АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

ОПЛОДОТВОРЕНИЕ – ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ

Прочитайте:
  1. I. Основные теоретические положения
  2. I. «ПРИКЛАДНЫЕ АСПЕКТЫ КЛИНИЧЕСКОЙ АРТ-ТЕРАПИИ»
  3. III. ОРГАНИЗАЦИОННЫЕ АСПЕКТЫ ВНЕДРЕНИЯ ПРОТОКОЛА
  4. А) многоразовое оплодотворение
  5. Актуальные аспекты совершенствования воспитательной работы в шестой школьный день
  6. АСПЕКТЫ ВЫХАЖИВАНИЯ НЕДОНОШЕННЫХ НОВОРОЖДЕННЫХ
  7. Аспекты проблем психогенетики
  8. Волевые аспекты личности
  9. Генетические аспекты
  10. Генетические аспекты
Оплодотворение представляет собой слияние двух гамет - ооцита исперматозоида, влекущее за собой слияние их гаплоидных наборов хромосом иразвитие нового организма. Зрелый ооцит к моменту оплодотворения пред­ставляет собой одну изнаиболее больших клеток ор­ганизма - 110 - 120 мкм в диаметре, окруженнуюблестящей оболочкой (zona pellucida), несколькими слоями клеток лучистого венца(corona radiata) и большим числом клеток яйценосного бугорка (cumu­lusoophorus). К этому времени в ооците, как прави­ло, уже завершилось первоеделение мейоза, в ре­зультате которого отделилось первое полярное тель­це, авторое деление мейоза находится на стадии метафазы. Хромосомы располагаются вряд, образуя метафазную пластинку, непосредственно под поляр­ным тельцем. Наэтой стадии в ооците происходит блок мейоза, который снимается лишь припроник­новении сперматозоида. Зрелый сперматозоид имеет уплощенную гру­шевидную головку длиной около 6мкм и шириной в экваториальном сегменте около 4 мкм, состоящую главным образомиз ядра и акросомы, которая со­держит литические ферменты и расположена в видешапочки над верхней половиной головки. Хвост сперматозоида имеет длину около 50мкм и начина­ется от головки в районе шейки, где расположены центриоль икомплекс митохондрий. Митохондрии отвечают за обеспечение энергией процессадвиже­ния сперматозоида, осуществляемого хвостом. В структуре сперматозоида нетничего лишнего, все имеет только одну цель – доставить генетический материал,содержащийся в головке сперматозоида, в ооцит.Способность сперматозоида к оплодотворению in vivo или In vitro появляетсялишь после капацитации, под которой in vivo понимается весь комплексбиохи­мических и ультраструктурных изменений, которые претерпеваетсперматозоид, проходя путь через жен­ский половой тракт до встречи с ооцитом.Эти измене­ния затрагивают в основном мембрану головки спер­матозоида.Капацитация in vitro происходит во время обработки и инкубирования спермы дооплодотворе­ния, однако она невозможна при отсутствии в средах для отмывки икультивирования альбумина.При оплодотворении in vivo в трубе присутствует лишь небольшое количествосперматозоидов, проде­лавших весь долгий путь от влагалища до ампулярногоотдела маточной трубы. Для нормального оплодо­творения in vitro их необходимоне менее 50 тыс. на ооцит. Однако при подсчете количества сперматозои­дов,непосредственно атакующих ооцит in vitro, их на­считывается до 2 - 3 тыс. Досих пор неясно, почему количество сперматозоидов должно быть так велико вискусственных условиях. Возможно, это объясняется недостаточнойфизиологичностью среды либо боль­шим размером массы cumulus у ооцитов,получаемых при ТВП, чем in vivo.Прежде чем попасть в ооцит, сперматозоид должен преодолеть несколькобарьеров. Первым из них явля­ется cumulus, представляющий собой растянутыйматрикс, состоящий преимущественно из полигиалуроновой кислоты, с редкорасположенными клетками. Преодолеть этот барьер может только капацитированныйсперматозоид с интактной акросомой. По мере продвижения внутрь cumulusповедение сперматозои­да изменяется: резко возрастает скорость, двумерныедвижения становятся трехмерными - наступает фаза гиперактивности. In vitroпервый барьер спер­матозоидам помогает преодолевать фермент гиалуронидаза,выделяющаяся при разрушении акросом гибнущих сперматозоидов; однако такаяситуация не является физиологичной.После прохождения cumulus сперматозоид достига­ет zona pellucida, гдепроисходит его связывание с ре­цептором. В отличие от мышей, рецепторы zоnаpellu­cida которых давно выделены и охарактеризованы, таковые человека до сихпор точно не определены. Имеется предположение, что это так называемыйан­тиген к оплодотворению - FA-1, гликопротеин, кото­рый при добавлении всреду полностью блокирует свя­зывание сперматозоидов с zona pellucida.Связывание сперматозоида возможно только при интактной акросоме и нормальнойморфологии голов­ки, поскольку рецепторы сперматозоида к гопа pellu­cidaрасположены на акросоме. Затем происходит акросомная реакция - мембранаакросомы и цитоплазматическая мембрана ооцита сливаются, содержимое акросомы(главным образом, фермент акрозин, спо­собный к локальному растворениюгликопротеинов, из которых состоит гопа pellucida) выбрасывается в местесвязывания с гопа pellucida и сперматозоид ин­тенсивно продвигается сквозьоболочку ооцита, все еще находясь в фазе гиперактивности.Попадая в перивителлиновое пространство, спер­матозоид прикрепляется крецепторам на мембране ооцита комплементарными рецепторами, расположен­нымина экваториальной части головки под акросо­мой. Связывание сперматозоида срецепторами на плазматической мембране мгновенно вызывает так называемуюкортикальную реакцию - массовый экзоцитоз гранул, расположенных по периферииооцита (cortex}, что приводит к необратимым измене­ниям zona pellucida,делающим ее непроходимой для остальных сперматозоидов. Это является основныммеханизмом предотвращения полиспермии у млеко­питающих. Далее начинаетсяпроцесс слияния мемб­ран сперматозоида и ооцита, в результате которогосперматозоид целиком как бы заглатывается ооцитом (процесс очень напоминаетфагоцитоз).Сразу после слияния гамет ядерная мембрана спер­матозоида разрушается,хроматин деконденсируется под влиянием факторов ооплазмы. Одним из этихфак­торов, возможно, является так называемый фактор деконденсации ядрасперматозоида (SNDF). Ооцит также активируется, мейоз возобновляется,выделяет­ся второе полярное тельце. Механизм активации ооци­та пока изученнедостаточно, однако известно, что фактор активации выделяетсясперматозоидом. Ядерный материал ооцита окружается оболочкой - формируетсяженский пронуклеус. Вокруг хрома­тина сперматозоида формируется мужскойпронукле­ус, в обоих пронуклеусах идет синтез ДНК. Мужской и женскийпронуклеусы начинают движение по на­правлению друг к другу и встречаются вцентре ооци­та. Через несколько часов после встречи мембраны пронуклеусовразрушаются, и генетический материал обеих гамет сливается (сингамия). Наэтом этапе про­цесс оплодотворения завершается - возникает зигота. Хроматинзиготы конденсируется, и хромосомы подго­тавливаются к первому делениюдробления.На следующий день после аспирации ооциты пере­носят в лунку со свежейкультуральной средой и очи­щают от клеток лучистого венца пастеровскойпипет­кой с оттянутым до диаметра 150 - 160 мкм кончиком и просматривают напредмет присутствия признаков оплодотворения. Пронуклеусы видны в ооците дажепри наблюдении в стереомикроскоп х 80. Они появля­ются, как правило, через 10- 16 ч после добавления сперматозоидов в среду с ооцитами и исчезают через 6- 8 ч после появления. Если присутствуют оба пронуклеуса - оплодотворениесчитается нормальным. Если их не удается обнаружить - оплодотворение несостоялось. Если виден один пронуклеус либо больше двух - произошлоаномальное оплодотворение.Примерно в 30% случаев в ооцитах после оплодо­творения in vitro не выявляютсяпронуклеусы, что мо­жет быть связано как с несостоявшейся пенетрацией ооцита(низкая концентрация активных сперматозои­дов, дефекты в механизмах адгезиисперматозоида, отсутствие рецепторов на zona pellucida и/или мембра­неооцита), так и с незрелостью ооцита на момент оп­лодотворения, а также сналичием хромосомных ано­малий у ооцита (диплоидия, анеуплоидия).При наличии в ооплазме одного пронуклеуса (около 3 - 6%) в половине случаевоплодотворение все же происходит, однако пронуклеусы формируются асин­хронно.Происхождение таких зигот может быть раз­личным: гиногенетическим (изооцита), андрогенетическим (из сперматозоида) либо возникшим в резуль­татеслияния мужского и женского пронуклеусов. Отличить на практике этоневозможно, поэтому реко­мендуется: во-первых, просматривать ооциты насле­дующий день после инсеминации несколько раз, чтобы избежать ошибки; во-вторых, не переносить в полость матки эмбрионы, полученные изоднопронуклеарных зигот.Полипронуклеарные зиготы - 3 и более пронукле­усов - составляют, как правило,5 - 10% от всех оп­лодотворенных ооцитов и возникают главным образом припроникновении в ооцит более одного сперматозо­ида (в случае добавленияизбыточного количества сперматозоидов при инсеминации, при дефектахкор­тикальной реакции, при незрелости или перезрелости ооцита). Также описаныслучаи неотделения второго полярного тельца после завершения мейоза,генетиче­ский материал которого формирует третий пронукле­ус.Полипронуклеарные зиготы, как правило, не развиваются нормально, эмбрионы,полученные из таких зигот нельзя переносить в полость матки. В естественныхусловиях такие эмбрионы иногда имплантируются, однако чаще всего такаябеременность заканчивается выкидышем либо мертворождением. Рис. 4. Яйцеклетки и зародыши человека на различных этапах культивиро­вания.а – ооцит с первым полярным тельцем; б – пронуклеусы: в и г – зародыши наста­диях 4 и 8 бластомеров. Микрофотографии живых объектов в фазовомконтрасте. ОЦЕНКА КАЧЕСТВА ЭМБРИОНОВ Эмбрионы, полученные после оплодотворения ооцитов одной и той же пациентки,часто отличаются по скорости дробления и морфологическим парамет­рам.Общепризнанным считается, что максимальную способность к имплантации имеютэмбрионы с наи­большей скоростью дробления, бластомеры которых имеютрегулярную форму, а безъядерные фрагменты отсутствуют. Такие эмбрионы относятк классу 1 (А). Градация эмбрионов по качеству является условной иразличается в разных лабораториях. Однако в ос­нове ее лежит, как правило,характер фрагментации эмбриона, форма и размер бластомеров. Так, эмбрион снеравными бластомерами и/или фрагментами ци­топлазмы, занимающими менее 10%объема, соответ­ствует классу 2 (В); при наличии фрагментации 10 - 50% -классу 3 (С), более 50% - классу 4 (D).Работы по анализу влияния качества переносимых в полость матки эмбрионов начастоту их имплантации многочисленны, но трудносопоставимы в силу разныхметодик оценки качества. Около 20% переносимых эмбрионов А-В классаимплантируются, однако эта частота падает до 1,5% для сильнофрагментированных эмбрионов. Впечатляют результаты клиники Bourn Hall(Англия), в которых показано, что 90% пациенток, забеременевших после ЭКО иПЭ, по­лучали при переносе эмбрионов хотя бы один эмбрион класса А. В той жеработе не было выявлено зависимо­сти между качеством переносимых эмбрионов ичасто­той невынашивания беременности. СТРАТЕГИЯ ПЕРЕНОСА ЭМБРИОНОВ Количество переносимых эмбрионов обычно со­ставляет не более 2 - 3, посколькупри увеличении чис­ла эмбрионов до 4 и более частота беременности, какправило, не возрастает, но увеличивается риск моногоплодной беременности, чтовлечет за собой серьез­ные проблемы акушерского характера. Однако вот­дельных случаях допускается перенос большего числа эмбрионов - примногократных неудачных попытках ЭКО и ПЭ и при возрасте пациентки старше 40лет. В данном случае при последующих переносах шанс наступления беременностиснижается, и авторы пытаются использовать возможность наступлениябе­ременности за счет увеличения количества переноси­мых эмбрионов. Но такойподход не является науч­ным, так как в этих случаях не всегда ясна причинанеудач, т. е. мы часто имеем дело с так называемым «бесплодием неяснойэтиологии».Что касается интервала между моментом оплодо­творения ооцитов и временемпереноса эмбрионов, то здесь существует несколько основных подходов. На зареразвития метода Эдварде и Стептоу переносили в полость матки эмбрионы,достигшие стадии 8 - 16 бла­стомеров на 3 - 4-е сутки культивирования,имитируя естественные условия. Однако впоследствии было выявлено, что болееранние эмбрионы также пригод­ны для переноса и имплантируются с той жевероят­ностью.Через 48 ч после аспирации фолликулов (2-е сутки культивирования) эмбрионы,как правило, находятся на стадии 2 - 4 бластомеров, но встречаются и стадии 6- 8 бластомеров. Перенос эмбрионов на 2-е сутки наи­более общепринят: ужеимеется возможность отобрать эмбрионы по качеству и скорости дробления,однако пребывание в условиях культуры, являющихся в лю­бом случае менееоптимальными, чем естественные, еще не слишком длительно.Интересен тот факт, что способность эмбриона к им­плантации напрямую зависитот скорости его дробле­ния. Так, в исследовании Staessen с соавт. припереносе эмбриона хорошего качества на стадии 2 и 4 бластоме­ров частотаимплантации составила 14 и 21% соответ­ственно. В другой работе сообщается,что если перенесенные эмбрионы достигали стадии не более 2 бластомеров,частота наступления беременности составляла 9,3%, но возрастала до 35,8%,если хотя бы один эмбрион был на более чем двуклеточной ста­дии.На 3-и сутки культивирования нормально развива­ющиеся эмбрионы достигаютстадии 6 - 8 бластомеров и выше. К этому моменту выбор эмбрионов дляпере­носа облегчается - часть эмбрионов, на 2-е сутки дро­бившихся нормально,отстает в развитии либо оста­навливается. Однако при анализе качествамногокле­точных эмбрионов существует опасность принять безъядерные фрагментыза бластомеры, становящиеся к этой стадии близкими по размеру. В большинствелабораторий, проводящих ЭКО и ПЭ, перенос эмбрио­нов осуществляется на 2 - 3-и сутки культивирования, причем статистически достоверной разницы междучастотой наступления беременности после переноса на 2-е или 3-и сутки не былообнаружено (соответственно 21,9 и 23,5%). Выбор времени переноса долженосуществляться на основании анализа интенсивности и равномерности дробленияэмбрионов: если выбор эмбрионов на 2-е сутки затруднен, перенос можноот­ложить на 24 ч.На 4 - 5-е сутки пребывания в культуре при приме­нении стандартных сред иметодик культивирования лишь небольшая часть эмбрионов достигает стадииморулы и бластоцисты, и частота наступления бере­менности не возрастает посравнению с переносом на 2 - 3-и сутки.Однако при использовании культуральных систем, отвечающих метаболическимпотребностям эмбрионов на этой стадии, можно добиться хороших результатов.Так, при культивировании эмбрионов в присутствии клеток линии Vero (клеткипочки обезьяны) было по­казано, что 60% эмбрионов достигают стадиибласто­цисты, а перенос бластоцист дает высокий процент беременности.Особенно это относится к пациенткам с повторными неудачами при переносе болееранних эмбрионов. По данным разных авторов, беременность наступала в 37 - 40%случаев переноса эмбрионов на стадии бластоцисты.Серьезным возражением против ко-культивирования эмбрионов человека в присутствииклеток других животных является возможность вирусного зараже­ния, поэтомуактивно разрабатываются среды, опти­мизирующие условия культивирования болеепоздних эмбрионов (>3 суток). Примером такой среды может служить средаГарднера (G 2). При культивировании в ней эмбрионов с 3-го по 5-й деньбластоцисты фор­мировались из 52% зигот первого дня, частота им­плантации ибеременности составляла соответственно 23 и 38%. Сам Гарднер сообщает о 50%-йим­плантации бластоцист, полученных при последова­тельном культивировании всредах G 1,2 (1 - 2-й день) и G 2,2 (3 - 5-й день), в то время как достовернойраз­ницы между частотой наступления беременности по­сле переноса эмбрионов на 3-й и 5-е сутки не наблю­далось (66 и 71% соответственно). Возможность культивирования до стадии бластоци­сты открывает большиевозможности при отборе «луч­ших» эмбрионов, делает более физиологичныммо­мент попадания эмбрионов в полость матки, а также существенно увеличиваетпроцент имплантации, что позволяет переносить не более 2 бластоцист, неопаса­ясь возникновения осложнений, связанных с много­плодием, или снижениявероятности наступления беременности. ТЕХНИКА ПЕРЕНОСА ЭМБРИОНОВ Техника переноса эмбрионов за двадцать лет развития метода практически неизменилась. Здесь мы рассмотрим лишь последовательность действий эмбриолога,не касаясь гинекологических аспектов переноса.Перенос эмбрионов осуществляют через цервикальный канал в полость маткипациентки с помощью специального катетера. Существует большой выбор такихкатетеров, однако наиболее распространенными в мире являются: катетеры Bourn-Wallace, Frydman и Cook-Soft transfer для неосложненных переносов и ка­тетерT.D.T. для осложненных переносов (при загибе матки, извилистом ходе илиспазме цервикального канала).Катетер присоединяют к 1-миллилитровому шпри­цу, набирают столбик (около 0,2мл) свежей, нагретой до 37°С культуральной среды, затем давление со шприцаснимают, шприц переводят в исходное поло­жение и продолжают набирать: сначалапузырек воз­духа, затем каплю среды без эмбрионов, опять пузы­рек воздуха,каплю среды с эмбрионами, отобранны­ми для переноса, пузырек воздуха и ещеодну каплю без эмбрионов. Такая последовательность необходима для обеспечениясохранности эмбрионов во время про­цедуры переноса и маркирования ихместоположения. Катетер с эмбрионами передают гинекологу для осу­ществленияпереноса: содержимое, за исключением начального столбика среды, всего около20 - 50 мкл, попадает в полость матки. Оставшейся средой промы­вают катетер исмыв рассматривают под стереомикроскопом, чтобы убедиться, что все эмбрионыперенесе­ны в полость матки. СТИМУЛЯЦИЯ СУПЕРОВУЛЯЦИИ В ПРОГРАММЕ ЭКО И ПЭ Для успешного выполнения программы ЭКО необходимо добиться созреваниянескольких доминантных фолли­кулов - суперовуляции. Это значительно повышаетвоз­можность изъятия и оплодотворения яйцеклетки. Кроме того, отмечено, чтопри пересадке нескольких оплодотворен­ных яйцеклеток беременность развиваетсячаще, причем развивается один эмбрион. Этот феномен получил название "функцияпомощи".Период развития от раннего преантрального до преовуляторного фолликула учеловека занимает пример­но 85 дней, или 3 менструальных цикла (рис.5). После65 дней роста финальная когорта, состоя­щая из 15 - 20 малых полостныхфолликулов, вступает в гонадотропинзависимую фазу роста. В спонтан­номменструальном цикле в яичнике под влиянием гонадотропинов (Гн), главнымобразом фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), развивается один фол­ликул, аостальные подвергаются атрезии. Секреция ФСГ происходит в аденогипофизе ирегулируется гонадотропин-рилизинг гормоном (ГнРГ), вырабатывае­мымгипоталамусом. Доминантный фолликул облада­ет высокой стероидогеннойактивностью и продуциру­ет эстрадиол (Е2), необходимый для секреторнойтрансформации эндометрия и обеспечения условий для имплантации эмбриона.Когда секреция E2 дости­гает критического уровня, происходит резкоевозрастание уровня лютеинизирующего гормона (ЛГ), сти­мулирующего овуляцию илютеинизацию лопнувшего фолликула. ЛГ, как и ФСГ, секретируется клет­камиаденогипофиза и находится под влиянием ГнРГ. Изучение динамики концентрацииE2 в перифери­ческой крови показало, что период активного стероидогенезасоставляет 5 - 6 дней, после чего концентра­ция е2 резко снижается.Мониторниг E2 используется в клинической практике для определения степенифункциональной зрелости доминантного фолликула. На месте разорвавшегосяфолликула формируется желтое тело, которое является основнойстероидпродуцирующей структурой яичника, определяющей изменения концентрацииЕ2 и прогестерона (П) на протяжении лютеиновой фазы менструального цик­ла.Первая беременность, завершившаяся в 1978 г. рождением Луизы Браун, наступилав результате оп­лодотворения in vitro единственного ооцита, аспирированного вспонтанном цикле, и переноса одного эм­бриона в полость матки. В последующихисследовани­ях была показана низкая эффективность метода при переносе лишьодного эмбриона, которая составляет при работе в естественном цикле не более8 - 15% из расчета на один перенос эмбрионов. Это привело к не­обходимостииспользования лекарственных препаратов, оказывающих стимулирующее действие нафолликулогенез в яичниках в целях получения несколь­ких преовуляторныхооцитов.Для стимуляции фолликулогенеза и получения не­скольких преовуляторных ооцитовиспользуются гормональные препараты. Рис. 5. Цикл развития доминантного фолликула Стимуляция суперовуляции в современных условиях основана на:§ стимуляции выделения собственных эндогенных гонадотропинов кломифеном;§ стимуляции экзогенными гонадотропинами (препараты из мочименопаузальных женщин - препараты человеческого менопаузального гонадотропина(чМГ), содержащие ЛГ и ФСГ (пергонал, неопергонал, хумегон) или ФСГ(метродин);§ стимуляции экзогенными гонадотропинами на фоне бло­кады собственныхгонадотропинов препаратами агонистов РГ ЛГ (декапептиды - трипторелин,бусерелин, госерелин, нафарелин и др.). Все эти препараты - синте­тическиеаналоги гонадотропных рилизинг гормонов, и число их постоянно растет. Все онив 50 - 100 раз актив­нее эндогенных рилизингов. Действие их основано наблокаде собственных гонадотропинов, что позволило некоторым авторам называтьэтот метод «стимуляция су­перовуляции на фоне гипофизэктомии», хотя на самомделе подавляется секреция только гонадотропинов, а не всех тропныхгипофизарных гор­монов. На фоне снижения уровня собственных гонадотропиноввведение экзогенных гонадотропинов позволяет регулировать рост доминантныхфолликулов и созрева­ние яйцеклеток.В повседневной практике используются так называемые «длинная схема» и«короткая схема» введения препаратов.При длинной схеме введение агонистов начинают в конце фолликулярной фазыпредыдущего цикла, под контролем снижения ЛГ в крови. После наступленияустойчивого низ­кого «плато» ЛГ приступают к введению гонадотропныхпрепаратов. При короткой схеме агонисты вводятся с 1-го дня менструальногоцикла, гонадотропины - с 3-го или 5-го дня цикла.При любом методе стимуляции суперовуляции постоянно контролируются числофолликулов, темпы их роста и вели­чина фолликулов. До начала стимуляциисуперовуляции следует про­водить предварительное гормональное обследование, ав период стимуляции - ультразвуковой (УЗ) и гормо­нальный мониторинг. Какправило, исследуется уровень эстрадиола крови и толщина эндометрия.Критериями со­зревания яйцеклетки, точнее говоря, определением времени,оптимального для забора ооцитов, являются: концентрация эстрадиола не менее350 пг/мл на 1 фолликул диаметром более 15 мм, толщина эндометрия 0,8 - 1,0см.Механизм овуляции, в естественном спонтанном менструальном циклеобеспечивающийся выбросом эндогенного ЛГ, в циклах стимуляции суперовуляцииимитируется введением ЛГ-подобного препарата - хорионического гонадотропина(ХГ), получаемого из мочи беременных женщин.Через 35 - 36 ч после введения овуляторной дозы ХГ (10000 ед.) производитсятрансвагинальная пункция яичников (ТВП) в целях аспира­ции зрелых ооцитов.После их оплодотворения in vitro и инкубации в специальной питательной средечерез 48 - 72 ч, в зависимости от интенсивности дробления, производитсяперенос эмбрионов на ранней стадии дробления в полость матки пациентки.После пересадки эмбрионов рекомендуется вводить поддерживающие дозыхорионического гонадотропина по 1500 ед. и дексаметазона по 0,25 мг,послед­ний подавляет иммунную реакцию отторжения плодного яйца. Препаратывводят до констатации беременности или до срока очередных менструаций (вслучае неудачи). ОСНОВНЫЕ ПРОБЛЕМЫ, ВОЗНИКАЮЩИЕ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ЭКО И ПЭ Программа ЭКО и ПЭ сложна в связи с тем, что она многоэтапная, но не всеэтапы можно объективно проконтролировать. Остановимся на некоторыхпробле­мах, возникающих при применении этого метода.У женщины вовремя одного естественного менстру­ального цикла можно получить всреднем не более одной яйцеклетки. Манипулируя с яйцеклеткой, ее легкопотерять или травмировать, поскольку ее разме­ры, включая corona radiata, непревышают 500 мк. Яйцеклетка может быть потеряна, например, в пипет­ке, вкапле питательной среды и т. п. Следовательно, необходим резерв клеток.В связи с этим возникла идея стимуляции так называемой суперовуляции, т. е.получения большего числа яйцеклеток (5 - 10 шт.) за счет примененияан­тагонистов эстрогенов и менопаузальных гонадотропинов ФСГ и ЛГ. Однакоувеличе­ние количества яйцеклеток влечет за собой другой от­рицательныйфактор - некоторые из них могут ока­заться неполноценными, с нарушениемоогенеза или с хромосомной патологией, а другие могут стать на путь обратногоразвития в процессе фолликулогенеза. Так что не все полученные яйцеклеткимогут быть оплодотворены и нормально развиваться.Высокая частота самопроизвольных абортов (26,2%) после ЭКО являетсяотносительным показателем возмож­ной патологии плодов. Эти данныеподтверждаются ре­зультатами исследования хромосом яйцеклеток и эмбрио­новранних стадий развития. Из­вестно, что от 35 до 50% нефертилизованных ооцитовв программе ЭКО имеют хромосомные аномалии. Выявлена высокая степеньзависимости хромосомных аномалий от возраста беременных женщин. Так,анэуплоидия диагностируется у 47% женщин после 35, лет и у 25% молодыхженщин; после кломифена - у 55%, по­сле ЧМГ - у 23%, после чистого ФСГ - у22%. Значи­тельно чаще хромосомная патология обнаруживается уфрагментированных эмбрионов (33%), чем у нормаль­ных (20%).Анализ ооцитов и эмбрионов, полученных в программе ЭКО, свидетельствует отом, что основным фактором, обусловливающим высокую частоту хромосомныханома­лий, является возраст беременных. Увеличение часто­ты хромосомнойпатологии с увеличением возраста имеет тенденцию, аналогичную таковой впопуляции, однако показатели этой патологии в 2 раза выше, чем популяционныеданные спонтанной фертильности. Высокая ча­стота хромосомных аномалий внефертилизованных ооцитах свидетельствует о том, что множественная наведеннаястимуляцией овуляция, или суперовуляция, сопровождается высокой частотойхромосомной пато­логии ооцитов, которые созревают в аномальных усло­виях вотсутствие физиологической селекции и борьбы за существование доминирующегофолликула, который подавляет рост других фолликулов в одном пуле, воз­можно,не имеющих тенденции к нормальному разви­тию.Начато внедрение в практику методики флуорисцентной (in situ) гибридизации(FISH), обеспечивающей преимплантационную диагностику врожденной хромосомнойпатологии. Отдельные бластомеры извлекаются из эмбриона и проводится их FISH-анализ. Эмбрионы, по которым получено положительное заключение, могут бытьперенесены в полость матки для дальнейшего развития, а эмбрионы собнаруженной патологией не переносятся (в целях профилактики такихзаболеваний как гемофилия, синдром Патау, Дауна, Эдвардса, Клайнфельтера,моносомия Шершевского-Тернера).Достижением самых последних лет является генная терапия, приме­нение которойвозможно и на самых ранних стадиях развития эмбрионов. При этом выполняетсяне только диагностика, но и лечение больных зародышей.Особенностью ЭКО является очень высокая частота многоплодных беременностей.Если при естественном зачатии рождается одна двойня на 70 - 80 родов, однатройня на 9000 родов и одна четверня на 50 000 родов, то после ЭКОмногоплодие, включая двойни, тройни и четверни, встречается примерно вполовине(!) всех беременностей. Хорошо известно, что много­плодие, особеннокогда беременность больше, чем двумя плодами, создает высокий риск осложненийи для матери, и для ребенка, как в процессе бере­менности, так и родов.Сегодня разработаны способы удаления (редукции) "лишних" плодов (больше двух)под ультразвуковым контролем. На самом деле лишние плоды не удаляют, а путемвведения специальных растворов добиваются того, что они перестают развиватьсяи постепенно рассасыва­ются. Эта процедура производится на 7 - 8-й неделебеременности и, как правило, не сопровождается угрозой выкидыша остальныхплодов. Рассасы­вание лишних плодов может происходить и само по себе, безкаких-либо вмешательств, также до 7 - 8 нед.Имеются данные о возможности возникновения y человека таких «ошибокоплодотворения», как гино- и андрогенез.В программе ЭКО и ПЭ, к сожалению, присутствует возможность возникновенияряда грозных осложне­ний акушерско-гинекологического характера, которыесуществуют и в естественных условиях. Основное из них - внематочнаябеременность, которая может на­ступить, даже если маточные трубы у женщинынепро­ходимы, а также в случае, если они удалены недоста­точно радикально(беременность наступает в культях труб). Вероятность наступления внематочнойбеременности в программе ЭКО и ПЭ 10,6%.Следует также знать, что нередко при лечении бесплодия методом ЭКО можетиметь место такое осложнение как синдром гиперстимуляции яичников (СГЯ).Синдром гиперстимуляции яичников (СГЯ) - комп­лекс патологических симптомов,возникающих на фоне при­менения стимуляторов овуляции, характеризующийсязна­чительным увеличением яичников, иногда разрывом их и кровотечением;наличием выпота в брюшной и плевральной полостях, возникновениемтромбоэмболий магистральных сосудов, многоплодной беременностью и пр.В последние годы, в связи с широким распространением лечения бесплодияметодом экстракорпорального оплодотво­рения, включающего как первый этапстимуляцию супер­овуляции, СГЯ привлекает все большее внимание. Первыеописания СГЯ появились еще в 40-х годах, S. Ridberg сооб­щил о значительномувеличении яичников после примене­ния гонадотропинов. В 1962 г. A. Southan,N. Ivanovsky опубликовали случаи СГЯ после приема значительных доз кломифена:в 1970 г. описаны случаи СГЯ при комбинированной терапии кломифеном игонадотропинами [Ro­land M.].Е. Raban и соавт. в 1967 г. предложили классификацию СГЯ, которой пользуютсядо сих пор все клиницисты:• легкая форма,• средней тяжести,• тяжелая.Данные о частоте СГЯ приводит Н. Li в 1993 г. в сборни­ке, посвященномусловиям репродуктивной медицины:— частота легкой формы достигает 23%,— средней тяжести - 10%,— тяжелой - 2%.J. Shenker, D. Weinstein расширили и детализировали классификацию, выделив вкаждой из трех форм еще две степени. Легкая форма: 1-я степень - клиническая симптоматика отсутствует, со­держаниеэстрадиола в плазме более 150 мкг, в моче прегнадиола выше 10 мг;2-я степень- к этим биохимическим изменениям присоеди­няется увеличение яичников до 5см в диа­метре. Форма средней тяжести: 3-я степень - боли, чувство тяжести внизу живота и изме­нения,описанные во 2-й степени;4-я степень - присоединяется тошнота, рвота, понос, разме­рыяичников - более 5 см в диаметре. Тяжелая форма: 5-я степень - к описанным симптомам присоединяется асцит,гидроторакс, яичники более 12 см в диаметре;6-я степень - состояние крайне тяжелое, помимо асцита и гидротораксаразвивается гиперкоагуляция, уменьшается перфузия почек, осложняющая­сяолигурией и почечной недостаточностью, яичники резко увеличены, отмечают ихраз­рывы и перекрут.Суммируя представленные данные, можно сказать, что, по-видимому, используемыев программах вспомогатель­ной репродукции способы гормональной стимуляциифолликулогенеза и овуляции вносят свой вклад в уве­личение числа такихошибок. Гибель зародышей в процессе имплантации может быть обусловленапере­численными выше причинами, недостаточностью вто­рой фазы цикла(изначально существовавшей или воз­никшей в процессе овариальной стимуляции),а так­же, возможно, особенностями становления иммунологических отношенийэмбриона с организмом матери, вследствие отсутствия трубного периодаразвития, в который эти отношения начинают активно устанавли­ваться («факторранней беременности» и т.п.).Трудно оценить влияние на гаметогенез и оплодотво­рение чисто внешних(экологических, антропогенных, социокультурных и т. п.) факторов. Однако они,безус­ловно, также вносят свой вклад в патологию раннего развития.Таким образом, в большинстве случаев пренатальные потери и приводящая к нимпатология у эмбрио­нов при использовании методов вспомогательной ре­продукциивозникают не необходимо и не случайно, а под влиянием определенных факторов,в том числе и приводящих к нарушению регулирующих репродук­тивный процессмеханизмов. Элиминация же ано­мальных гамет, зигот и эмбрионов - процесс какне­обходимый, так и закономерный, направленный на сохранение постоянствагенотипа популяции. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Проблема бесплодия возникла отнюдь не сегодня, она сопровождает человечествоеще с древних времен. Современная медицина достаточно глубоко изучила причинывозникновения женского и мужского бес­плодия. Разработаны как лекарственные,т.е. консер­вативные, методы терапии бесплодия, так и оператив­ные.Однако неудовлетворенность достигнутыми резуль­татами привела к разработкенового метода лечения бесплодия - ЭКО и ПЭ, который быстро завоевал по­зициюлидирующего в этом направлении.В данной работе представлены основные проблемы программы ЭКО и ПЭ и возможныеосложнения, возникающие на различных ее этапах.Хотя применение метода ЭКО и ПЭ не позволяет в целом решить возникшую встране критическую де­мографическую ситуацию, тем не менее широкое внедрениеего в практику здравоохранения поможет избавиться от бесплодия сотням тысячсупружеских пар, а следовательно, осуществить также их психоло­гическуюреабилитацию.В заключение необходимо отметить, что благодаря успехам программы ЭКОдостигнуты положительные ре­зультаты в фундаментальных исследованияхчелове­ческих гамет и эмбрионов. ЛИТЕРАТУРА 1. Экстракорпоральное оплодотворение и его новые направления в леченииженского бесплодия (теоретические и практические подходы): Руководство дляврачей / Под. ред. В.И.Кулакова, Б.В.Леонова – М., 2001, 782 с.2. Никитин А.И., Китаев Э.М., Савицкий Г.А., Иванова Р.Д., КалашниковаЕ.П. и Устинкина Т.И. Экстракорпоральное оплодотворение у человека споследующей имплантацией эмбриона и рождением ребенка. Арх. анатомии,гистологии и эмбриологии. – Л., 1987, Т.93, вып.10, с.39-43.3. Аншина М.Б., Здановский В.М. Если вам нужен ребенок. – М., 1998, 32с.4. Пшеничникова Т.Я. Бесплодие в браке. – М., 1991, 320с.5. Сметник В.П.. Тумилович Л.Г. Неоперативная гинекология. Руководстводля врачей. – М. 1999, с.476-480.

 


Дата добавления: 2015-09-27 | Просмотры: 452 | Нарушение авторских прав







При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.005 сек.)