут. 4. Центрифугируют при 1000 об/мин. в течение 5 минут. 5. Инкубируют при 40С 60 минут (в холодильнике). 6. Фиксируют смесь путем добавления 0,1 мл 0,8% раствора глютарового альдегида. 7. Из полученной смеси готовят мазки, фиксируют их в метаноле или смеси Никифорова и окрашивают по Романовскому-Гимзе. Регистрация результатов: Учет результатов проводится под иммерсионной системой микроскопа с увеличением 10´90. Подсчитывается количество лимфоцитов, фиксирующих на своей поверхности 3 и более эритроцита (на 200 лимфоцитов). Пересчет их на абсолютное число осуществляется по формуле: абсолютное количество лейкоцитов ´ % лимфоцитов´ %Е-РОК | ||
| Протокол лабораторной работы | ||
| Задания | Выполнение | |
| 1. Зарисуйте пробирку с фракционированными популяциями клеток крови. | ||
| 2. Для подтверждения популяционной принадлежности клеток сделайте на предметном стекле препараты, зафиксируйте их и зарисуйте. | ||
| 3. Поставьте реакцию Е-РОК. Зарисуйте Е-РОК | ||
| 4. Проведите микроскопический учет реакции и определите % Е-РОК | ||
| Лабораторная работа 4. Оценка функциональной активности лимфоцитов периферической крови в реакции бластной трансформации. | ||
| Вопросы к занятию | 1. Стадии дифференцировки и пролиферации лимфоцитов. 2. Факторы дифференцировки Т-лимфоцитов. 3. Факторы активации Т-лимфоцитов. 4. Субпопуляции Т-лимфоцитов и их функции. | |
| Литература | 1. Конспект лекций. 2. Ярилин А.А. Основы иммунологии. 1999. стр. 31-51, 278-308. 3. Мурзенок П.П., Пивень Н.В., Зафранская М.М. Общая иммунология. 1998. стр. 58-67 | |
Методический материал
О функциональной активности Т- и В-лимфоцитов можно судить по ответу в реакции бластной трансформации лимфоцитов. Бластная трансформация лимфоцитов – это переход клетки в митотический цикл после воздействия на нее активирующих факторов. Морфологически этот процесс сопровождается значительным увеличением размеров лимфоцита, увеличением его ядра, изменением ядерно-цитоплазменного соотношения. При этом бласттрансформированная клетка начинает пролиферировать, что можно зарегистрировать по скорости синтеза ДНК. Таким образом, один и тот же процесс – ответ лимфоцита на активирующее воздействие – можно регистрировать микроскопически, определяя процент бласттрансформированных клеток (тогда реакция называется реакцией бласттрансформации) или по включению меченых радиоактивным изотопом нуклеотидов, позволяющих оценить скорость синтеза ДНК (в этом случае реакция называется пролиферативным тестом).
Индукторами пролиферативной активности (или бласттрансформации лимфоцитов) могут быть:
1) митогены растительного происхождения – фитогемагглютинин (ФГА), конканавалин А, митоген фитолакки (PWM), связывающиеся через определенные рецепторы лимфоцитов и способствующие их пролиферации. Эти митогены активируют преимущественно Т-лимфоциты, а митоген фитолакки – и Т- и В-лимфоциты,
2) бактериальные полисахариды и липополисахариды (ЛПС), являющиеся тимуснезависимыми антигенами, стимулирующими пролиферацию В-лимфоцитов,
3) специфические антигены, активирующие строго определенные клоны лимфоцитов соответственно Т-клеточному рецептору.
Перечисленные активаторы вносят в суспензию иммунокомпетентных клеток, инкубируют 3-10 суток и определяют уровень пролиферации клеток.
Регистрацию пролиферативной активности осуществляют по включению меченого тритием тимидина или др. методами.
Условия получения лимфоцитов. Для получения лимфоцитов гепаринизированную венозную кровь наслаивают на градиент плотности фиколл-верографин в соотношении фиколл / кровь = 1 / 2 (см. лабораторную работу 3). Иногда реакцию проводят с цельной кровью.
Условия проведения реакции
В необходимый объем исходной полной питательной среды для культивирования лимфоцитов в лабораторных условиях (которая включает RPMI 1640 – синтетическая питательная среда, разработанная специально для культивирования клеток крови человека, эмбриональную телячью сыворотку – источник естественных ростовых факторов и белка для придания оптимального онкотического давления, раствор антибиотиком и антимикотиков для предотвращения развития бактерий и грибов) добавляем митоген в рабочей (оптимальной для достижения митогенного эффекта, определяемого соотношением рецепторов к митогену на лимфоцитах и количеством молекул митогенов в растворе) концентрации.
Рабочая концентрация в лунке ФГА min – 2,5 мкг/мл; ФГА опт – 15 мкг/мл; PWM, ЛПС, КонА – 5 мкг/мл).
В каждую лунку 96-луночной круглодонной платы вносим по 180 мкл среды (исходная среда + митоген), добавляем 20 мкл крови или суспензии лимфоцитов и ресуспендируем. Плату закрываем крышкой и инкубируем в присутствии 5 % СО2 при температуре +37о С в течение 48 часов.
Затем во все лунки вносим по 10 мкл 3Н тимидиновой метки, ресуспензируем и инкубируем при прежних условиях. По включению тимидина можно судить об уровне пролиферативной активности лимфоцитов, т.к. тимидин является одним из необходимых оснований для построения ДНК в ходе пролиферации клеток.
Затем проводим сбор клеток для регистрации включения тимидиновой метки. Эта процедура выполняется с помощью специального прибора - харвестера. Собранные клетки на фильтре помещаю в сцинтилляционную жидкость для регистрации b-излучения.
Регистрация результатов
Учет результатов проводится путем снятия показателей активности на β-счетчике, при этом количество импульсов прямо пропорционально количеству тимидина, включенного в ДНК.
Далее проводим расчет индекса стимуляции по формуле:
ИС= 
Показатели пролиферативной активности
В норме индекс стимуляции составляет для: ФГА min – до 10,
ФГА опт – 20-100,
PWM – 5-10,
ЛПС – 3-5,
спонтанной пролиферации – до 200.
| ||
| Протокол лабораторной работы | ||
| Задания | Выполнение | |
| ||
| ||
| ||
| ||
| Лабораторная работа 5. Количественное определение иммуноглобулинов А, М, G в биологических жидкостях | ||
| Вопросы к занятию | 1. Структура иммуноглобулинов. 2. Характеристика различных классов иммуноглобулинов. 3. Генетический контроль синтеза молекул иммуноглобулинов. | |
| Литература | 1. Конспект лекций. 2. Ярилин А.А. Основы иммунологии. 1999. стр. 169-179. 3. Мурзенок П.П., Пивень Н.В., Зафранская М.М. Общая иммунология. 1998. стр. 79-88. | |
Методический материал
Установление концентрации иммуноглобулинов разных классов в биологических жидкостях (сыворотке крови, слюне и проч.) имеет важное диагностическое и научное значение. Поэтому для количественного определения концентрации Ig G, A, M, E разработаны специальные методы, включая реакцию простой радиальной иммунодиффузии по Манчини.
Эта реакция основана на феномене преципитации, т.е. образовании крупного белкового конгломерата, состоящего из комплексов антиген-антитело, и видимого невооруженным глазом.
Антигеном в данном случае являются собственно иммуноглобулины каждого класса. Т.к. иммуноглобулины (например, человека)– это белки, то для другого вида животных они являются антигеном и при введении в организм индуцируют гуморальный иммунный ответ с синтезом антител. То есть, иммунизируя иммуноглобулинами человека животных (овец, коз или кроликов), можно получить диагностический компонент - антитела к иммуноглобулинам определенных классов человека. Этот диагностический компонент называется антисывороткой к иммуноглобулину человека определенного класса и выпускается специальными предприятиями и лабораториями.
Данный диагностический компонент (антисыворотку к Ig G, например, или к IgA, или к IgM) в определенном количестве (в титре) вносят в агаровый или агарозный гель. Температура геля в этот момент должна быть на уровне + 40 + 43 °С (при более высокой температуре диагностические антитела коагулируют, а при более низкой гель застывает и введенные диагностические антитела не перемешиваются и не распределяются в геле равномерно). Агаровый гель с внесенной диагностической антисывороткой перемешивают и распределяют эту смесь на стеклянных пластинах. Толщина агарового слоя должна составлять 1 мм.
После застывания в агаровом геле с помощью специального пробойника делают лунки диаметром 1,5 – 2 мм, в которые вносят исследуемый материал. Исследуемый материал всасывается в агаровый слой. При наличии в исследуемом образце иммуноглобулинов соответствующего класса происходит реакция взаимодействия антиген (иммунолобулин определяемого класса исследуемого образца) – антитело (диагностическая антисыворотка, или анти Ig определенного класса). В последующем, благодаря особенностям строения молекул Ig, возникает укрупнения комплексов за счет объединения нескольких в единый комплекс, т.е. образование преципитатов. Визуально преципитаты видны невооруженным глазом как мутные зоны на фоне более прозрачного  агарового слоя. Для лучшего контрастирования преципитатов пластины окрашивают красителями, связывающимися с белками. Площадь преципитата соответствует количеству определяемых Ig. Для количественного определения концентрации иммуноглобулинов какого-либо класса необходимо иметь стандартный образец, содержащий известную концентрацию Ig разных классов. Такие стандартные образцы также выпускаются специальными предприятиями и прилагаются к набору диагностических антисывороток. Стандартный образец вносят в ряд лунок, приготовив предварительно разведения образца для получения концентраций, отличающихся друг от друга в 2 раза. Благодаря этому после диффузии получается ряд преципитатов разной площади, что позволяет построить калибровочный график и определить концентрацию иммуноглобулина в исследуемых образцах.
Условия приготовления реагентов
1. Моноспецифические сыворотки, содержащие антитела к иммуноглобулинам А, М, G растворяем в 1 мл стерильного физ. Раствора.
2. 3 % агаровый гель готовят из 6 г сухого агара, растворенного при нагревании на водяной бане в 100 мл дистиллированной воды и в 100 мл веронал-мединалового буфера с последующим добавлением 4 мл 1 % раствора мертиолата в качестве консерванта.
3. Окрашивающую жидкость готовят из 1 г красителя амидо-черный, растворенного в 100 мл ледяной уксусной кислоты с последующим увеличением объема до 1000 мл дистиллированной водой и фильтрованием.
Условия проведения реакции
В подогретый на водяной бане до 40 – 43 о С агар вносим антисыворотку, определив ее объем, исходя из титра, указанного на ампуле. Выливаем агар на подогретое до 30о С предметное стекло и оставляем на 10 минут для застывания смеси. Пробойником вырезаем лунки и выбираем из них гель.
Разводим стандарты. Для определения IgA и IgM используется ряд: цельный стандарт, разведения 1:2, 1:4, 1:8, 1:16. Для IgG используются разведения стандарта 1:4, 1:8, 1:16, 1:32, 1:64.
Разводим исследуемые образцы сыворотки крови. Для определения IgA и IgM разведение сыворотки должно быть 1:4, а для IgG – 1:16. Такие различия связаны с необходимостью соблюдения эквивалентного соотношения антигена и антител в системе и различиями в концентрации иммуноглобулинов разных классов в сыворотке крови.
Вносим в лунки стандартные сыворотки и исследуемые образцы. Оставляем залитые пластины на 24 часа во влажной камере в термостате для осуществления диффузии и образования преципитатов.
Промываем пластины изотоническим раствором хлорида натрия или водой для вымывания несвязавшихся белков, высушиваем и окрашиваем раствором амидо-черного.
Регистрация результатов
На окрашенных пластинах проводят измерение диаметра полученных колец преципитации для разведений стандартной сыворотки и исследуемых препаратов биологических жидкостей. По результатам измерения колец преципитации стандартной сыворотки строят калибровочные кривые для каждого иммуноглобулина, где по оси абсцисс откладывают диаметры колец преципитации в мм, а по оси ординат – известную концентрацию данного иммуноглобулина в мг/мл, содержащуюся в данном разведении сыворотки. Концентрацию иммуноглобулинов в исследуемых препаратах определяют с использованием полученных калибровочных кривых. В последнее время для расчета концентрации Ig используют компьютерные программы.
Концентрация Ig в сыворотке крови (физиологические уровни)
IgM: 0,4 - 2,2 г/л IgA: 0,7-4,0 г/л IgG: 6,0-16,0 г/л IgE: 0,00025 г/л
| ||
| Протокол лабораторной работы | ||
| Задания | Выполнение | |
| ||
| ||
| ||
| ||
| Лабораторная работа 6. Методы диагностики аллергических заболеваний | ||||||||||||||||||||||||||||
| Вопросы к занятию | 1. Классификация аллергенов 2. Аллергия: стадии и фазы. 3. Аллергены, свойства, классификация аллергенов. Пути проникновения в организм 4. Иммунологическая, патохимическая и патофизиологическая фазы стадии разрешения аллергии | |||||||||||||||||||||||||||
| Литература |
| |||||||||||||||||||||||||||
Методический материал
Диагноз аллергического заболевания устанавливается на основании клинических признаков, характерных для аллергии, и лабораторных тестов.
Лабораторные тесты позволяют определить, является ли предполагаемое вещество аллергеном для данного пациента, а также установить механизм аллергии.
Все лабораторные методы по установлению аллергена можно разделить на методы in vivo (выполняются при непосредственном введении аллергена пациенту) и in vitro (у пациента забирают биологический материал, в котором определяют маркеры аллергии).
При постановке тестов in vivo в организм пациента вводят небольшую дозу предполагаемого аллергена и учитывают ответную реакцию на аллерген. Фактически этот подход может спровоцировать приступ аллергии, что ограничивает в ряде ситуаций диагностику. Тесты in vitro позволяют установить наличие антигенспецифических антител класса IgE в крови или другом биологическом материале (моче, бронхоальвеолярном смыве и проч.) и подтвердить наличие аллергии без риска для здоровья пациента. В то же время, тесты in vivo отличает невысокая стоимость и высокая степень достоверности, тогда как аллергодиагностика in vitro требует значительных финансовых затрат, наличия специального оборудования для регистрации реакции.
Тесты, позволяющие выявлять сенсибилизацию к аллергену
Скарификационные кожные пробы. Одновременно можно поставить до 10 кожных проб с различными аллергенами. Проба проводиться на внутренней поверхности предплечья по средней линии после предварительной обработки кожных покровов 70% раствором спирта. Насечки на поверхности кожи наносят на расстоянии 5 см (в строгом соответствии с маркировкой) стерильными скарификаторами, отдельными для каждого. С помощью положительной пробы с гистамином оценивается нормальная реактивность кожных покровов. На 5 см выше проводиться тест с контрольной жидкостью (контроль отрицательной реакции). Аллергены наносятся в соответствии с маркировкой на расстоянии 5см. Капли испытуемых растворов наносят на кожу и в капле стерильным скарификатором, отдельным для каждого аллергена, делают две параллельные царапины длинной до 5 мм. Реакцию немедленного типа определяют через 20 минут (см. Табл.1).
При аллергических заболеваниях кожи пробы ставят на участках, не затронутых повреждением (спине, животе, бедре).
Капельные и аппликационные пробы. Аллергены при аппликационных тестах применяют в чистом виде или в растворах, в концентрациях, не вызывающих раздражения кожи у здоровых людей. При постановке теста на предварительно обработанную 70% спиртом кожу предплечья наносят каплю аллергена (капельная проба) или накладывают кусочек марли размером около 1 см, смоченный раствором аллергена (аппликационная проба), фиксируют ее лейкопластырем и через 24–48 ч оценивают реакцию (измеряют волдырь или гиперемию). Если реакция появляется раньше 24 ч и появляются такие симптомы, как зуд, жжение, отек, местное повышение температуры и др., марлю с аллергеном снимают раньше (при появлении выраженных симптомов реакции).
При отсутствии реакции через 48 ч, проба считается отрицательной.
Табл.1.
Оценка скарификационных и внутрикожных аллергических проб.
Проба уколом (prick-test) – удобный и весьма чувствительный метод определения сенсибилизации. При его проведении используется стандартный набор разового применения, позволяющий сделать укол кожи иглой с ограничителем на глубину 1 мм. Проба уколом осуществляется через каплю испытуемого аллергена, каплю растворителя (для аллергена) и каплю 0,1% раствора гистамина. Расстояние между каплями не менее 2-4см. Максимальная реакция на гистамин считывается через 10 мин, на пыльцовые аллергены через - 15 мин. Реакцию оценивают, так же как и результат скарификационных проб. Внутрикожные пробы. Внутрикожные тесты более чувствительны, чем скарификационные, но менее специфичны. Применяют их, главным образом, для выявления сенсибилизации к аллергенам бактериального и грибкового происхождения. С неинфекционными аллергенами их проводят только в том случае, когда аппликационные или скарификационные тесты отрицательны или сомнительны, а анамнез четко положительный. Обследованию с инфекционными аллергенами подлежат больные с подозрением на инфекционно-аллергическую форму бронхиальной астмы, крапивницы и т.д. Специфическое обследование таких пациентов представляет определенные трудности в связи с тем, что основное заболевание часто имеет непрерывно рецидивирующее течение, а также в связи с наличием множественных очагов хронической инфекции. В нижнюю треть волярной поверхности предплечья на расстоянии 5 см от лучезапястного сустава вводят тест-контрольную жидкость в количестве 0,02 мл, затем отдельными стерильными шприцами туберкулинового типа вводят каждый аллерген в объеме 0,02 мл на расстоянии 5 см один от другого. Результаты реакции немедленного типа регистрируют через 20 мин (см. Табл.1.)
Дата добавления: 2015-02-06 | Просмотры: 854 | Нарушение авторских прав |