ЗАНЯТИЕ 2. Подготовка вируссодержащего материала для транспортировки и заражения лабораторных объектов
ОГЛАВЛЕНИЕ
ЗАНЯТИЕ 1. Структура вирусологической лаборатории и правила работы в ней - 4ст
ЗАНЯТИЕ 2. Подготовка вируссодержащего материала для транспортировки и заражения лабораторных объектов -7ст
ЗАНЯТИЕ 3. Методы лабораторной диагностики вирусных инфекций. Микроскопический метод исследования -14 ст
ЗАНЯТИЕ 4. Люминесцентная микроскопия. Метод флуорохромирования -17ст
ЗАНЯТИЕ 5. Люминесцентная микроскопия. Метод иммунофлуоресценции -20ст
ЗАНЯТИЕ 6. Электронная микроскопия вирусов -23ст
ЗАНЯТИЕ 7. Культивирование вирусов путем заражения развивающихся куриных эмбрионов (РКЭ) -25ст
ЗАНЯТИЕ 8. Вскрытие куриных эмбрионов. -29ст
ЗАНЯТИЕ 9. Принципы культивирования вирусов в культуре клеток -31ст
ЗАНЯТИЕ 10. Получение первично-трипсинизированных культур клеток из развивающихся куриных эмбрионов -36ст
ЗАНЯТИЕ 11. Перевиваемые культуры клеток -38ст
ЗАНЯТИЕ 12. Заражение, культивирование вирусов в организме лабораторных животных и выделение. –42ст
ЗАНЯТИЕ 13. Принципы титрования вирусов и антисывороток -48ст
Литература -53ст
ЗАНЯТИЕ 1. Структура вирусологической лаборатории и правила работы в ней.
Цель занятия: ознакомиться с планировкой и оборудованием вирусологической лаборатории, ее документацией, правилами и техникой безопасности при работе с вируссодержащим материалом.
Оборудование и материалы: помещение вирусологической лаборатории, подготовленное в соответствии с установленными правилами и нормами, электронный и люминесцентный микроскопы, центрифуги, журнал регистрации студентов, получивших инструктаж по технике безопасности при работе в вирусологической лаборатории, документация лаборатории.
Краткие теоретические сведения
Вирусологическая лаборатория используется для проведения лабораторных диагностических исследований на вирусные инфекции, контроля состояния и напряженности специфического постинфекционного и поствакцинального противовирусного иммунитета, и участия в профилактических мероприятий с вирусными заболеваниями.
Структура вирусологической лаборатории зависит от задач и особенносте её деятельности. Как правило, вирусологические лаборатории, независимо от специализации, должны размещаться в чистых светлых помещениях с необходимым оборудованием и мебелью. Их следует изолировать от других лабораторий (бактериологических, токсикологическтх и др). Независимо от характера выполняемой работы в них необходимо поддерживать рабочую чистоту. Кроме ежедневной обычной уборки, помещения периодически обрабатывают растворами дезинфицирующих веществ (карболовой кислоты, лизола, хлорной извести, хлорамина и т.п.) и подвергают ультрафиолетовому облучению. Комнаты, предназначенные для работы с вирусами, должны быть хорошо освещены и состоять из двух отделений, разобщенных стеклянной перегородкой: предбоксника и бокса. В боксах, организованных по типу операционных, над рабочим столом, покрытым пластиком или нержавеющей сталью, на расстоянии 50-70 см от поверхности устанавливают бактерицидные лампы БУВ-30 или БУВ-60 для уничтожения инфекционных агентов. Дополнительно в боксе желательно иметь передвижную кварцевую лампу типа ПРК-4. У входа в бокс должен лежать коврик, пропитанный дезраствором. В предбокснике в биксах должны быть сменные тапочки или сменная обувь, стерильные халаты, шапочки, маски, которые одевают перед работой.
Боксы и предбоксники, кроме ежедневной влажной дезинфекционной обработки, необходимо облучать бактерицидными лампами в течение 30-40 мин перед началом и после работы.. В предбокснике должны быть стерильные халаты, тапочки, маски, которые надевают перед работой, а так же можно размещать дополнительное оборудование.: термостаты, холодильники, центрифуги лабораторные, микроскопы, водяную баню и пр.
В боксе, кроме рабочих столов и стульев, должно быть все необходимое для работы: стерилизаторы для инструментов, банки с дезрастворами для отработанных пипеток, бак с дезраствором для сбора отработанных материалов, баночки со спиртом, йодом, штативы для пробирок, пробирки с бульоном для проверки бактериального загрязнения, стерильные пипетки, ступки и т.д.
Потолок и стены лабораторных комнат покрывают масляной краской (стены на 1,5 м от пола можно выложить кафельными плитками), пол — линолеумом или кафельными плитками. Лаборатория должна иметь 5-6 комнат, отдельный вход для сотрудников и для посетителей с тамбуром, обязателен гардероб и душевая.
Регистрация поступающего на исследование патологического материала проводят в приемной. Пол в ней должен быть бетонный, стены покрыты масляной краской или керамической плиткой, окна заделаны железными решетками. При входе необходимо положить коврик с дезинфицирующим раствором. В приемной размещают несколько столов, обитых оцинкованной жестью, бак с дезинфицирующим раствором (чаще всего с 3% раствором хлорамина или 5%-ным раствором фенола).
В комнате для предварительной обработки материала проводят вскрытие трупов и отбор материала для дальнейшего исследования. В ней должны быть бокс с предбоксником, соединенный окном с виварием для инфицированных животных. В боксе разбирают поступившие пробы, готовят и фиксируют мазки — отпечатки и т.д. В комнате также должны быть столы для вскрытия трупов и обработки материала. На столе для вскрытия трупов помещают инструментарий (ножницы, пинцеты, скальпели, корнцанги), эмалированный тазик, сосуды с дезинфицирующими растворами, стерильную посуду для сбора материала.
Комнату для вирусологических исследований оборудуют: термостатами, холодильниками, центрифугами, весами различных типов, электроплитками, фильтрами, насосами, водяными банями, электромагнитными мешалками и т д.. Лабораторию снабжают в достаточном количестве биксами, фильтрами Зейтца, ящиками для хранения сред, эмалированной и стеклянной посудой — матрацами, флаконами, колбами разных объемов, градуированными пипетками, микропипетками; цилиндрами и стаканами, пробирками серологическими, бактериологическими и центрифужными, ампулами и резиновыми пробками разных размеров, металлическими штативами для пробирок, карандашами по стеклу, фильтровальной бумагой, лейкопластырем и т.п.
На столах для определенных операций за каждым работающим закрепляют рабочее место. Здесь размещают нужную аппаратуру, соответствующие дезинфицирующие средства, краски, реактивы. На операционном столе необходимы микроскоп, набор инструментов (пинцеты, ножницы, скальпели и др.), вата, пастеровские пипетки, стерильные и обезжиренные покровные и предметные стекла, физраствор. При работе с куриными эмбрионами должны быть подставки для яиц, овоскопы, инструменты для вскрытия (ножницы, глазные пинцеты).
В автоклавной необходимо иметь два автоклава, для чистых материалов – где стерилизуют посуду, питательные среды, инструменты, обезвреживают заразный материал - и для инфицированных, бак для сбора инфицированного материала. Допускается наличие сушильных шкафов, дистилляторов, столов и шкафов для стерильной посуды.
Моечная предназначена для мытья посуды и приборов. В ней должна быть машина для посуды и белья, сушильные шкафы и т.д. Посуду, пипетки и инструменты, загрязненные инфицированным материалом, моют только после стерилизации.
Виварием называется помещение, используемое для выращивания и содержания лабораторных животных. В виварии имеется карантинное отделение, комнаты для экспериментальных и здоровых животных, мытья и дезинфекции клеток, инвентаря и спецодежды, кухня для приготовления пищи, кладовая, фуражная, трупосжигательная печь и др. Все помещения вивария должны быть изолированы друг от друга и иметь самостоятельные входы с дезковриками. Кроме того, они должны быть непроницаемыми для грызунов и различных насекомых. Виварий должен быть теплым, светлым (с источником дневного света) и сухим. В холодное время года здесь поддерживают температуру 12-20 °С.
Лабораторных животных содержат в клетках. В одной клетке может быть 1-2 кролика, 5-6 морских свинок, 8-10 крыс, 15-20 мышей. На каждой клетке с животными вывешивают паспорт, где отмечают дату их поступления в виварий, массу, в паспорте на клетках с подопытными животными дополнительно отмечают дату заражения и вид вируссодержащего материала.
Чистку клеток и вивария делают ежедневно, используя мыльно-карболовый раствор. После уборки тщательно моют руки и обрабатывают их 2%-ным раствором хлорамина.
Сотрудники вирусологической лаборатории обязаны соблюдать следующие правила, предупреждающие попадание бактерий и плесневых грибов в исследуемый материал и возможность внутрилабораторных заражений персонале и распространения инфекции.
1. Работать разрешается в специальной одежде — халате и шапочке. При работе с особо опасным материалом дополнительно одевают резиновые перчатки, марлевую маску и защитные очки. В боксе работают в стерильном халате, маске, шапочке, при необходимости надевают резиновые перчатки и очки. Обязательно меняют обувь. В виварии во время мытья посуды и уборки на халат надевают передники, а на ноги — резиновые сапоги.
2. Запрещается выходить за пределы лаборатории в халатах или надевать верхнюю одежду на халат.
3. В лаборатории запрещается курить и принимать пищу.
4. Не допускаются хождение, разговоры во время работы.
5. Весь материал, поступающий в лабораторию на анализ, должен рассматриваться как инфицированный.
6. При распаковке материала необходимо соблюдать осторожность. Банки следует обтирать снаружи дезинфицирующим раствором и старить их на подносы или кюветы.
7. Переливание жидкостей, содержащих вирусы, производят над сосудом, наполненным дезраствором.
8. В случае попадания заразного материала на халат, руки, стол, обувь и т.д. надо сообщить об этом заведующему лабораторией (в учебных заведениях — преподавателю) и немедленно произвести под его контролем дезинфекцию. При подозрении на заражение необходимо обратиться к врачу.
9. Зараженный материал подлежит обязательному уничтожению (автоклавирование, сжигание), по возможности в тот же день. Инструменты, а также поверхность рабочего стола после работы сразу же дезинфицируют.
10. При работе с пипетками для разлива жидкого инфицированного материала пользуются резиновыми баллончиками (грушами) небольшого объема.
11. В журнале регистрации ежедневно делают записи относительно использованного заразного материала и его уничтожения.
12. Запрещается выносить из лаборатории оборудование, инвентарь, материалы и т.д. без предварительной дезинфекции их на месте.
13. Пипетки, предметные и покровные стекла и другую посуду, бывшую в употреблении, обеззараживают, погружая в 5%-ный раствор лизола, фенола или серной кислоты, которые всегда должны быть на столах.
14. Запрещается оставлять на рабочих столах бактериологические чашки, пробирки и другую посуду с заразным материалом.
15. По окончании работы рабочее место приводят в порядок и тщательно дезинфицируют. Вируссодержащий материал, необходимый для дальнейшей работы, ставят на хранение в сейф-холодильник и опечатывают. Руки тщательно дезинфицируют мыльным спиртом, 70°-ным спиртом и др. Лабораторию закрывают и опечатывают.
Для всех вирусологических лабораторий установлен единый порядок обращения с вирусами, предусматривающий правила их хранения, регистрации, передачи от одного сотрудника другому внутри лаборатории и за ее пределы.
Культуру вирусов хранят в холодильнике минус (20... 70 °С) под замком с пломбой или печатью. Все пробирки и пенициллиновые флаконы, закрытые резиновыми пробками, должны иметь этикетки из лейкопластыря с указанием вида вирусов, индивидуального номера штамма и стабилизирующей среды, в которой он находится. Лучшим способом сохранения вирусов является лиофилизация.
В вирусологической лаборатории должна быть следующая документация.
1. Инвентарная книга музейных штаммов вирусов.
2. Журнал учета движения вируссодержащего материала в лаборатории.
3. Журнал учета стерилизации и уничтожения инфицированного материала.
4. Журнал учета зараженных подопытных животных.
5. Журнал вирусологических исследований (экспертиз).
6. Журнал учета выделяемых вирусов.
В ходе самостоятельной работы студентов необходимо
1. Ознакомиться с вирусологической лабораторией кафедры и ее основным оборудованием.
2. Изучить правила работы с вируссодержащим материалом.
Примерный план занятия (2 ч)
1. Объяснение преподавателя.
2. Запись в тетради требований при работе с вирусным материалом и основных правил выполнения этих требований.
3. Роспись в журнале по технике безопасности.
4. Демонстрация: а) лаборатории и ее основного оборудования;
б) организации рабочего места в боксе при работе с вирусами..
5. Самостоятельная работа студентов.
6. Подведение итогов.
7. Задание к следующему занятию.
Методические указания
Занятие можно организовать следующим образом. После объяснения преподавателя и демонстрации (см. п. 4 занятий) студенты должны подготовить рабочее место для работы с вирусным материалом. Для этого они проводят его дезинфекцию раствором хлорамина, ставят на стол сосуд с 2%-ным дезраствором, контейнер для отходов, спиртовку, баночку со стерильной ватой, готовят инструменты (шприц, иглы, пинцет) для стерилизации. Отрабатывают приемы работы с пипеткой и грушей.
Для ознакомления с документацией лаборатории можно использовать ветеринарное законодательство, инструкции о правилах работы в лабораториях.
Вопросы домашнего задания
1.Открытие вирусов и периоды развития вирусологии.
2. Предмет и задачи вирусологии.
3. Взятие, пересылка и сохранение вируссодержащего материала.
4. Подготовка вируссодержащего материала для заражения лабораторных животных, куриных эмбрионов и культуры клеток.
ЗАНЯТИЕ 2. Подготовка вируссодержащего материала для транспортировки и заражения лабораторных объектов
Цель занятия: ознакомиться с техникой взятия, упаковки и транспортировки, сохранения и подготовки вируссодержащего материала для заражения лабораторных животных, куриных эмбрионов и культуры клеток.
Оборудование и материалы: пенициллиновые флаконы с кусочками паренхиматозных органов, залитых раствором Хенкса и замороженных, стерильные фарфоровые ступки с пестиками, стерильный стеклянный песок, стерильные чашки Петри (по две на рабочее место), стерильные центрифужные пробирки (количество их должно соответствовать числу рабочих мест), раствор Хенкса, пенициллин и стрептомицин, МПА, МПБ в пробирках на каждое рабочее место, стерильные пенициллиновые флаконы, стерильные резиновые пробки №14 или 14,5, ножницы, пинцеты, спиртовки, центрифуга, бумажные фильтры, таблицы по теме.
Краткие теоретические сведения
Вирусологическое исследование сводится к выделению вируса из патматериала, его серологической идентификации и подробному изучению различных свойств (патогенность, антигенность, культивируемость в лабораторных условиях, морфологические признаки).
В каждом случае заболевания с подозрением на вирусную этиологию в первую очередь надо выделить возбудителя из патматериала. В этой связи правильный отбор, упаковка, транспортировка и обработка материала имеют очень большое значение для успешной постановки диагноза на вирусное заболевание.
Материал для исследования. От заболевших, павших или вынужденно убитых животных его отбирают как можно быстрее после появления четких признаков болезни или не позднее 2...3 ч после их клинической смерти или убоя. Это связано с тем, что сразу после заболевания или в первые 1-2 дня болезни значительно ослабевает барьерная роль кишечника, что наряду с повышенной проницаемостью кровеносных сосудов, способствует распространению кишечной микрофлоры
При взятии материала для выделения вируса следует исходить из патогенеза изучаемой инфекции (входные ворота, пути распространения в организме, места репродукции и пути выделения). Так, при респираторных инфекциях для выделения вирусов берут носоглоточные смывы, мазки из носовой полости и глотки, соскобы трахеи и кусочки легкого трупов; при энтеровирусных — кал; при нейротропных — кусочки головного или спинного мозга; при дерматропных инфекциях — свежие поражения кожи и т.п., т.е. отбирают тот материал, в котором предполагается наибольшая концентрация вируса. Материалом для выделения вируса могут служить различные экскреты и секреты, кусочки органов, кровь, лимфа и пр.
При вскрытии трупов животных материал отбирают при строгом соблюдении всех правил асептики и антисептики, чтобы не заразиться самому, не внести посторонних возбудителей в исследуемый материал и не допустить распространения инфекционного начала.
Кровь берут из яремной вены, кончика хвоста или уха, венозного сплетения глаз и т.д.
Для выделения вируса используют цельную дефибринированную, "лаковую" кровь (смесь крови с дистиллированной водой в отношении 1:1), либо отдельные элементы крови (эритроциты, лейкоциты, плазма, сыворотка).
Для обнаружения противовирусных антител кровь берут у одного и того же животного дважды с интервалом в 2...3 недели (для получения парных сывороток в объеме не менее 5,0 мл каждой).
Смывы со слизистой оболочки носовой полости, глаз, с задней стенки глотки, прямой кишки и клоаки у птиц берут стерильными ватными тампонами и погружают их в пенициллиновые флаконы или пробирки, содержащие 3-5 мл соответствующей жидкости. Наиболее часто для этого используют раствор Хенкса или среды для культур клеток (ГЛА, 199, Игла) с антибиотиками (пенициллин, стрептомицин по 500 ЕД и нистатин по 20 ЕД на 1 мл среды) с белковым стабилизатором, например, 0,5%-ным раствором желатина или 0,5...1%-ным раствором альбумина бычьей сыворотки. Присутствие стабилизаторов необходимо для предотвращения быстрой инактивации некоторых вирусов, например, вируса парагриппа.
При взятии материала из носоглотки можно использовать прибор, сконструированный Томасом и Стоком. Он состоит из трубки диаметром 9 мм и длиной 30 см, внутри которой помещается вторая тонкая трубка с нержавеющим стержнем, оканчивающимся нейлоновой щеткой. Прибор вводят глубоко в носовые ходы (хоаны) или в горло через носовой ход, выдвигая щеточку, а затем вновь задвигая ее в трубку перед тем, как вынуть прибор из органа. Щеточку тщательно отмывают от слизи и клеток в 2 мл жидкости (раствор Хенкса).
Слюну отбирают при наличии признаков поражения ротовой полости или слюнных желез. Вытекающую изо рта слюну можно собрать прямо в пробирку. Если ее выделяется мало или она не вытекает, необходимо пропитать слюной стерильный тампон на палочке, а затем поместить в пробирку с небольшим количеством раствора Хенкса и закрыть резиновою пробкой. Для усиления слюноотделения животному можно ввести пилокарпин из расчета 0,02...0,05 г на 1 кг массы.
Мочу отбирают при помощи катетера в стерильную посуду.
Фекалии берут из прямой кишки при помощи шпателя или палочкой и помещают в стерильную пробирку или пенициллиновый флакон.
Везикулярную жидкость собирают шприцем или пастеровской пипеткой в стерильную пробирку.
Стенки афт, корочки с поверхности кожи снимают пинцетом.
Спинномозговую жидкость берут асептически путем обычной пункции.
В качестве патматериала используют кусочки органов объемом несколько см3 и массой 10-20 г, которые:
а) имеют видимые отклонения от нормы по форме, размеру, цвету, консистенции, наличию необычных образований;
б) могут быть поражены и содержать вирус;
в) наиболее часто содержат вирус — печень, селезенка, легкие, головной мозг, лимфатические узлы, почки.
Таблица 1.
Дата добавления: 2015-12-16 | Просмотры: 1975 | Нарушение авторских прав
|