Динамика белковой структуры.
Наиболее прямым методом, позволяющим изучать пространственное строение белковых молекул, является рентгеноструктурный анализ. На основании данных рентгеноструктурного анализа белковая молекула представлялась статической системой, в которой неполярные аминокислотные остатки образуют жесткое гидрофобное ядро, приближающееся по свойствам больше к твердому телу, чем к жидкости. Благодаря такой жесткости трудно ожидать заметных изменений конформаций при взаимодействии ферментов с субстратами.
Применение спектральных методов (ИК-спектроскопии, ЯМР, флуоресцентного анализа) для изучения белковых молекул заставило критически оценить результаты рентгеноструктурного анализа. Анализ данных водород-дейтериевого обмена в пептидных группах н динамического тушения флуоресценции триптофанилов внутренних областей интактных белков свидетельствует о несостоятельности статической концепции белковой структуры и позволяет сформулировать представление о динамических свойствах белков. Наблюдаемая внутримолекулярная подвижность, спонтанные флуктуации структуры белков обусловлены различного рода движениями атомов или групп атомов вблизи положения равновесия.
Для белков с известной пространственной структурой Ф. Ричардс с помощью специальных расчетов нашел локальные плотности и сопоставил их с распределением полярных и гидрофобных аминокислотных остатков по внутреннему объему белков. Оказалось, что внутри белка плотность значительно изменяется: есть области высокой плотности (r= 1,4•103 кг•м-3), которым отвечают высоко упорядоченные участки с a-спиралями и b-структурами, и области с низкой плотностью (r=0,5•103 кг•м-3), куда, как правило, попадают гидрофобные аминокислотные остатки. На основании этих данных сделано заключение о неправомочности понятия гидрофобного ядра для глобулярных белков. По-видимому, правильнее говорить о гидрофобных кластерах, где преимущественно локализованы гидрофобные аминокислотные остатки. Участки с малой локальной плотностью (гидрофобные кластеры) могут служить мягкой жидкоподобной прослойкой для относительного смещения плотных упорядоченных структурных доменов. Для разных белков внутренний интерьер значительно варьирует и может иметь подвижную или более жесткую структуру.
Все внутримолекулярные движения в белках можно разбить на два типа: быстрые спонтанные флуктуации, происходящие за время меньше 10-7 с, и медленные движения за время больше 10-7 с.
Быстрая подвижность (t < 10-7 с) имеет локальный характер внутри макромолекул. Для таких движений характерна зависимость t от размера атомных групп, что свидетельствует о наличии диффузионных процессов. Время ориентационной подвижности групп t обратно пропорционально коэффициенту вращательной диффузии Q. С увеличением размера группы t растет пропорционально кубу радиуса группы. Большинство быстрых движений проявляется на поверхности белковой молекулы; частично они вовлекают релаксацию связанной воды.
Для примера приведем времена релаксации некоторых атомных групп. Вращательная релаксация свободных молекул воды имеет t»10-11 – 10-12 с; релаксация связанной воды — 10-8 – 10-9 с; вращательная релаксация боковых групп аминокислот — 10-9 – 10-10 с; равновесные конформационные перестройки на уровне соседних аминокислотных остатков происходят в мили- и микросекундном интервале.
Медленные движения (t > 10-7 с) требуют более масштабных изменений структуры и связаны с перемещением полипептидных цепей или доменов белковых молекул. Например, время жизни фермент-субстратных комплексов занимает интервал от 10-2 до 10-4 с.
Какова физическая природа флуктуации белковых молекул? В настоящее время обсуждаются различные модели динамической структуры белков. Не вызывает сомнений, что атомы в молекуле белка находятся в постоянном движении, и поэтому картина, наблюдаемая при рентгеноструктурном анализе, соответствует некоторой усредненной структуре. Тепловой энергии достаточно, чтобы обеспечить вращательные движения, которые обусловливают атомные флуктуации в молекуле белка. Наиболее быстрые локальные перемещения за 10-13 с связаны с вращением боковых групп вокруг одинарных связей в полипептидной цепи. Эти вращения (на угол от 20° до 60°) практически несогласованны и стерически ограничены соседними группами. Такие локальные перемещения боковых групп напоминают броуновское движение в жидкости.
На протяжении более длительного времени (10-12 – 10-11 с) локальные хаотические движения сменяются скоординированными перемещениями атомных групп. Величина таких движений может давать существенный вклад в суммарные амплитуды флуктуации атомов в молекуле белка, вызывая деформацию структуры белка как целого. Значительные смещения в плотно упакованной структуре белка возможны только в том случае, когда происходит кооперативное смещение соседних атомов. Наибольшие смещения (до 0,2 нм) атомных групп наблюдаются на поверхности белковой глобулы.
Динамическая модель позволяет понять роль небольших флуктуации в функции ферментов. Быстрые конформационные изменения необходимы в фермент-субстратных комплексах для пространственной подгонки функциональных групп в активном центре. На примере алкогольдегидрогеназы печени показано, что крупномасштабным конформационным перестройкам, изменяющим функцию фермента, предшествуют высокочастотные мелкие флуктуации структуры. Алкогольдегидрогеназа состоит из четырех структурных доменов, между которыми расположен активный центр фермента. Доступность субстрата к активному центру регулируется вращением доменов вокруг шарнирного соединения.
С помощью рентгеноструктурного анализа было установлено, что алкогольдегидрогеназа может пребывать в двух конформациях: открытой, с большим зазором между доменами, и закрытой. После завершения химической реакции фермент принимает открытую конформацию и освобождается от продуктов реакции. Спонтанный переход между этими конформациями происходит за более длительное время (10-9 с), чем время локальных флуктуации (10-12 с). Нужно допустить, что осуществление такого относительно медленного крупномасштабного перемещения доменов в ферменте возможно только тогда, когда в результате небольших, достаточно быстрых локальных флуктуации происходит снижение к минимуму энергетического барьера вращения доменов.
Спектральные методы (дифференциальная спектрофотометр, флуоресцентная спектроскопия, ЯМР) являются конформационно-чувствительными и используются для изучения динамики и конформационных перестроек белков.
Дата добавления: 2015-10-11 | Просмотры: 496 | Нарушение авторских прав
|