АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

ЗАНЯТИЕ 2. Подготовка вируссодержащего материала для транспортировки и заражения лабораторных объектов

Прочитайте:
  1. IX. ДАННЫЕ ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫХ И ЛАБОРАТОРНЫХ МТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЯ.
  2. Адгезия микробов к пломбировочным, реконструктивным и ортопедическим материалам
  3. В раздел работы входит подготовка ребенка к детскому дошкольному учреждению совм с врачом.
  4. Виды наркоза. Определение. Преимущества и недостатки. Противопоказания к проведению. Подготовка пациента к наркозу.
  5. Внимательно изучите предложенный Вам комплект информационно иллюстрированного материала «Заболевания сосудов».
  6. Внимательно изучите предложенный Вам комплект информационно иллюстрированного материала «Основы урологии».
  7. Внимательно изучите предложенный Вам комплект информационно иллюстрированного материала «Хирургическая инфекция».
  8. Вопрос 2: Перевязочный материал: классификация, виды материала.
  9. Вопрос 4: Подготовка больного к срочной и экстренной операции.
  10. Геномный уровень организации клеточного материала.

ОГЛАВЛЕНИЕ

ЗАНЯТИЕ 1. Структура вирусологической лаборатории и правила работы в ней - 4ст

ЗАНЯТИЕ 2. Подготовка вируссодержащего материала для транспортировки и заражения лабораторных объектов -7ст

ЗАНЯТИЕ 3. Методы лабораторной диагностики вирусных инфекций. Микроскопический метод исследования -14 ст

ЗАНЯТИЕ 4. Люминесцентная микроскопия. Метод флуорохромирования -17ст

ЗАНЯТИЕ 5. Люминесцентная микроскопия. Метод иммунофлуоресценции -20ст

ЗАНЯТИЕ 6. Электронная микроскопия вирусов -23ст

ЗАНЯТИЕ 7. Культивирование вирусов путем заражения развивающихся куриных эмбрионов (РКЭ) -25ст

ЗАНЯТИЕ 8. Вскрытие куриных эмбрионов. -29ст

ЗАНЯТИЕ 9. Принципы культивирования вирусов в культуре клеток -31ст

ЗАНЯТИЕ 10. Получение первично-трипсинизированных культур клеток из развивающихся куриных эмбрионов -36ст

ЗАНЯТИЕ 11. Перевиваемые культуры клеток -38ст

ЗАНЯТИЕ 12. Заражение, культивирование вирусов в организме лабораторных животных и выделение. –42ст

ЗАНЯТИЕ 13. Принципы титрования вирусов и антисывороток -48ст

Литература -53ст

ЗАНЯТИЕ 1. Структура вирусологической лаборатории и правила работы в ней.

Цель занятия: ознакомиться с планировкой и оборудовани­ем вирусологической лаборатории, ее документацией, правилами и техникой безопасности при работе с вируссодержащим материа­лом.

Оборудование и материалы: помещение вирусологической лаборатории, подготовленное в соответствии с установленными правилами и нормами, электронный и люминесцентный микро­скопы, центрифуги, журнал регистрации студентов, получивших инструктаж по технике безопасности при работе в вирусологиче­ской лаборатории, документация лаборатории.

Краткие теоретические сведения

Вирусологическая лаборатория используется для проведения лабораторных диагностических исследований на вирусные инфек­ции, контроля состояния и напряженности специфического постинфекционного и поствакцинального про­тивовирусного иммунитета, и участия в профилактических мероприятий с вирусными заболева­ниями.

Структура вирусологической лаборатории зависит от задач и особенносте её деятельности. Как правило, вирусологические лаборатории, независимо от специализации, должны размещаться в чистых светлых помеще­ниях с необходимым оборудованием и мебелью. Их следует изо­лировать от других лабораторий (бактериологических, токсикологическтх и др). Независимо от характера выполняемой работы в них необходимо поддерживать рабочую чистоту. Кроме еже­дневной обычной уборки, помещения периодически обрабатывают растворами дезинфицирующих веществ (карболовой кислоты, ли­зола, хлорной извести, хлорамина и т.п.) и подвергают ультра­фиолетовому облучению. Комнаты, предназначенные для работы с вирусами, должны быть хорошо освещены и состоять из двух от­делений, разобщенных стеклянной перегородкой: предбоксника и бокса. В боксах, организованных по типу операционных, над ра­бочим столом, покрытым пластиком или нержавеющей сталью, на расстоянии 50-70 см от поверхности устанавли­вают бактерицидные лампы БУВ-30 или БУВ-60 для уничтожения инфекционных агентов. Дополнительно в боксе желательно иметь пере­движную кварцевую лампу типа ПРК-4. У входа в бокс должен лежать коврик, пропитанный дезраствором. В предбокснике в биксах должны быть сменные тапочки или сменная обувь, стерильные халаты, шапочки, маски, которые одевают перед работой.

Боксы и предбоксники, кроме ежедневной влажной дезин­фекционной обработки, необходимо облучать бактерицидными лампами в течение 30-40 мин перед началом и после работы.. В предбокснике должны быть стерильные халаты, тапоч­ки, маски, которые надевают перед работой, а так же можно размещать дополнительное оборудование.: термостаты, холодильники, центрифуги лабораторные, микроскопы, водяную баню и пр.

В боксе, кроме рабочих столов и стульев, должно быть все необходимое для работы: стерилизаторы для инструментов, банки с дезрастворами для отработанных пипеток, бак с дезраствором для сбора отработанных материалов, баночки со спиртом, йодом, штативы для пробирок, пробирки с бульоном для проверки бактериального загрязнения, стерильные пипетки, ступки и т.д.

Потолок и стены лабораторных комнат покрывают масля­ной краской (стены на 1,5 м от пола можно выложить кафельны­ми плитками), пол — линолеумом или кафельными плитками. Лаборатория должна иметь 5-6 комнат, отдельный вход для сотрудников и для посетителей с тамбуром, обязателен гардероб и душевая.

Регистрация поступающего на исследование патологи­ческого материала проводят в приемной. Пол в ней должен быть бетонный, стены покрыты масляной краской или керамиче­ской плиткой, окна заделаны железными решетками. При входе необходимо положить коврик с дезинфи­цирующим раствором. В приемной размещают несколько столов, обитых оцинкованной жестью, бак с дезинфицирующим раство­ром (чаще всего с 3% раствором хлорамина или 5%-ным раствором фенола).

В комнате для предварительной обработки материала прово­дят вскрытие трупов и отбор материала для дальнейшего иссле­дования. В ней должны быть бокс с предбоксником, соединенный окном с виварием для инфицированных животных. В боксе раз­бирают поступившие пробы, готовят и фиксируют мазки — отпе­чатки и т.д. В комнате также должны быть столы для вскрытия трупов и обработки материала. На столе для вскрытия трупов по­мещают инструментарий (ножницы, пинцеты, скальпели, корн­цанги), эмалированный тазик, сосуды с дезинфицирующими рас­творами, стерильную посуду для сбора материала.

Комнату для вирусологических исследований оборудуют: термостатами, холодильниками, центрифугами, весами различных типов, электроплитками, фильтрами, насосами, водяными банями, электромагнитными мешалками и т д.. Лабораторию снабжают в достаточном количестве биксами, фильтрами Зейтца, ящиками для хранения сред, эмали­рованной и стеклянной посудой — матрацами, флаконами, кол­бами разных объемов, градуированными пипетками, микропипет­ками; цилиндрами и стаканами, пробирками серологическими, бактериологическими и центрифужными, ампулами и резиновы­ми пробками разных размеров, металлическими штативами для пробирок, карандашами по стеклу, фильтровальной бумагой, лей­копластырем и т.п.

На столах для определенных операций за каждым работаю­щим закрепляют рабочее место. Здесь размещают нужную аппа­ратуру, соответствующие дезинфицирующие средства, краски, реактивы. На операционном столе необходимы микроскоп, набор инструментов (пинцеты, ножницы, скальпели и др.), вата, пасте­ровские пипетки, стерильные и обезжиренные покровные и пред­метные стекла, физраствор. При работе с куриными эмбрионами должны быть подставки для яиц, овоскопы, инструменты для вскрытия (ножницы, глазные пинцеты).

В автоклавной необхо­димо иметь два автоклава, для чистых материалов – где стерилизуют посуду, питательные среды, инструменты, обезвреживают заразный материал - и для инфици­рованных, бак для сбора инфицированного материала. Допускается наличие сушильных шкафов, дистилляторов, столов и шкафов для стерильной посуды.

Моечная предназначена для мытья посуды и приборов. В ней должна быть машина для посуды и белья, су­шильные шкафы и т.д. Посуду, пипетки и инструменты, загряз­ненные инфицированным материалом, моют только после стери­лизации.

Виварием называется помещение, используемое для выращивания и содержания лабораторных животных. В виварии имеется карантинное отделение, комнаты для экспериментальных и здоровых животных, мытья и дезин­фекции клеток, инвентаря и спецодежды, кухня для приготовле­ния пищи, кладовая, фуражная, трупосжигательная печь и др. Все помещения вивария должны быть изолированы друг от друга и иметь самостоятельные входы с дезковриками. Кроме того, они должны быть непроницаемыми для грызунов и различных насе­комых. Виварий должен быть теплым, светлым (с источником дневного света) и сухим. В холодное время года здесь поддержи­вают температуру 12-20 °С.

Лабораторных животных содержат в клетках. В одной клетке может быть 1-2 кролика, 5-6 морских свинок, 8-10 крыс, 15-20 мышей. На каждой клетке с животными вывешивают пас­порт, где отмечают дату их поступления в виварий, массу, в пас­порте на клетках с подопытными животными дополнительно от­мечают дату заражения и вид вируссодержащего материала.

Чистку клеток и вивария делают ежедневно, используя мыльно-карболовый раствор. После уборки тщательно моют руки и обрабатывают их 2%-ным раствором хлорамина.

Сотрудники вирусологической лаборатории обязаны соблю­дать следующие правила, предупреждающие попадание бактерий и плесневых грибов в исследуемый материал и возможность внутрилабораторных заражений персонале и распространения инфек­ции.

1. Работать разрешается в специальной одежде — халате и шапочке. При работе с особо опасным материалом дополнительно одевают резиновые перчатки, марлевую маску и защитные очки. В боксе работают в стерильном халате, маске, шапочке, при необ­ходимости надевают резиновые перчатки и очки. Обязательно ме­няют обувь. В виварии во время мытья посуды и уборки на халат надевают передники, а на ноги — резиновые сапоги.

2. Запрещается выходить за пределы лаборатории в халатах или надевать верхнюю одежду на халат.

3. В лаборатории запрещается курить и принимать пищу.

4. Не допускаются хождение, разговоры во время работы.

5. Весь материал, поступающий в лабораторию на анализ, должен рассматриваться как инфицированный.

6. При распаковке материала необходимо соблюдать осто­рожность. Банки следует обтирать снаружи дезинфицирующим раствором и старить их на подносы или кюветы.

7. Переливание жидкостей, содержащих вирусы, производят над сосудом, наполненным дезраствором.

8. В случае попадания заразного материала на халат, руки, стол, обувь и т.д. надо сообщить об этом заведующему лаборато­рией (в учебных заведениях — преподавателю) и немедленно про­извести под его контролем дезинфекцию. При подозрении на за­ражение необходимо обратиться к врачу.

9. Зараженный материал подлежит обязательному уничто­жению (автоклавирование, сжигание), по возможности в тот же день. Инструменты, а также поверхность рабочего стола после работы сразу же дезинфицируют.

10. При работе с пипетками для разлива жидкого инфици­рованного материала пользуются резиновыми баллончиками (грушами) небольшого объема.

11. В журнале регистрации ежедневно делают записи отно­сительно использованного заразного материала и его уничтоже­ния.

12. Запрещается выносить из лаборатории оборудование, инвентарь, материалы и т.д. без предварительной дезинфекции их на месте.

13. Пипетки, предметные и покровные стекла и другую по­суду, бывшую в употреблении, обеззараживают, погружая в 5%-ный раствор лизола, фенола или серной кислоты, которые всегда должны быть на столах.

14. Запрещается оставлять на рабочих столах бактериологи­ческие чашки, пробирки и другую посуду с заразным материалом.

15. По окончании работы рабочее место приводят в порядок и тщательно дезинфицируют. Вируссодержащий материал, необ­ходимый для дальнейшей работы, ставят на хранение в сейф-холодильник и опечатывают. Руки тщательно дезинфицируют мыльным спиртом, 70°-ным спиртом и др. Лабораторию закры­вают и опечатывают.

Для всех вирусологических лабораторий установлен единый порядок обращения с вирусами, предусматривающий правила их хранения, регистрации, передачи от одного сотрудника другому внутри лаборатории и за ее пределы.

Культуру вирусов хранят в холодильнике минус (20... 70 °С) под замком с пломбой или печатью. Все пробирки и пенициллиновые флаконы, закрытые резиновыми пробками, должны иметь эти­кетки из лейкопластыря с указанием вида вирусов, индивидуаль­ного номера штамма и стабилизирующей среды, в которой он на­ходится. Лучшим способом сохранения вирусов является лиофилизация.

В вирусологической лаборатории должна быть следующая документация.

1. Инвентарная книга музейных штаммов вирусов.

2. Журнал учета движения вируссодержащего материала в лаборатории.

3. Журнал учета стерилизации и уничтожения инфициро­ванного материала.

4. Журнал учета зараженных подопытных животных.

5. Журнал вирусологических исследований (экспертиз).

6. Журнал учета выделяемых вирусов.

 

В ходе самостоятельной работы студентов необходимо

1. Ознакомиться с вирусологической лабораторией кафедры и ее основным оборудованием.

2. Изучить правила работы с вируссодержащим материалом.

Примерный план занятия (2 ч)

1. Объяснение преподавателя.

2. Запись в тетради требований при работе с вирусным ма­териалом и основных правил выполнения этих требований.

3. Роспись в журнале по технике безопасности.

4. Демонстрация: а) лаборатории и ее основного оборудова­ния;

б) организации рабочего места в боксе при работе с вируса­ми..

5. Самостоятельная работа студентов.

6. Подведение итогов.

7. Задание к следующему занятию.

Методические указания

Занятие можно организовать следующим образом. После объяснения преподавателя и демонстрации (см. п. 4 занятий) сту­денты должны подготовить рабочее место для работы с вирусным материалом. Для этого они проводят его дезинфекцию раствором хлорамина, ставят на стол сосуд с 2%-ным дезраствором, контей­нер для отходов, спиртовку, баночку со стерильной ватой, готовят инструменты (шприц, иглы, пинцет) для стерилизации. Отраба­тывают приемы работы с пипеткой и грушей.

Для ознакомления с документацией лаборатории можно ис­пользовать ветеринарное законодательство, инструкции о прави­лах работы в лабораториях.

Вопросы домашнего задания

1.Открытие вирусов и периоды развития вирусологии.

2. Предмет и задачи вирусологии.

3. Взятие, пересылка и сохранение вируссодержащего мате­риала.

4. Подготовка вируссодержащего материала для заражения лабораторных животных, куриных эмбрионов и культуры клеток.

ЗАНЯТИЕ 2. Подготовка вируссодержащего материала для транспортировки и заражения лабораторных объектов

Цель занятия: ознакомиться с техникой взятия, упаковки и транспор­тировки, сохранения и подготовки вируссодержащего материала для заражения лабораторных животных, куриных эмбрионов и культуры клеток.

Оборудование и материалы: пенициллиновые флаконы с кусочками паренхиматозных органов, залитых раствором Хенкса и замороженных, стерильные фарфоровые ступки с пестиками, стерильный стеклянный песок, стерильные чашки Петри (по две на рабочее место), стерильные центрифужные пробирки (количе­ство их должно соответствовать числу рабочих мест), раствор Хенкса, пенициллин и стрептомицин, МПА, МПБ в пробирках на каждое рабочее место, стерильные пенициллиновые флаконы, стерильные резиновые пробки №14 или 14,5, ножницы, пинцеты, спиртовки, центрифуга, бумажные фильтры, таблицы по теме.

Краткие теоретические сведения

Вирусологическое исследование сводится к выделению виру­са из патматериала, его серологической идентификации и подроб­ному изучению различных свойств (патогенность, антигенность, культивируемость в лабораторных условиях, морфологические признаки).

В каждом случае заболевания с подозрением на вирусную этиологию в первую очередь надо выделить возбудителя из патма­териала. В этой связи правильный отбор, упаковка, транспортировка и обработка материала имеют очень большое значение для успешной постановки диагноза на вирусное заболевание.

Материал для исследования. От заболевших, павших или вынужденно убитых животных его отбирают как можно быстрее после появления четких признаков болезни или не позднее 2...3 ч после их клинической смерти или убоя. Это связано с тем, что сразу после заболевания или в первые 1-2 дня болезни значитель­но ослабевает барьерная роль кишечника, что наряду с повышен­ной проницаемостью кровеносных сосудов, способствует распространению кишечной микрофлоры

При взятии материала для выделения вируса следует исхо­дить из патогенеза изучаемой инфекции (входные ворота, пути распространения в организме, места репродукции и пути выделе­ния). Так, при респираторных инфекциях для выделения вирусов берут носоглоточные смывы, мазки из носовой полости и глотки, соскобы трахеи и кусочки легкого трупов; при энтеровирусных — кал; при нейротропных — кусочки головного или спинного мозга; при дерматропных инфекциях — свежие поражения кожи и т.п., т.е. отбирают тот материал, в котором предполагается наиболь­шая концентрация вируса. Материалом для выделения вируса мо­гут служить различные экскреты и секреты, кусочки органов, кровь, лимфа и пр.

При вскрытии трупов животных материал отбирают при строгом соблюдении всех правил асептики и антисептики, чтобы не заразиться самому, не внести посторонних возбудителей в ис­следуемый материал и не допустить распространения инфекцион­ного начала.

Кровь берут из яремной вены, кончика хво­ста или уха, венозного сплетения глаз и т.д.

Для выделения вируса используют цельную дефибринированную, "лаковую" кровь (смесь крови с дистиллированной водой в отношении 1:1), либо отдельные элементы крови (эритроциты, лейкоциты, плазма, сыворотка).

Для обнаружения противовирус­ных антител кровь берут у одного и того же животного дважды с интервалом в 2...3 недели (для получения парных сывороток в объеме не менее 5,0 мл каждой).

Смывы со слизистой оболочки носовой полости, глаз, с зад­ней стенки глотки, прямой кишки и клоаки у птиц берут сте­рильными ватными тампонами и погружают их в пенициллино­вые флаконы или пробирки, содержащие 3-5 мл соответствующей жидкости. Наиболее часто для этого используют раствор Хенкса или среды для культур клеток (ГЛА, 199, Игла) с антибиотиками (пенициллин, стрептомицин по 500 ЕД и нистатин по 20 ЕД на 1 мл среды) с белковым стабилизатором, например, 0,5%-ным раствором желатина или 0,5...1%-ным раствором альбумина бычьей сыворотки. Присутствие стабилизаторов необходимо для предотвращения быстрой инактивации некоторых вирусов, на­пример, вируса парагриппа.

При взятии материала из носоглотки можно использовать при­бор, сконструированный Томасом и Стоком. Он состоит из трубки диаметром 9 мм и длиной 30 см, внутри которой помещается вторая тонкая трубка с нержавеющим стержнем, оканчивающимся нейлоновой щеткой. Прибор вводят глубоко в носовые ходы (хоаны) или в горло через носовой ход, выдвигая щеточку, а затем вновь задвигая ее в трубку перед тем, как вынуть прибор из ор­гана. Щеточку тщательно отмывают от слизи и клеток в 2 мл жидкости (раствор Хенкса).

Слюну отбирают при наличии признаков поражения рото­вой полости или слюнных желез. Вытекающую изо рта слюну можно собрать прямо в пробирку. Если ее выделяется мало или она не вытекает, необходимо пропитать слюной стерильный там­пон на палочке, а затем поместить в пробирку с небольшим коли­чеством раствора Хенкса и закрыть резиновою пробкой. Для уси­ления слюноотделения животному можно ввести пилокарпин из расчета 0,02...0,05 г на 1 кг массы.

Мочу отбирают при помощи катетера в стерильную посуду.

Фекалии берут из прямой кишки при помощи шпателя или палочкой и помещают в стерильную пробирку или пенициллиновый флакон.

Везикулярную жидкость собирают шприцем или пастеров­ской пипеткой в стерильную пробирку.

Стенки афт, корочки с поверхности кожи снимают пинце­том.

Спинномозговую жидкость берут асептически путем обычной пункции.

В качестве патматериала используют кусочки органов объе­мом несколько см3 и массой 10-20 г, которые:

а) имеют видимые отклонения от нормы по форме, размеру, цвету, консистенции, наличию необычных образований;

б) могут быть поражены и содержать вирус;

в) наиболее часто содержат вирус — печень, селезенка, лег­кие, головной мозг, лимфатические узлы, почки.

Таблица 1.


Дата добавления: 2015-12-16 | Просмотры: 1975 | Нарушение авторских прав







При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.01 сек.)