АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

БИЛЕТ 12

1. Приготовьте 50 мл МПА.

Приготовление обычных питательных сред. МПБ. К мясной воде добавляют 1% пептона и 0,5% химическо чистого NaCl, кипятят на слабом огне 10-15 мин, для растворения веществ. Устанавливают рН среды 7,6—7,8, и снова кипятят 30-40 мин до выпадения осадка. Фильтруют через бумажный фильтр, доливают до первоначального объема водой и стерилизуют при 120 С в течение 20 мин.

МПА. В готовый МПБ добавляют 3% нарезанного агара, агар расплавляют в текучем паре в аппарате Коха, устанавливают рН 7,6, осветляют яичным белком, фильтруют через бумажный фильтр, стерилизуют 30 мин при 120.

Расскажите этапы приготовления питательных сред и классификацию.

2. Произведите посев бактериальной петлей с плотной питательной среды на сектор и с плотной питательной среды в пробирку с жидкой питательной средой. Покажите способ приготовления микробной взвеси.

Произвести посев бактериальной петлей с плотной питательной среды на сектора.

Чашку со стороны дна расчерчивают на секторы, посев производят зигзагообразными движениями от края чашки к центру. Необходимо следить, чтобы штрихи не заходили на соседние сектора.

Посев плотной питательной среды в пробирку с жидкой питательной средой.

Чашку с посевным материалом ставят перед собой крышкой вверх, левой рукой приоткрывают крышку и вводят под неё обожженную петлю. Остудив петлю, набирают посевной материал с отмеченного участка. Вынимают петлю, закрывают крышку и в левую руку берут пробирку со средой, снимают крышку, обжигают кроя пробирки над спиртовкой, погружают петлю с материалом в среду, и 3-5 сек ополаскивают в ней. Методика приготовления микробной взвеси.

Микробную взвесь готовят путем суспендирования в физиологическом растворе изолированных колоний из 24-часовой культуры, выращенной на неселективных средах до определённой концентрации по Мак-Фарланду.

3. При заборе материала у ребенка 6 лет, медсестра, вынимая ватный тампон из зева, задела небные миндалины и корень языка.

Расскажите правила забора материала при коклюше ватным тампоном и перечислить методы диагностики.

Для взятия материала пользуются двумя тампонами. Один сухой, второй смоченный питательной средой КУА. Перед взятием материала томпон вынимают из пробирки, сгибают его под углом 120º. Ребёнку предлагают открыть рот, стерильным шпателем надавливают на корень языка и вводят тампоном в полость рта до тех пор, пока конец его не прикоснется к задней стенке глотки. При этом у ребёнка появляется кашлевой рефлекс, который сопровождается выделением слизи. Затем помпон осторожно вынимают и делают посев на поверхность среды КУА в чашки Петри: сначала несколько штрихов на одном месте, а затем растирают по всей поверхности среды. Засеянные чашки ставят в термостат. Второй тампон дважды смачивают средой КУА (KH2PO4 и Na2NPO4, агар и активированный уголь). Эту смесь разливают во флаконы, перед смачиванием её растапливают на водяной бане. Материал собирают так же, как и сухим тампоном, но после взятия материала тампон помещают обратно в пробирку и доставляют в лабораторию, где производят посев.

БИЛЕТ 1 3

1. Приготовьте, окрасьте и промикроскопируйте препарат (ч. Петри № 2), сделайте вывод.

Расскажите методику окраски по Граму. Назовите цель и используемые красители, этапы окраски.

2. Выберите из выросших на трехсахарном агаре культуры, характерные для ЭПКП. Назовите признаки являющиеся дифференциально-диагностическими. Ответ поясните.

Материал из изолированных колоний засевают по поверхности скошенной части и путем прокалывания столбика среды. Посевы инкубируют при температуре 37 С в пробирках с неплотно закрытыми пробками 24 часа.

ИНТЕРПРИТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ В случае ферментации только глюкозы скошенная часть среды становится красной (щелочной), среда в столбике – желтой (кислой).

Желтый цвет скошенного агара и столбика означает, что тестируемый организм ферментирует все три сахара.

Красный цвет скоса и столбика указывает на то, что микроорганизм не является ферментером.

В случае образования сероводорода: наблюдается почернение в столбике среды.

На образование газа указывает появление пузырьков или трещин в среде.

Для итоговой идентификации проведите биохимические или другие тесты с чистой культурой организма.

После проверки рН, цвета, глубины, и стерильности, следующие организмы используют для определения качества приготовленной среды. Инокубировать свежими культурами и выдерживать при 35 ± 2 ºС 18 – 24 часа.

3. При проведении микробиологического исследования на брюшной тиф на ч. Петри со средой Эндо после посева испражнений выросли колонии красного цвета с металлическим блеском.

Перечислить необходимые исследования для подтверждения данного возбудителя.

Если бы был выявлен возбудитель брюшного тифа (Salmonella typhy), то на ЭНДО выросли бы бесцветные колонии.

Методы: исследовать сахаралитические свойства, определение антигенной структуры (Vi-антиген).

Дата добавления: 2015-09-03 | Просмотры: 1424 | Нарушение авторских прав