АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ЛЕПТОСПИРОЗА, КАМПИЛОБАКТЕРИОЗА И ДИЗЕНТЕРИИ СВИНЕЙ. БИОПРЕПАРАТЫ

Цель занятия. Ознакомить студентов с методами лабораторной диагностики лептоспироза, кампилобактериоза и дизентерии свиней, биологическими свойствами возбудителей, биопрепара­тами.

Оборудование и материалы. Пробирки с культурой лептоспир, предметные и покровные стекла, стерильные пастеровские пи­петки, мерные пипетки на 1...2мл, резиновые груши, спирт, микроскопы с темнопольными конденсорами, осветители ОИ-19, пробирки со стерильной дистиллированной водой и физиологи­ческим раствором, пластины из плексигласа с лунками или чис­тые пробирки в штативах, лептоспирозные агглютинирующие сыворотки, антигены для диагностики лептоспироза в РМА, для демонстрации — пробирки с культурой лептоспир (L.bijlexa), таблицы, мазки для люминесцентной микроскопии, МЛ-2, нефлуоресцирующее масло, культуры кампилобактерий в полужид­кой среде, среде Китта—Тароцци и на плотной среде, неокра­шенные мазки с кампилобактериями, таблицы, биопрепараты.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Лептоспироз. Инфекционное природно-очаговое заболевание животных — свиней, крупного рогатого скота, лошадей, овец, коз, оленей, собак, верблюдов, пушных зверей, грызунов, сумчатых и др. Болеет и человек. Птицы к лептоспирозу невосприим­чивы.

У животных болезнь протекает, как правило, бессимптомно, типичные клинические проявления: кратковременная лихорадка, желтуха, геморрагия, гемоглобинурия, аборты.

Возбудитель лептоспироза отнесен к роду Leptospira, который включает в себя два вида: L. interrogans — патогенные лептоспиры и L. biflexa — лептоспиры, обитающие во влажной почве и пре­сных поверхностных водах. Вид патогенных лептоспир представ­лен 183 сероварами, которые по степени антигенного родства объединены в 25 серологических групп. Основными возбудителя­ми лептоспироза у сельскохозяйственных животных считают лептоспиры серогрупп Canicola, Grippotyphosa, Hebdomadis, Pomona, Tarassowi, Icterohaemorrhagiae.

Лабораторная диагностика лептоспироза основана на резуль­татах бактериологического и серологических исследований.

Бактериологическое исследование вклю­чает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале ме­тодом световой и люминесцентной микроскопии, выделение чи­стой культуры посевом на питательные среды и методом биопробы и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим серологическим и патогенным свойствам. Материал для исследования. Кровь берут в период лихорадки на 1...7-е сутки болезни; мочу собирают при естественном мо­чеиспускании в стерильные пробирки. У коров и свиноматок допустимо брать мочу катетером. Абортированный плод дос­тавляют в лабораторию целиком или берут от него желудок с содержимым, сердце, мочевой пузырь, паренхиматозные орга­ны. От трупов крупных животных направляют на исследование сердце, кусочки паренхиматозных органов, почку целиком, транссудат из грудной и брюшной полостей, перикардиальную жидкость, мочевой пузырь с содержимым, спинномозговую жидкость. Трупы мелких животных доставляют в лабораторию целиком.

Пробы материала должны быть исследованы в летнее время в течение 6ч с момента взятия и 10...12ч при хранении материала в охлажденном состоянии; мочу исследуют при температуре 30...40°С в течение 3 ч, при 25...30 °С - 4...5 ч, при 20...25 °С-6...8 ч, при 16...20°С — в течение 10... 12 ч с момента взятия.

Для бактериологического исследования материал предвари­тельно следует подготовить: мочу центрифугируют (при 10 000... 15 000 мин^-1 30 мин), исследуют осадок; из проб органов готовят суспензию в стерильном физиологическом растворе, ис­следуют в нативном состоянии или после центрифугирования.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Лептоспиры разных сероваров не различаются по морфологическим и культу-ральным признакам. Длина лептоспир колеблется от 3 до 30 мкм и более, в среднем 7...15 мкм, ширина 0,06...0,15 мкм. Лептоспи­ры — грамотрицательные бактерии. Поскольку они плохо вос­принимают окраску, их обычно исследуют в неокрашенном со­стоянии. Готовят препарат «раздавленная капля» и изучают мето­дом темнопольной микроскопии при увеличении 40 x 7...10 или 20 х 1,5 х 10, а для более детального изучения — при увеличении 40x10...15 или 40 x 1,5 x 10. В каждой капле просматривают не менее 50 полей зрения. Лептоспиры представляют собой спира­левидные тонкие серебристые нити, концы которых — один или оба — загнуты в виде крючков (рис. 109).

Лептоспиры подвижны. Формы движения: вращательное, прямолинейное, поступательное с одновременным вращением вокруг собственной оси и круговое.

Для люминесцентной микроскопии готовят мазки из того же материала и обрабатывают их флуоресцирующим глобулином для диагностики лептоспироза.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Лептоспиры - факультативные анаэробы, температурный оптимум 28...30°С. Для получения культуры лептоспир исследуемый
материал высевают пастеровской пипеткой по три - пять капель в 5...7 пробирок со специальной питательной жидкой или полужидкой средой. Посевы культивируют при 28...30 °С в течение трех месяцев. Обыч­но рост лептоспир появляется в течение 7...20 сут, иногда их обнаруживают на 3...5-е сутки или через 1...2мес и очень редко — через 2,5...З мес культивирова­ния.

Для выявления роста лептоспир через 3, 5, 7, 10 сут и далее каждые 5 сут культивирования из всех пробирок готовят препа­рат «раздавленная капля» для исследования методом темнопольной микроскопии.

Макроскопически рост лептоспир выражен слабо. При доста­точном накоплении лептоспир после встряхивания пробирки с культурой в среде в проходящем свете заметны муаровые волны, а в спокойном состоянии отмечают легкую опалесценцию. Нали­чие пленки, осадка, помутнения среды свидетельствуют о при­сутствии посторонней микрофлоры, а полная прозрачность сре­ды — об отсутствии роста лептоспир.

Для культивирования лептоспир используют следующие пита­тельные среды.

Среда Ферворта—Вольфа (в модификации С. И. Тарасова): к 900 мл дистиллированной воды добавляют 0,5 г хлорида натрия, 1 г пептона (Дифко), 100 мл маточного раствора фосфатного буфера рН 7,2...7,4. Смесь автоклавируют в колбе при 120 ºС 30 мин. На следующий день дважды фильтруют через бумажный фильтр, разливают в пробирки по 5 мл и вновь автоклавируют при 120 °С 30 мин. В пробирки добавляют по 0,5 мл кроличьей сыворотки и прогревают среду на водяной бане при 56...58 ºС 30 мин.

Среда Любашенко: нехлорированную водопроводную (или ко­лодезную, речную) воду, профильтрованную через бумажный фильтр, стерилизуют в автоклаве при 1 атм 30 мин, охлаждают, устанавливают рН 7,3...7,4, добавляют 5 % кроличьей или барань­ей сыворотки, прогретой при 56 ºС в течение 1 ч. Затем среду пропускают через фильтрующие пластины СФ в фильтре Зейтца и асептически разливают в пробирки. Для контроля стерильнос­ти среды пробирки помещают в термостат при 37 °С на 48 ч.

Можно применять и другие питательные cpeды. На плотных средах (Кокса, ВГНКИ и др.) лептоспиры образуют мелкие коло­нии в виде прозрачных дисков диаметром до 1...2см с хорошо очерченными или размытыми краями или в виде матовых точек диаметром 1...2 мм.

Для серологической идентификации выделенную чистую культуру исследуют в РМА с групповыми агглютинирующими лептоспирозными сыворотками, предварительно разведенными стерильным физиологическим раствором в соотношении 1: 50, 1: 500, 1: 1000, 1: 2000, 1: 4000, 1: 8000, 1: 16 000 и 1: 32 000. Ре­акцию ставят в агглютинационных пластинах (или в пробирках), смешивая 0,1мл сыворотки каждого разведения с 0,1мл выде­ленной (типируемой) 5-, 7-, 10-суточной культуры лептоспир с накоплением 70...100 подвижных микробных клеток. Разведения сыворотки последовательно удваиваются. Пластины (пробирки) выдерживают в термостате при 37 °С 1 ч, затем учитывают ре­зультаты — из каждой лунки (начиная с наибольшего разведе­ния) готовят препараты «раздавленная капля», которые исследу­ют методом темнопольной микроскопии. Реакцию оценивают в крестах: (++++) — 100%-я агглютинация: склеивание лептоспир с образованием скоплений в виде «паучков» (рис. 110), содержа­щих от нескольких клеток до нескольких десятков и даже сотен; свободные концы клеток сохраняют подвижность; (+++) — аг­глютинировано 75% лептоспир; (++) —50%; (+) — агглютини­ровано 25%; (-) —агглютинация отсутствует. РМА считают по­ложительной, если она выражена на четыре, три и два креста. Исследуемую культуру относят к той серологической группе лептоспир, с сывороткой которой она дает реакцию на два...четыре креста до 50...100 % ее титра, указанного на этикетке.

Рис. 110. Реакция микроагглютинации: «паучки» из склеившихся лептоспир

Биопроба. Метод используют для выделения культуры возбу-дителя из исследуемого материала, так как посевом на питательные среды изолировать лептоспиры удается не всегда, а также для установления патогенных свойств чистых культур. Биопробу ставят на золотистых хомячках 20...30-дневного возраста, кроль­чатах-сосунках в возрасте 10...20 дней и 3...5-недельных морских свинках. Исследуемый материал (кровь, моча, суспензия из паренхиматозных органов или аборти­рованного плода и др.) вводят подкожно или внутрибрюшинно хомякам от 0,3...0,5 до 1 мл, крольчатам — 2...3 мл. На каждую пробу материала берут по 2 животных, одного из которых убива­ют на 4...5-й день в период подъема температуры, другого, если животное не погибает,— на 14...16-й день после заражения. Кровь последнего исследуют в реакции микроагглютинации (РМА), начиная с разведения 1: 10, с лептоспирами 13 серологи­ческих групп.

Высевы из органов убитых и павших животных (сердца, пече­ни и почек) делают в 2...3 пробирки из каждого органа. Транссу­дат из грудной и брюшной полостей, перикардиальную жид­кость, содержимое мочевого пузыря исследуют методом темнопольной микроскопии.

Вирулентность выделенной культуры определяют на золотис­тых хомячках или крольчатах, которых заражают внутрибрюшин­но 5...7-дневной культурой, содержащей 70... 100 лептоспир в поле зрения микроскопа. Высоковирулентные культуры лептоспир вы­зывают гибель золотистых хомячков в дозе менее 0,1 мл, средней вирулентности — 0,2...0,4 мл, слабовирулентные — 0,5... 1 мл.

Серологическая диагностика включает в себя постановку реакции микроагглютинации (в качестве антагена используют живые культуры лептоспир определенных серологи­ческих групп) и реакции макроагглютинации (применяют кон­центрированную взвесь лептоспир).

В реакции микроагглютинации сыворотки крови исследуют в разведениях 1:50, 1:250, 1:1250.

Учет реакции: каплю из каждой лунки исследуют методом темнопольной микроскопии при увеличении 20x10 или 20x7x1,5. Агглютинация проявляется в образовании «паучков», содержащих от 3...5 до нескольких десятков лептоспир.

Специфические антитела в сыворотке крови животных в титре 1:50... 1:100 и выше свидетельствуют об инфицированности дан­ной особи лептоспирами и возможном лептоспироносительстве.

По результатам серологических исследований диагноз на лептоспироз считают установленным, а хозяйство неблагополучным по лептоспирозу, если специфические антитела обнаружены в сыворотке крови при однократном исследовании в РМА в титре 1:100 и выше более чем у 25 % обследованных животных, а также при нарастании титра антител в 5 раз и более при повторном ис­следовании через 7...10 дней сыворотки крови в РМА или при обнаружении антител у ранее нереагировавших животных.

Сыворотки животных, дающие положительную реакцию мик­роагглютинации в равных титрах с лептоспирами нескольких се­рологических групп или дающие наиболее высокий титр с лептоспирами, ранее неизвестными в качестве возбудителя лепто­спироза сельскохозяйственных животных, исследуют в реакции иммуноадсорбции.

Для постановки реакции иммуноадсорбции все штаммы леп­тоспир, с которыми данная сыворотка дала положительную реак­цию микроагглютинации, выращивают в 0,5...1-литровых флако­нах в течение 5...7 сут. Затем культуры лептоспир осаждают цент­рифугированием при

10 000 мин^-1 30 мин. Надосадочную жид­кость сливают, а осадок суспендируют в 0,9 мл питательной среды или физиологического раствора. 0,1 мл исследуемой сыво­ротки смешивают с 0,9 мл концентрированного антигена и вы­держивают в течение 48 ч при 1...5 ºС. Отделяют сыворотку цент­рифугированием при 10 000 мин^-1 30 мин. Адсорбированную сы­воротку проверяют в реакции микроагглютинации на наличие остаточных антител к штамму-адсорбенту, а затем исследуют с лептоспирами всех групп, с которыми сыворотка дала положи­тельную реакцию до адсорбции. В результате адсорбции лепто­спиры, являющиеся возбудителем, удаляют из сыворотки антите­ла к лептоспирам всех других серологических групп; гетерологичные типы лептоспир не адсорбируют антитела к штамму-возбу­дителю.

Реакцию макроагглютинации ставят на стекле, на которое на­носят каплю исследуемой сыворотки крови, разведенной в соот­ношении 1: 100, и равное количество антигена, компоненты пе­ремешивают, результат учитывают в проходящем свете. Положи­тельным результатом считают агглютинацию интенсивностью на два креста и выше, сомнительным — на один крест.

Антитела в крови можно обнаружить также методом иммуноферментного анализа.

Биопрепараты. Депонированная поливалентная вакцина против лептоспироза животных ВГНКИ содержит шесть штам­мов лептоспир с наиболее выраженными антигенными и иммуногенными свойствами, относящихся к серогруппам Pomona, Tarassovi, Icterohaemorrhagiae, Canikola, Grippotyphosa, Hebdomadis. Выращенные культуры лептоспир сливают в общую емкость, инактивируют, концентрируют, добавляют адъювант. Вакцину проверяют на стерильность, безвредность и актив­ность (на кроликах).

Поливалентную вакцину против лептоспироза сельскохозяй­ственных и промысловых животных готовят из 7... 10-дневной культуры лептоспир, консервированных 5%-м раствором карбо­ловой кислоты до конечного содержания фенола в вакцине 0,5 %. Вакцину контролируют на стерильность, безвредность и активность (на кроликах).

Поливалентную сыворотку против лептоспироза сельскохо­зяйственных и промысловых животных получают методом ги­периммунизации волов-продуцентов. Антигены для гипериммунизации готовят из производственных штаммов шести серогрупп. Сыворотку консервируют 5%-м раствором фенола, прове­ряют на стерильность, безвредность (на белых мышах и морских свинках) и активность (в реакции микроагглютинации в разведе­ниях от 1:1000 до 1: 100 000).

Антигены для диагностики лептоспироза реакцией макроаг­глютинации готовят из эталонных штаммов лептоспир. Выра­щенные культуры инактивируют формалином, концентрируют, расфасовывают по ампулам и подвергают сублимационному вы­сушиванию. Антигены контролируют на растворимость в физио­логическом растворе, на концентрацию. Активность антигена проверяют в РА на стекле с гомологичной лептоспирозной аг­глютинирующей сывороткой.

Групповые агглютинирующие лептоспирозные сыворотки предназначены для определения серогрупповой принадлежности лептоспир, выделенных из патологического материала, а также лептоспир, используемых в качестве антигенов в реакции микро­агглютинации при серологической диагностике лептоспироза.

Кампилобактериоз (вибриоз). Хроническое заболевание круп­ного рогатого скота, овец, свиней, которое проявляется аборта­ми, задержанием последа, временным бесплодием, вагинитами, метритами, рождением нежизнеспособного потомства. У кур возбудитель вызывает падеж цыплят, снижение яйценоскости несушек и прироста массы у бройлеров, у людей — гастроэнтери­ты, бактериемию, кожные поражения.

Возбудитель кампилобактериоза — бактерии семейства Spirillaceae, род Campylobacter. Основные виды: С. fetus (подвиды С. fetus venerealis и С. fetus fetus), С. jejuni, С. sputorum (подвиды С. sputorum sputorum, С. sputorum bubulus, С. sputorum faecalis) и не­патогенный С. coli (табл. 33). С. fetus sb. fetus вызывает аборты у овец, крупного рогатого скота. С.fetus sb. veneralis — патогенен для крупного рогатого скота. С. jejuni вызывает аборты у овец, энтериты у телят, ягнят и других животных. С. mucosalis патоге­нен для свиней, его выделяют от животных с признаками некро­тического энтерита, локального илеита.

Лабораторная диагностика кампилобактериоза основана на ре­зультатах бактериологического и серологического исследований.

Бактериологическое исследование вклю­чает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале ме­тодом световой микроскопии, выделение чистой культуры посе­вом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим, ферментативным, серологичес­ким свойствам.

Материал для исследования. В лабораторию направляют абор­тированный плод (целиком с плодными оболочками или от круп­ных плодов голову, желудок, легкие, печень); плаценту; слизь из шейки матки, взятую стерильно в первые 3...4 дня после аборта или в период охоты; от быков-производителей — препуциальную слизь и секрет придаточных половых желез; от убитых с диагнос­тической целью животных — матку, влагалище, лимфоузлы тазо­вой области.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Представите­ли рода Campylobacter — грамотрицательные, полиморфные, тон­кие палочки, изогнутые в виде «крыла чайки», запятой, спирали с одним или несколькими завитками или S-образные. Средние размеры (0,5...8) х (0,2...0,8) мкм. Подвижны за счет одного по­лярного жгутика на одном или обоих концах клетки, движение винтообразное; спор и капсул не образуют (рис. 111).

В мазках из патологического материала кампилобактерии об­наруживают в виде «крыла чайки», запятой или S-образной фор­мы; от животных, подвергавшихся лечению, — в виде длинных спирилл, малоизвитых нитей и мелких кокковидных форм.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Возбуди­тель — микроаэрофил, температурный оптимум 37...38 °С. Для получения культуры кампилобактерии используют полужидкие и плотные питательные среды: плотный 2...3%-й МППА и полу­жидкий 0,2%-й мясо-печеночный пептонный агар (ПЖА), среду Китта—Тароцци без масла, агар Мартена, сафранино-железо-новобиоциновую (СЖН) среду. Для обогащения в питательные сре­ды добавляют 5... 10 % дефибринированной крови крупного рога­того скота, овец, кроликов или сыворотку крови лошади. Куль­тивируют в течение 6...10 сут в микроаэрофильных условиях при замене 10...15% воздуха оксидом углерода (IV). Контаминиро­ванный материал высевают на среду СЖН: полужидкий агар — 985 мл, 2%-й раствор сульфата железа — 5 мл, 0,5%-й водный ра­створ сафранина Т — 5 мл и 0,2%-й водный раствор новобиоци-на — 5 мл. Среду фильтруют через бумажный фильтр, разливают в пробирки и автоклавируют при 115°С 25 мин. Готовая к ис­пользованию среда должна быть розового цвета, рН 6,8. При культивировании на данной среде кампилобактерии ее цвет не изменяется, другой микрофлоры — приобретает ярко-желтую окраску.

Каждую пробу высевают на несколько чашек Петри, растирая шпателем по поверхности среды. Выросшие колонии пересевают на полужидкий кровяной, сывороточный агар или среду Китта— Тароцци для получения чистой культуры.

При первичном выделении на плотной среде кампилобакте­рии образуют через 3...4 сут колонии: гладкие, бесцветные, диа­метром 1 мм или шероховатые, непрозрачные, белые или кремовые до 2 мм в диаметре, могут быть плоские, серые или свет­ло-коричневые с неровными краями, редко растут в виде тон­кого налета. На кровяном агаре гемолиза не дают. При росте на сывороточном бульоне дают слабое помутнение, иногда с обра­зованием незначительного рыхлого осадка, на полужидком ага­ре растут в виде серовато-голубого диска около поверхности среды.

У выделенных культур кампилобактерии изучают фермента­тивную активность, ростовые потребности и на основании полу­ченных данных идентифицируют их на уровне вида, подвида, биовара (см. табл. 33).

Для серологической идентификации кампилобактерии выпус­кают агглютинирующие и люминесцирующие сыворотки против С. fetus subsp. fetus (так называемый Первый тип), С. fetus subsp. venerealis (Второй тип), С. sputorum subsp. bubulus (Третий тип).

Для ориентировочной идентификации выделенных культур ставят РА на стекле, используя указанные сыворотки, разведен­ные 1:50.

Для окончательной серологической идентификации кампило­бактерии ставят пробирочную РА: готовят последовательные раз­ведения каждой из трех моноспецифических сывороток в 3%-м растворе хлорида натрия, содержащем 0,3 % формалина, — 1: 25, 1: 50, 1: 100, 1: 200. Затем в каждую пробирку с указанными раз­ведениями моноспецифических сывороток добавляют по 0,5 мл исследуемой суспензии вибрионов (концентрация 1 • 10⁹).

После внесения компонентов пробирки тщательно встряхива­ют и помещают в термостат при 37 ºС до следующего дня. Затем их выдерживают З...4ч при комнатной температуре и учитывают результаты реакции.

При положительной реакции с моноспецифической сыворот­кой одного типа и отрицательной— с моноспецифическими сы­воротками остальных двух типов исследуемый штамм относят к тому типу, с которым получен положительный результат.

При получении положительной реакции с двумя моноспеци­фическими сыворотками (что может быть при выделении ати­пичных или диссоциированных штаммов) опыт повторяют с обеими моноспецифическими сыворотками, агглютинировавшими исследуемую суспензию вибрионов, применяя более высокие разведения, чтобы определить титр каждой сыворотки. Типовую принадлежность исследуемого штамма устанавливают по той мо­носпецифической сыворотке, которая агглютинирует микробную суспензию в более высоком титре.

Для идентификации возбудителей кампилобактериоза в реак­ции иммунофлуоресценции используют как чистые, так и сме­шанные культуры, выращенные на общепринятых питательных средах.

Биопроба. Нативным материалом или выделенной культурой заражают беременных морских свинок внутрибрюшинно или во влагалище с последующим исследованием абортированных плодов. Если в течение 10... 12 сут аборта не наступает, морских сви­нок убивают и исследуют содержимое полости матки и плоды. При необходимости биопробу ставят на беременных телках и ов­цах, заражая их подкожно или перорально. Животные абортиру­ют, при отсутствии аборта их убивают с диагностической целью.

Серологическая диагностика кампилобакте­риоза у коров основана на результатах реакции агглютинации с вагинальной слизью (РАВС), а у овец — РА с сывороткой крови.

Слизь берут марлевым тампоном, который помещают в про­бирку с 5 мл формалинизированного 3%-го раствора хлорида на­трия. Выдерживают при температуре 1...4°С 12...14ч. Тампон от­жимают, жидкость центрифугируют при 2500...3000 мин^-1 30 мин.

После центрифугирования реакцию ставят с экстрактом ваги­нальной слизи в четырех разведениях (табл. 34). Для приготовле­ния кампилобактериозного антигена исходную концентрирован­ную суспензию бактерий разводят физиологическим раствором, содержащим 0,3 % формалина, в соотношении 1: 10.

Наряду с исследуемыми пробами материала ставят контроли антигена: 1) контроль антигена (проверка самоагглютинации): в пробирку наливают 0,5 мл антигена в рабочем разведении и до­бавляют 0,5 мл 3%-го формалинизированного раствора хлорида натрия; 2) контроль активности антигена: в каждую пробирку с разведенной агглютинирующей кампилобактериозной сывороткой Первого типа добавляют по 0,5 мл антигена; 3) контроль спе­цифичности антигена: в две пробирки, содержащие по 0,5 мл нормальной сыворотки в разведениях 1: 100 и 1: 200, добавляют по 0,5 мл антигена. Все пробирки встряхивают и далее поступают с ними так же, как с опытными.

Вначале учитывают результаты контроля антигена. Отрица­тельная реакция в первом и третьем контролях при положитель­ной во втором свидетельствует о правильности постановки реак­ции.

Учет результатов: 1) положительная — реакция хорошо выра­жена (на три-четыре креста) во всех пробирках или только в 1-й и 2-й; 2) сомнительная — агглютинация на один-два креста в 1-й и во 2-й пробирках; 3) отрицательная — отсутствие агглютинации во всех пробирках.

У больных овец для исследования берут сыворотку крови, раз­водят ее в 100, 200 и 400 раз. Результат считают положительным, если исследуемая сыворотка дает положительную реакцию агглютинации в разведении 1: 200 и выше на четыре или три креста, со­мнительным — на четыре или три креста в разведении 1:100 либо на два или один крест в разведении 1:200, отрицательным — если агглютинация отсутствует или ее оценивают не выше чем на два или один крест в разведении 1: 100. Сыворотку овец, вакциниро­ванных против кампилобактериоза, серологически не исследуют.

Кроме реакции агглютинации сыворотку животных можно ис­следовать в РСК, реакции иммунофлуоресценции или реакции иммунной сорбции антител, меченных ферментами. Разработа­ны экспериментальные партии диагностикумов для выявления антител в РНГА, пригодные для диагностики кампилобактериозов животных и человека.

Биопрепараты. Эмульсинвакцина инактивированная против кампилобактериоза овец.

Кампилобактериозные агглютинирующие сыворотки готовят методом гипериммунизации кроликов суспензией живых микро­бов кампилобактерии. Полученные сыворотки после адсорбции групповых антител проверяют на активность, специфичность и стерильность.

Кампилобактериозный антиген представляет собой инактивированную 0,3%-м раствором формалина суспензию кампилобак­терии Первого типа (концентрация микробных клеток 10¹⁰/мл). Предназначен для диагностики кампилобактериоза у крупного рогатого скота.

Дизентерия свиней. Инфекционная болезнь. Характеризуется геморрагическим поносом и некротическим поражением толсто­го отдела-кишечника. Восприимчивы свиньи всех возрастов, но чаще болеет молодняк в возрасте 1...6мес.

Возбудитель дизентерии свиней — спирохета Serpulina hyodysenteriae, род Serpulina.

Лабораторная диагностика дизентерии свиней основана на ре­зультатах бактериологического исследования.

Бактериологическое исследование вклю­чает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале ме­тодом световой микроскопии (основной метод), а также выделе­ние чистой культуры посевом на питательные среды и идентифи­кацию возбудителя по культурально-морфологическим и фер­ментативным свойствам.

Материал для исследования. Для прижизненной диагностики в лабораторию направляют фекалии, для посмертной — слизистую оболочку большой ободочной кишки, которую соскабливают после удаления из кишечника содержимого и промывания водой. От трупов материал берут не позднее чем через 2 ч после гибели животного, материал должен быть исследован в течение 2...4 ч, а при хранении на холоде — 6...8 ч.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Поскольку культивирование возбудителя весьма трудоемко, микроскопичес­кое исследование — это основной метод диагностики, доступный практическим лабораториям. Поступивший материал исследуют методом темнопольной, фазово-контрастной или обычной све­товой микроскопии.

При темнопольной микроскопии препарат «раздавленная капля» исследуют в водной иммерсии с объективом х 40 и окуля­рами х 7 или х 10. Возбудитель в этом случае виден как спирале­видная клетка с 3...12 правильными витками размером (7...9) х (0,3...0,4) мкм, движущаяся змеевидно-поступательно. При температуре 22 °С наблюдают изгибание и скользящее дви­жение клетки, а при 37...42 ºС клетка движется поступательно. У большинства больных дизентерией свиней в препарате «раздав­ленная капля» в одном поле зрения обнаруживают 5... 10 спиро­хет и более. В окрашенных по Граму препаратах видны грамотрицательные извитые клетки со строением, типичным для спи­рохет. Клетки возбудителя хорошо окрашиваются по Романовс­кому—Гимзе, фуксином Пфейффера. Сходные по морфологии с Serpulina hyodysenteriae вибрионы, обитающие в кишечнике, от­личаются тем, что их клетка в 2...4 раза толще, с тупыми конца­ми, движение вращательное вокруг длинной оси.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Возбуди­тель—строгий анаэроб, температурный оптимум 36...38 ºС, при 25 и 30 °С не растет, рН 7,0...7,2. Для первичной изоляции ис­пользуют селективные среды, например следующие.

Кровяной агар со спектомицином: к перевару Хоттингера до­бавляют 0,001 % резазурина (индикатор ОКВП), 0,5 % хлорида на­трия, 0,25 % глюкозы, 1 % пептона, 2 % агара, кипятят, пропуска­ют через среду азот или оксид углерода (IV) в течение 10... 15 мин, устанавливают рН 7,0...7,2, вносят 0,05 % гидрохлорида цистеина. Среду автоклавируют при 110º С 30 мин, охлаждают до 40...45°С, пропуская при этом через среду стерильный обескислороженный газ, после чего вносят 10% дефибринированной крови барана (или крупного рогатого скота) и 400 мкг/мл спектомицина. Среду разливают в атмосфере оксида углерода (IV).

Культивируют также в жидкой или полужидкой среде, содер­жащей сердечно-мозговую вытяжку и 10 % эмбриональной теля­чьей или кроличьей сыворотки. На кровяном агаре через 48...96ч инкубирования при 38 °С вырастают плоские просвечивающие колонии диаметром 0,5...3 мм с зоной бета-гемолиза. В полужид­ком сывороточном агаре возбудитель растет в виде беловатого диффузного облачка ближе к поверхности среды.

После изучения морфологии и культуральных свойств у выде­ленных бактерий исследуют ферментативную активность. Пато­генные для свиней культуры гидролизуют эскулин, не ферменти­руют фруктозу, утилизируют пируват, при сбраживании глюкозы образуют водород, углекислоту, ацетат, бутират; нитрат не вос­станавливают; растут на средах, содержащих 6,5 % хлорида на­трия, но не растут на средах с 1 % глицина.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Из чистой культуры лептоспир приготовить препараты «раз­давленная капля» и изучить их методом темнопольной микро­скопии.

2. Поставить РМА с культурой лептоспир и двумя сыворотка­ми различных антигенных групп в пробирках или на пластинах, учесть результат реакции, начиная с наибольшего разведения сыворотки. Из пробирки (лунки) каждого разведения сыворотки приготовить препарат «раздавленная капля» и изучить методом темнопольной микроскопии.

3. Окрасить мазки с кампилобактериями по Граму, промикроскопировать, зарисовать.

4. Изучить характер роста кампилобактерии на питательных средах и сделать заключение о морфологических и тинкториаль-ных свойствах возбудителя.

Контрольные вопросы

1. В чем заключаются особенности микроскопирования лептоспир?

2. Каковы морфологические и культуральные свойства лептоспир?

3. Каковы правила взятия патологического материала для исследования на лептоспироз?

4. Какие методы применяют для серологической диагностики лептоспироза?

5. Как ставят биопробу при лептоспирозе?

6. Каковы морфологические и тинкториальные свойства возбудителя кампилобактериоза?

7. В чем состоит серологическая диагностика кампилобактериоза?

8. Каковы морфологические особенности возбудителя дизентерии свиней?

Дата добавления: 2014-12-12 | Просмотры: 2874 | Нарушение авторских прав