АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

История хирургии

Понятие о хирургии.

Х ирургией называется раздел медицинской науки, изучающий заболевания, для лечения которых применяется в основном метод механического воздействия на ткани, нередко сопровождающийся их разъединением для обнаружения патологического очага и его ликвидации. Хирургический метод применяется при заболеваниях всех органов и тканей человеческого организма, кроме того, применяются специфические хирургические методы исследования, включая кровавые и бескровные операции. Диапазон хирургических операций в современной медицине очень широк.

Современная хирургическая операция - очень сложный акт, во время совершения которого не только используется хирургический метод, но и изучаются функции больного организма. Любая, даже самая несложная операция требует обязательного присутствия медицинской сестры, на долю которой выпадает исключительная ответственность, она является правой рукой хирурга, не говоря уже о том, что операционная сестра, служит связующим звеном между хирургом и всем процессом деятельное™ хирургического блока.

История хирургии

Первые зачатки хирургии возникли в глубокой древности. При раскопках находили черепа людей каменного века с трепанационными (искусственно созданными) отверстиями. Древние египтяне умели производить ампутацию конечностей, кастрацию, владели техникой наложения неподвижных повязок при I п роломах длинных трубчатых костей. Древние индусы применяли хирургические иглы и разработали технику сшивания тканей. У них имелись разнообразные хирургические инструменты, с помощью которых производились пластические

•ерации.В У веке до нашей эры, величайший врач Древней Греции Гиппократ i.iпожил основы научной медицины и хирургии. Разработал методику лечения

гнойных ран, остановку кровотечения. При подготовке к операции он рекомендовал соблюдать строгую чистоту, употреблять чистую дождевую воду. При леченш переломов применял шины, вытяжение, массаж, гимнастику, а его хирургическа) техника была на высоком профессиональном уровне.

Врач Древнего Рима Цельс, живший в 1 столетии нашей эры, оставил большое количество сочинений энциклопедического характера, где дал стройное описан» медицинских знаний того времени. Им описаны операции, которые сохранил! актуальность и в настоящее время (например, удаление катаракты, удаление камне! из мочевого пузыря, трепанация черепа).

Гален, живший во П веке нашей эры, оставил наследие, которое господствовал* в медицине последующие 13 столетий. Он разработал методику останови кровотечения путем закручивания кровоточащего сосуда. Для наложения шво применял шелковые нити, описал операции при заячьей губе и многое другое.

Большой вклад в развитие хирургии сделал ученый и врач из Бухары Абу-Ибн Сина (Авиценна, 980- 1037 гг.), оставивший более 100 научных трудов. Особой внимания заслуживает «Канон врачебного искусства», где дана характеристик теоретической и практической медицины того времени, создал учение о< огнестрельных ранах. Большой его заслугой является усовершенствование техник! ампутации и перевязки при ней кровеносных сосудов.

Большой опыт лечения ран имел Парацельс (1493-1541). Он использова достижения химии для разработки теоретической и практической медицинь разработал методику применения вяжущих средств и многих лекарственны препаратов.

Анатомические исследования Везалия (1514-1564), открытие законо кровообращения Гарвеем (1578-1657), изобретение микроскопа Левенгуком (1632 1723) создали предпосылки для быстрого развития и медицины и хирургии.

В 1846г. химик Джексон и зубной врач Мортон показали, что вдыхание паро эфира выключает сознание и вызывает полную потерю болевой чувствительности.

В 1847 г. хирург - акушер Симпсон ввел в практику хлороформный наркоз.

Английский хирург Листер (1827- 1912), основываясь на работах Пастера о рол микроорганизмов в развитии маслянокислого и уксуснокислого брожения, пришел заключению, что причиной нагноения ран являются живые микроорганизмы микробы, попадающие в рану из воздуха. Для борьбы с микробами Листе предложил применять карболовую кислоту.

Следующими важными достижениями, способствовавшими развитию хирурги! были открытие групп крови Ландштейнером и разработка методов переливани крови Янским.

Корифеем Российской хирургии заслуженно считается Николай Иванов* Пирогов. Он впервые, в России использовал эфир для. обезболивания пр операциях во время войны на Кавказе в 1847г. В целях профилактики нагноет ран Н.И. Пирогов разработал особый режим хирургического отделения.

Особое место занимает Н.В. Склифосовский, много сделавший да распространения и развития антисептики и асептики.

С.И. Спасокукоцкий (1870-1943) известен фундаментальными работами п хирургии гнойных заболеваний легких и плевры.

Н.Н. Бурденко (1878-1946) внес значительный вклад в разработку вопроса шоке, лечении ран, военно-полевой хирургии, нейрохирургии. Основал инститз нейрохирургии.

Ю.Ю. Джанелидзе (1883-1950) один из пионеров хирургии сердца, автор оригинальных работ, посвященных ожогам, сухожильной и костной пластики, кишечной непроходимости, неотложной хирургии.

11еоценимы заслуги и целого ряда хирургов Советской школы: СП Фёдорова, отца и сына Вишневских, АН Бакулева, Елизарова и др.

Определённый вклад в медицину внесли и хирурги Кыргызской Республики.

Так, особое место принадлежит Ахунбаеву И.К. (1908 -1967) основоположнику грудной хирургии Кыргызской Республики. Первым в Республике произвёл операцию на сердце, магистральные кровеносные сосуды. Автор более 170 научных работ. За монографию «Очерк о шоке» удостоен Государственной премии Кыргызской ССР. Разработал новую методику лечения болезни эндемического юба, эхинококкоза.

Эгембердиев З.Э. автор более 100 научных работ, 16 методических рекомендаций работал в области ожоговой хирургии.

Особо следует отметить и таких хирургов как: Саенко АИ, Медведев АН, женщин хирургов: Рыскулову КР, Айдарбекову РИ и др.

Плодотворно работают в настоящее время: Мамытов ММ один из ведущих нейрохирургов, автор более 100 научных трудов, одного изобретения, трёх рационализаторских предложений, 4 учебных пособий для студентов и врачей.

Мамакеев ММ автор более 200 научных работ, в том числе 8 монографий определённый вклад внёс в хирургическое лечение острого холецистита и осложнений жёлчно - каменной болезни.

Кожахматов СК автор более 100 научных работ, в том числе 6 изобретений, 3 монографии, 10 методических рекомендаций им предложены принципиально новые методы лечения повреждений тазобедренного сустава и других повреждений.

Акрамов ЭХ автор более 130 научных работ по вопросам хирургии, анестезиологии, реанимации и трансплантации, соавтор 4 монографий

Джошибаев СД один из ведущих современных кардиохирургов

Бебезов ХС большой вклад внес в изучение вопросов хирургии лечения рака лёгкого, пищевода.

Фейгин ГА плодотворно работающий в области отоларингологии. Следует отметить плеяду более молодых хирургов таких как: Алиев ГК, Казакбаев АТ, Мадаминов AM, Байтиков МТ, Матеев МА, ИсманкуловА.

Деонтология в хирургии. Деонтология - учение о должном. Под медицинской деонтологией принято понимать совокупность определенных правил поведения медицинских работников по отношению к пациенту и его родственникам с целью достижения максимального и оздоровительного эффекта. Хирургическая деонтология— но раздел медицинской деонтологии, направленный, прежде всего на улучшение постановки хирургического лечения пациентов, уменьшение или даже снятие психической пред-и послеоперационной травмы.

Основоположник хирургической деонтологии Н.Н.Петров следующим образом формулирует ее основные положения:

3. гармоническая постановка работы, основанная на разумном распределении

4. прав и обязанностей основных работников хирургического учреждения;

?) постоянный учет психики пациента для исхода проводимого лечения и охрана

этой психики, причем следует предупредить психическую травму;

согласование научных знаний о различных болезнях с конкретными

особенностями каждого подлежащего лечению пациента, т. е. установк возможно более полного индивидуального диагноза и выработка ясного план предполагаемого лечения;

5. добросовестное проведение в жизнь принципа «хирургия для пациентов, а не пациенты для хирургии»;

6. выявление и обсуждение совершенных ошибок, и накопление, таким образом, опыта.

Указанные выше требования относятся не только к хирургу, но и к медицинской сестре.

При лечении пациентов хирургического профиля большая роль отводите медицинской сестре. Она должна четко выполнять свои рабочие обязанности, быт скромной и простой в обращении с пациентом, всегда опрятной, не злоупотреблят косметикой, уметь наладить контакт с самым капризным и раздражи тельным пациентом, заслуживать уважение пациентов, быть весьма осторожной пр беседе с пациентом, о его заболевании, особенно онкологического профиля; информаци о характере заболевания, методах лечения, прогнозе и т. д. должны полностью совпадат с мнением лечащего врача и других товарищей по работе.

Гуманизм, любовь к людям и своей профессии должны быть отличительно чертой медицинской сестры. Во многих случаях результат хирургического лечени зависит от своевременно и правильно оказанной первой помощи. Правильна подготовка пациента к операции, организация работы операционного блок! внимательный уход в послеоперационном периоде являются залогом успешног лечения пациента. На этих этапах медицинская сестра принимает активное непосредственное участие в лечении. Хороший уход предупреждает возможны осложнения, нередко опасные для жизни. Грамотное выполнение правил ухода з пациентами с хирургической патологией является одним из важных звенье! хирургической мед сестринской помощи.

Глава 2

Профилактика хирургической инфекции.

До середины 19 века более 80 % оперированных пациентов умирало от гнойных нилостных и гангренозных осложнений. После открытий JI. Пастера началось бурное ипвитие микробиологии и хирургии. На основании накопленных наблюдений сталс итк), что причиной многих раневых осложнений являются микроорганизмы \нглийский хирург Листер разработал методику уничтожения микробот тходящихся в воздухе (воздушная инфекция), а также на предмета) оприкасающихся с раневой поверхностью, в том числе и на руках хирурге контактная инфекция)., Л истер показал, что гнойные осложнения развиваются i ючультате попадания бактерий в ткани через поврежденную кожу. Он быт уОежден, что микробы попадают в рану главным образом с воздухом, и считал, чтс •ели защитить рану от проникновения в нее воздуха наложением герметической повязки, то можно предупредить заражение.

В настоящее время различают два источника хирургической инфекции приводящей» пойному воспалению раны: эндогенный и экзогенный

7. эндогенной (внутренней) - считается инфекция, находящаяся внутри организма или на его покровах (кожа, кариесные зубы, желудочно-кишечный тракт, дыхательные пути). Эндогенная инфекция может попасть в рану либо непосредственно, либо пс сосудистым (кровеносным или лимфатическим) путям. Эндогенный источник встречается значительно реже, чем экзогенный, но и его значение в развитии послеоперационных осложнений чрезвычайно велико.

8. экзогенной (внешней) - считается инфекция, попадающая из внешней среды окружающей пациента.

1’л шичают несколько способов экзогенного инфицирования:

конт актная инфекция - наиболее распространенная из них. Инфекция попадает в рану с предметов, соприкасающихся с раной. Инфицирование может произойти как во время травмы, (микробы попадают в рану с повреждающего предмета), так и во время оказания помощи и лечения (микробы попадают с не стерильных инструментов, перевязочного ма териала, предметов, окружающих пациента).

пмпл антапионная инфекция - развивается после вживления протезов и наложения швов, к н военное время - при внедрении инородных тел (осколки, щепки, обрывки одежды) Инфекция дает о себе знать, как правило, спустя длительный срок после ранения или операции. Возникновению имплантационной инфекции способствует снижение защитных сил организма в результате применения лекарственных препаратов или при неблагоприятных условиях (утомление, голодание, переохлаждение), тчлу шно-капельная инфекция - возникает при попадании в рану разлетающихся пс нтдуху капелек слюны или при повреждении перчаток и попадании «перчаточного сока».

Для предупреждения попадания в рану инфекции осуществляется комплекс специальных мер получивших название антисептика и асептика. Антисептические мероприятия осуществляются в комплексе с асептическими. Однако это деление штстаточно условно, и в ряде практических случаев разграничение асептики и (шггисептики оказывается затруднительным.

Под антисептикой понимают ряд мер, направленных на максимальное уменьшение ■числа микробов в ране и в организме в целом, а также предупреждение заражения ф|мнм и лечение инфицированных ран с помощью различных методов и средств.

Различают следующие методы антисептики: физическую, механическун химическую и биологическую.

Основная задача физической антисептики состоит в создании условш неблагоприятных для жизнедеятельности микробов.

Для этой цели производят:

9. наружное дренирование инфицированной раны при помощи тампонов дренажей

10. воздействуют на рану различными физическими методами: высушивани тепловые и световые процедуры.

Выход жидкостей из раны в повязку обеспечивается, главным образо! применением гигроскопической марли. Гигроскопические свойства марли значитель* усиливаются при смачивании её гипертоническими растворами (5-10 % раствс хлорида натрия, 20-40 % раствора сахара и др.) Используют также дренажи i пластикатных, резиновых или стеклянных трубок. помощью таких дренаже можно не только обеспечить эвакуацию гнойного содержимого, но и осуществи] промывание полостей антисептическими растворами, а также вводить антибиотик Отток содержимого через дренаж может происходить:

11. пассивно - в повязку или в сосуд с антисептическим растворо! расположенный ниже раны

12. активно - путем’ аспирации при помощи различных отсосов.

Высушивание достигается введением в рану сахара или меда, лечение раны б< наложения повязки, ультрафиолетовое облучение также усиливает дегидратацт оказывает бактерицидное действие и стимулирует регенеративные процессы. Механическая антисептика - заключается в первичной хирургической обрабоп раны: иссечении краев и дна раны, удалении нежизнеспособных тканей инородных тел. Такого рода обработка носит название «туалет раны», механической антисептике относится метод промывания ран и полосте антисептическими растворами.

Химическая антисептика - это применение различных химических веществ бактерицидным или бактериостатическим действием. Помимо воздействия н микрофлору, эти вещества в большинстве случаев обладают биологически действием на ткани в области применения (в ране или на организм в целом) пр всасывании из раны или при общем применении. Примером этого могут служит сульфаниламидные препараты. Применяя химическую антисептику, нужн стремиться к тому, чтобы общее и местное действие химических антисептико было достаточно безопасным для макро организма и его клеток и губительны для микробов. Это достигается строго дозированным применением химически антисептиков. В группу химических антисептиков входят препараты, применяемы для обеззараживания рук, операционного поля, инструментов и др.ч Галлоидсодержащие вещества: —'

Хлорацид - применяется 0,5 % раствор для обеззараживания рук хирург, стерилизации резиновых перчаток, катетеров, дренажей, лечения инфицированны ран, промывания гнойных полостей.

Хлорамин Б - применяется 2 % раствор для тех же целей.

Спиртовой раствор йода - применяется 5 - 10 % раствор как дезинфицирующе) средство для обработки операционного поля, смазывания краев ран.

Раствор Люголя - раствор йода и йодида калия в спирте или воде. Применяете! для стерилизации кетгута и смазывания слизистых оболочек.

11 оденет- водный раствор смеси алкилсульфатов натрия с йодом.

Применяется 1 % раствор с дополнительным разведением в 3 раз, дистиллированной водой для обработки операционного поля.

Окислители:

Раств ор перекиси водорода 30 - 3 % применяется для дезинфекции предмета ухода, для промывания гнойных ран.

I [срм анганат калия - применяется в виде 0,1 - 0,5 % раствора для промывани: ран и полостей как дезинфицирующее средство. В 2 - 5 % концентрацш используется как дубящее средство.

(или тяжелых металлов:

I'' ути дихлорид - сулема, применяется для дезинфекции предметов ухода, перчато] и растворе 1:1000.Сулема сильный яд, работать с ней нужно осторожно, храните) н списке А.

Ли оцид - обладает выраженным антисептическим действием, применяется дл) обработки рук (1:1000), для стерилизации инструментов (1:1000).

< сре бра нитрат - применяется как дезинфицирующее средство для промывания ран мочевого пузыря и т.д. в концентрации 1:500 - 1:1000. Для прижиганю и убыточных грануляций используют 10 % раствор.

П ротаргол а применяется как вяжущее, антисептическое и противовоспалительно* средство в виде 1 - 3 % раствора для введения в мочевой пузырь при егс моспалении.

Ко лларгол - используют как дезинфицирующее и противовоспалительное средстве и виде 0,2 % раствора для промывания гнойных ран.

(пирты:

Н'ил овый или винный спирт. Оказывает как дезинфицирующее, так и дубяще«действие. Применяется для обработки рук и операционного поля в виде 70 % & ‘>6 % растворов.

Формальдегиды:

Фо рмалин - представляет собой 40% водный раствор формальдегида, применяете* /шя дезинфекции инструментария (0,5 % раствор). Входит в состав тройного •аст-вора (формалина 20 г, карболовой кислоты 10 г, карбоната натрия 30 г на 100С ил дистиллированной воды).

(хнолы:

I¹' мол - карболовая кислота 3-5% раствор применяется для дезинфекции предметов /\ ода, стерилизации инструментов, резиновых перчаток. Входит в состав тройного

метеора.

кготь - продукт сухой перегонки коры березы, оказывает антисептическое и Ч mi швовоспалительное действие, входит в состав мази Вишневского.

Красители:

'пиа нол - применяется в разведении 1:500 - 1:1000 для лечения гнойных ран. домывания гнойных полостей.

■ рннп иантовый зеленый - применяется 0,1 -0,2 % спиртовой раствор для |м;||ывания кожи при гнойничковых заболеваниях.

>1< I ип еновый синий - используется как антисептическое средство в 1 - 3 °/ <1 миртовом растворе при ожогах и гнойничковых заболеваниях кожи.

11 1 «hi (водные нитрофурана:

-В р щ иллин - применяется в растворе 1:5000 для лечения гнойных ран, промывания III щостей, активно действует на анаэробную флору.

Фурагин - применяется в 0,1 % растворе, особенно при заболеваниях оронхиально дерева.

Методы применения антисептических средств можно разделить на группы:

а) воздействие антисептика на поверхность раны

б) введение препарата в полости тела

в) парентеральное (внутримышечное, внутриартериальное или внутривенно введение

г) введение через пищеварительный тракт

Биологическая антисептика направлена на повышение защитных сил организма также на создание условий, неблагоприятных для развития в ране микроорганизме Препараты биологической антисептики подразделяется на две основные группы: Первая группа - препараты, действие которых направлено непосредственно прот; микробной клетки или ее токсинов

Вторая - группа препараты, действующие опосредованно, через макро организм Непосредственно на микроб и его токсины действуют:

13. Антибиотики - вещества с выраженными бактериостатическими и. бактерицидными свойствами.

14. Бактериофаги и антитоксины, вводимые, как правило, в виде сывороток. Опосредованно через макро организм действуют - вакцины, антитоксины, переливая крови и плазмы, введение иммунных глобулинов, препаратов металтиоурацила и р Следует особо отметить протеолитические ферменты, применяемые при лечеи раны. Уничтожая нежизнеспособные ткани, они лишают микробные клет питательных веществ, способствуя тем самым более быстрому заживлению раны. Антибиотики представляют собой вещества микробного, животного и растительно происхождения, избирательно подавляющие жизнедеятельность микробов.

Различают следующие группы антибиотиков:

15. группа пенициллина

16. стрептомицина

17. тетрациклина

18. левомицетина

19. сульфаниламидов и другие

Данные вещества вмешиваются в процесс образования и функции оболоч микроорганизмов, синтез рибонуклеиновых кислот и белка, нарушая е нормальное течение.

По характеру действия различают антибиотики:

20. узкого (пенициллины)

21. широкого (тетрациклины)

22. промежуточного (макролиды) спектра действия

Наиболее распространенными путями введения антибиотиков являют внутримышечный, оральный и внутривенный. Помимо этого, антибиотики. ввод внутрилёгочно, эндобронхиально, эндолюмбально, внутриартериально, внутрикостно др. Для повышения эффективности лечения обычно комбинируют пути введен антибиотиков.

Асептикой называется метод хирургической работы медицинских cecri обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операционную рану. Бактерии окружают человека повсюду, они находятся:

23. на окружающих предметах

ч • в воздухе

24. в воде

| • на поверхности тела I • в содержимом внутренних органов

1Ц> всей хирургической работе требуется соблюдение золотого правила асептики. к> it>рое формулируется так: все, что приходит в соприкосновение с раной, должно 'н.иь с вободным от бактерий, т.е. стерильным.

Асептические мероприятия должны учитывать наличие двух источников (пфекции: экзогенного и эндогенного.

1|'<-дупреждение воздушной инфекции в хирургических отделениях зависит от:

25. устройства и оборудования отделения

26. организации работы в них

27. проведения мероприятий, направленных на уменьшение загрязнения воздуха микробами

28. уничтожение уже имеющихся в нем бактерий.

Поскольку операционный блок находится под непосредственным наблюдением i.ipiuefi операционной медицинской сестры, она должна хорошо представлять die его устройство^

Операционный блок должен быть полностью изолирован от других подразделений и служб больницы, сохраняя при этом удобные связи с >1 делениями анестезиологии, реанимации, палатными отделениями хирургического ||н>филя, приемным отделением. Для создания условий асептики при проведении терапий в операционном блоке должно осуществляться строгое и четкое нитрование помещений.

I чер вой зоне относятся помещения, к которым предъявляются самые строгие в и ношении асептики требования:

29. операционные залы

30. стерилизационные (при отсутствии ЦСО).

в торой зоне относятся помещения, непосредственно связанные дверью с миграционной:

31. предоперационная

32. наркозная.

I' I пс тьей зоне относятся:

33. помещения для хранения и приготовления крови

34. для хранения переносной аппаратуры

35. протокольные

36. комната хирурга

37. медицинских сестер

38. лаборатория срочных анализов

39. чистая зона санпропускника.

И' ше ртая зона включает помещения, вход в которые не связан с прохождением и |»1 санпропускник:

40. кабинет заведующего

41. комната старшей медицинской сестры

42. помещения для грязного белья.

¹ ■ ■ щонная должна быть связана с предоперационной и наркозной, а также с

1н >мощью передаточного окна с стерилизационной^

Предоперационная и наркозная с помещениями третьей зоны связаны чере коридор.

Основное назначение операционной - проведение оперативных вмешательств. I помещении самой операционной также соблюдается принцип зонирования. Наиболе удаленной от входа должна быть рабочая зона медицинской сестры. Tai располагается:

43. «большой» инструментальный стол для резервного стерильног инструментария

44. столик для шовного материала

45. столик для растворов

46. подставки для биксов

47. «малый» инструментальный столик

В центральной зоне расположен операционный стол. У головной его част размещаются анестезиологи с аппаратурой.

Предоперационная предназначена для мытья рук персонала. Возле входа в не должно быть выделено место для хранения бахил.

Наркозная предназначена для введения больного в наркоз и для подготовк анестезиологов к работе в операционной. Здесь анестезиолог и анестезист надеваю бахилы, моют и обрабатывают руки, готовят системы для трансфузий, проводя пациенту необходимые исследования.

Аппаратная предназначена для установки дистанционно действующей аппаратурь контрольно-диагностической и измерительной.

Протокольная используется для записи произведенного оперативного вмешательств и карты ведения наркоза.

Санпропускник персонала предназначен для санитарной обработки непосредственн участвующих в операции хирургов, врачей — анестезиологов, анестезисто! операционных медицинских сестер и младшего мед персонала. Санпропускни разделен на две части: «грязную» и «чистую». В грязной зоне персонал раздеваете и оставляет одежду в индивидуальных шкафчиках. В чистую зону можно попаст только после душевой комнаты. Там размещают специальные шкафчики с гнездам для пакетов с чистым бельем, костюмами и обувью операционного блок< Количество шкафчиков для раздевания в душевых кабинах обычно равн количеству состава операционной бригады. В операционной должно находитьс минимальное количество оборудования, необходимого для проведения операции. I операционную ограничен доступ посторонних лиц и максимально сокращен» передвижение персонала. Для оперирующей бригады обязательна специальная одежда. Нос и рот должны обязательно укрываться масками. Для проведении операций повышенной сложности в настоящее время используют специальны* барооперационные, где операции производят под повышенным давлением. В операционных обязательно должны быть в наличии:

• подставки под тазы и тазы для мытья рук

• табуреты

• стерилизаторы различного размера для кипячения инструментов

• аккумулятор с лампой для аварийного освещения операционных

Во внерабочее время в операционной никто не должен находиться, двери ведущие в нее, запирают, входить в операционную разрешается только i полотняных чулках, стерильных халатах, колпаках и масках. Во время операцш соблюдается строгая чистота и аккуратность: марлевые шарики, пропитанньи

,_ш |М||1||гидщид1имимяди|ШШ1И1УЦИИИИВЙИЙ1

кронмо или раневым отделяемым, использованные салфетки бросают в специальные

48.. Ш .1 Экссудат и гной, удаляемые во время операции, собирают отсосом в 1.1 к рытые сосуды. В операционной должна поддерживаться определенная ic-мисратура, влажность и чистота воздуха. Температура не должна быть ни.щипком высокой, так как это может вызвать потливость больного и операционной >1 >и гады, ни слишком низкой, так как это может привести к охлаждению пациента

49. создать условия для осложнений. Оптимальной считается температура 22°- 25°С ipu влажности 50% и вентиляции, обеспечивающей обмен воздуха до 3-4 раз в;угки.

Исследования бактериального загрязнения воздуха операционной показывают, что мижчество колоний в посевах воздуха резко возрастает к концу операционного дня I уменьшается после проветривания и влажной уборки. Но такие методы не шляются достаточными средствами предупреждения микробного заражения. Для к-шнфекции воздуха операционной и перевязочной рекомендуется пользоваться шк герицидными ультрафиолетовыми лампами из стекла, дающим коротковолновое I тучсние. Длительность облучения зависит от мощности лампы. (ОБН - 200 или >1.11 350 - один облучатель на 30 м помещения. ОБН - 150 или ОБН-ЗОО-на 60 .1 нключается на 2 часа). Лампы целесообразно размещать по ходу движения потока тщуха. Одну - две лампы следует поместить над входной дверью, чтобы воздух, нн гупающий в операционную, подвергался бактерицидному действию. Каждая шмиа создает вокруг себя «стерильную зону» диаметром 2-3 м. Недопустимо 41 'мощение ламп ближе, чем на 2 м от операционного стола, поскольку длительное ну чсние раневой поверхности и органов может привести к ожогам. Для • I р.ширования бактерицидных ламп рекомендуются алюминиевые отражатели.

>(>лучение помещения в присутствии людей не должно превышать I К часов. Лампы должны гореть в течение всей уборки операционной и не менее

часа после ее окончания, так как во время уборки в воздух поднимается к Mii.inoe количество микрофлоры. Целесообразно проводить комбинированное |(> пучение воздуха бактерицидными лампами с проветриванием, если окна нп опционной выходят в экологически чистое место. Такое облучение с ронстриванием снижает количество микроорганизмов в воздухе на 75-90%. '«(юга операционной должна быть чётко организована, так чтобы ничто не мешало I'.шильному проведению операции, она должна протекать спокойно, без излишней "рчиливости и неоправданной медлительности. Сестра, работающая в с рационной, несёт полную моральную и юридическую ответственность за м шическую подготовку к операции и асептику в процессе её хода. Поэтому она

Mia быть требовательна в отношении соблюдения правил асептики, как к себе,

и ко всем находящимся в операционной. Внимание должно быть обращено на ичиую гигиену, аккуратность и чистоплотность участников операции. Еще большая и"-к гвенность возлагается на плечи старшей операционной сестры, которая пижма следить за состоянием и работой операционного блока, за своевременной " у(юркой и правильным её содержанием.

1< шнфекция, предстерилизационная обработка и стерилизация.

'мслия медицинского назначения, подлежащие стерилизации, проходят три этапа 5р*ботки:

I - дезинфекция |

предстерилизационная обработка г

I 1 - стерилизация \ ^;V,. 5

Уничтожение патогенных микроорганизмов называется дезинфекцией. Дезинфекщ подвергаются изделия, использованные при гнойных операциях, инвазивнь процедурах у инфекционного больного, а также у пациентов - носител патогенных микроорганизмов, и изделия, используемые для введения живв вакцин. В этих случаях дезинфекцию выполняют перед предстерилизационж очисткой. Дезинфекция предотвращает распространение патогенных микроорганизм во внешней среде, заражение ими пациентов и медицинского персонала. Существуют физический и химический методы дезинфекции.

К физическому методу относят дезинфекцию:

50. обжиганием

51. кипячением.

Сжигание - надежный метод уничтожения возбудителей заболеваний. Химическдезинфекция рекомендуется для изделий из стекла, коррозийно-стойкого меташ полимерных материалов, резины.

Для нее используют химические средства:

52. кислоты

53. щелочи

54. окислители

55. галогены

56. фенол и его производные

57. хлоргексидин

58. спирты

59. альдегиды

60. красящие вещества

Следует принять во внимание, что универсального дезинфицирующего средства существует.

В настоящее время допущены к использованию для химической дезинфекц медицинских изделий, в том числе и хирургических инструментов, следующ химические вещества:

61. 3 % раствор хлорамина

62. 6 % раствор перекиси водорода

63. 6 % раствор перекиси водорода с 0,5 % раствором моющего средства

64. 3 % раствор формалина (по формальдегиду)

65. 0,5 %дезоксон-1 (по надуксусной кислоте)

66. 2,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата (гибитан).

При вирусных инфекциях дезинфекция хирургических инструментов и издел! проводится путем их замачивания в этих растворах. Экспозиция в раство хлорамина, перекиси водорода, перекиси водорода с 0,5 % раствором синтетическо моющего средства (СМС), формалина, дезоксона -1 составляет 60 мин, в гибитанй 30 мин.

В последние годы разрабатываются новые принципы дезинфекции, которые успехом используются на практике. Широко применяются комплексы йода высокомолекулярными полимерами, например, поливинилпирролидоном (йодофор! при этом повреждающее действие йода на кожу снижается, а дезинфицируют повышается. Особое преимущество йодофоров заключается в том, что они окрашивают кожу на длительное время. Примером таких комплексов являет

одопирон - антисептик широкого спектра действия. Для дезинфекции хирургические нструментов сейчас с успехом применяются:

67. 2,5 % глутаровый альдегид,

68. 0,5 % раствор гипохлорита натрия,

69. электрохимически активированнный 0,05% и 0,1 % (по активному хлору)

70. раствор натрия хлорида (нейтральный анолит),

71. 50 % раствор катамина АБ,

72. концентрат (25 % раствор) полисепта,

73. дезоксон - 4

74. сульфохлорантин

75. 0,6 % раствор (по активнодействующим веществам - АДВ) гипохлорит; кальция

) России разрешены для дезинфекции препараты, выпущенные многими известным!’ прубежными фирмами такими как:

76. викрон

77. сайдекс

78. иресепт

I • гигасепт ФФ

79. лизетол АФ и др

1< которые из перечисленных препаратов применяются для дезинфекции не толькс 111 слий медицинского назначения, но и для дезинфекции предметов ухода, мебели " и.я и помещений лечебно - профилактических учреждений.

Краткая характеристика отдельных препаратов и режим их применения:

> п кпч химический активированный раствор натрия хлорида (нейтральный анолит)- >«•< цветная или прозрачная желтоватая жидкость с запахом хлора, содержащая и.к пкоактивные соединения хлора с кислородом и водородом, кислородно- юдородные комплексы, свободные радикалы, атомарный кислород и озон придакл антимикробные свойства. Нейтральный анолит содержит 0,05 и 0,1 °Л наивного хлора, заданная концентрация активного хлора используется бе: in шедения, обладает бактерицидными, фунгицидными и вирулоцидными свойствами. 1г||1-))альный анолит относится к малотоксичным соединениям. Его хранят е in к рытой стеклянной, пластмассовой или эмалированной ёмкости с крышкой е гмном прохладном месте не более 1 суток после приготовления, применяют Однократно.

I и 11 ’ и ьный анолит предназначен для проведения:

80. текущей дезинфекции

81. заключительной и профилактической дезинфекции в ЛПУ

82. профилактике внутрибольничной инфекции у новорожденных и детей раннегс возраста в детских стационарах

83. для заключительной дезинфекции в отделениях родовспоможения и очагах инфекционных заболеваний бактериальной (включая туберкулез), вирусной этиологии (включая гепатиты,ВИЧ-инфекцию), при кандидозах дерматомикозах,

84. дезинфекции изделий медицинского назначения

si'*' п. стены, пол и санитарно-техническое оборудование протирают ветошью [моченной в нейтральном анолите из расчета 150 мл/м² (поверхности) и к¹ мл/м ² (санитарно-техническое оборудование).

Посуду освобождают от остатков пищи и погружают в емкость с нейтральнь анолитом при норме расхода 2 л на 1 комплект. Емкость закрывают крышке После обработки посуду промывают проточной водой до полного исчезновен хлора или выдерживают в двух емкостях с водой по 5 Мин в каждой.

Белье замачивают в емкости с нейтральным анолитом при норме расхода 5 л на кг сухого белья. Емкость плотно закрывают крышкой. После дезинфекции бел стирают и прополаскивают.

Уборочный инвентарь (ветошь) замачивают в емкости с нейтральным анолитс Емкость плотно закрывают крышкой. После окончания дезинфекции Beroi прополаскивают в воде и высушивают.

Дезинфекцию изделий медицинского назначения проводят погружением их в анол в закрытой емкости с обязательным заполнением полостей и каналов. I окончании дезинфекции изделия промывают теплой проточной водой в течен 5 мин или выдерживают в двух емкостях с водой по 3 мин с заполнени полостей и каналов изделий.

Дезинфекцию предметов ухода за пациентами проводят погружением нейтральный анолит в плотно закрытой емкости. По окончании дезинфекц изделия промывают проточной водой до исчезновения запаха хлора.

Запрещается проводить дезинфекцию помещения, мебели, санитарно-техническс оборудования в присутствии пациентов.

Дезоксон-4 - бесцветная жидкость со специфическим запахом уксуса. Он содерж 5 - 9 % надуксусной кислоты, 12 -22 % перекиси водорода, уксусную кислоту стабилизирующие добавки. Дезоксон-4 обладает высокой бактерицидне вирулицидной, фунгицидной и спороцидной активностью. Его применяют д проведения заключительной дезинфекции в инфекционных очагах и лечебн] учреждениях при кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериальной вирусной этиологии, туберкулезе, грибковых заболеваниях,' сибирской язве, а так; для текущей дезинфекции в местах общего пользования в отсутствии людей, д дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения. Концентрац препарата зависит от вида возбудителя: от 0,025 - 0,1 % (по АДВ) при воздуш! капельной инфекции, до 0,5-1 % при туберкулезе и 1,2% при сибирской язве. Виркон - многокомпонентный препарат, активно действующим веществом препара является персульфат калия. Виркон представляет собой порошок розового цве хорошо растворимый в воде. Растворы виркона обладают дезинфицирующими моющими свойствами, имеют приятный запах. При соблюдении време! дезинфекции 2 % раствор не коррозирует металлы и не обесцвечивает ткани. Ср< хранения препарата в виде порошка - 3 года, рабочих растворов - 1 сут. Виркс обладает бактерицидной активностью в отношении грамотрицательнь микроорганизмов в концентрации 0,1 % при времени воздействия 10 мин, концентрации 0,25 % в течение 30 мин инактивирует вирус полиомиелита и ро’ вирусы. Препарат проявляет активность в отношении ВИЧ, вируса гепатита Вид Изделия, нуждающиеся в дезинфекции, погружают в 1 % раствор виркона (50 г 1 5 л воды) на 10 мин, затем ополаскивают проточной водой.

Если после проведения дезинфекции медицинские изделия используются только стерильном виде, проводится их предстерилизационная обработка, а зат(стерилизация автоклавированием, сухим жаром, в парах формалина. СульФохлорантин - порошок белого цвета с умеренным запахом хлора. Водн растворы сульфохлорантина прозрачны, бесцветны, обладают смачивающими

нищими свойствами. Рабочие растворы сохраняют активность в течение 24 ч < «омента приготовления. Препарат обладает широким спектром антимикробногс н (к тия и высоко активен в отношении и грамотрицательных i р.шположительных бактерий, микобактерий туберкулеза, дерматофитов, вирусов. Пс к ишфицирующей активности сульфохлорантин в 5 раз превосходит хлорамин. Пр* трусиых инфекциях применяется 0,5 % раствор для дезинфекции инструменте! ии рух<ением и замачиванием на 60 мин.

85. шсстны и другие дезинфицирующие препараты: пресепт, лизетол, гигасепт.

11куц г срилизационная очистка.

М'мицинские изделия после дезинфекции подвергают пред стерилизационно?

■ •пн гкс с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также и ков лекарственных препаратов.

86. и чегерилизационнную очистку осуществляют ручным или механизированны?^ пособом (с помощью специального оборудования) как правило, проточной водо?

I применением СМС.

Цс иннЬс кция и предстерилизационная очистка хирургических инструментов ручньш рио собом:

< к иащение:

• емкость с дезинфицирующим раствором

• термометр водный

• емкость с моющим раствором

• марлевые салфетки, ерши, ватно-марлевые тампоны

i качестве моющего раствора можно использовать следующие комплексы пчщичество компонентов указано для приготовления 1 л раствора):

.полот-5 г, вода питьевая - 995 мл, 27,5 %р-р перекиси водорода-17 мл, питьевая иода 978 мл, СМС - 5 г («Лотос» и др.)

10% р-р перекиси водорода-16 мл,питьевая вода- 979мл,СМС-5 г ^{1 1} "о р-р перекиси водорода - 14 мл, питьевая вода- 981 мл, СМС - 5 г i ' % р-р перекиси водорода - 160 мл, питьевая вода - 835 мл, СМС - 5 г [lot к-довательность действий:

■ замачиваем в 3 % растворе хлорамина на 60 мин;

- ополаскиваем проточной водой 0,5 мин;

■замачиваем в моющем растворе «Биолог» при 40 С⁰ с полным погружением изделия на 15 мин, либо замачиваем в растворе одного из моющих средсгв

- мытье каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно­марлевого тампона 0,5 мин;

ополаскивание под проточной водой после применения моющего раствора <«Биолот» 3 мин, после применения моющего средства-10 мин.

- ополаскивание дистиллированной водой 0,5 мин;

сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 85° С дс полного исчезновения влаги.

1|'пмскение католита для пред стерилизационной очистки инструментов.

^птлит применяют для пред стерилизационной очистки изделий медицинского м имчения из стекла и металла.

11оследовательность действий:

хирургические инструменты замачивают в католите на 45 мин;

каждое изделие моют в католите с помощью ватно-марлевого тампона или

ерша 0,5 мин;

- каждое изделие ополаскивают проточной водой 5 мин, а зат дистиллированной водой 0,5 мин.

Режим пред стерилизационной очистки считают эффективным, если на изделш подвергнутых обработке, не обнаружены остатки крови и щелочных компонент моющего препарата.

Контролю на эффективность очистки подлежит не менее 1 % каждого вида издел медицинского назначения, обработанных за сутки (не менее 3-5 единиц каждо наименования).

Для контроля качества предстерилизационной очистки использу] азопирамовую и фенолфталеиновую пробы.

После постановки проб изделия тщательно ополаскивают водой для удален остатков реактивов. При положительной пробе на кровь или моющее средство в< группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получен отрицательных результатов.

Для исключения:

остатков крови при проверке качества предстерилизационной очист инструментов ставят амидопириновую и азопирамовую пробы остатков щелочных компонентов моющего препарата - фенолфталеиновую пробу Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинскс назначения с помощью азопирама.

Инструкция по приготовлению 100 мл раствора азопирама.

Реактивы: амидопирин в порошке (медицинский), солянокислый анилин, 3 % раств перекиси водорода, 96 % этиловый спирт (ректификат), 30 % уксусная кислота. Посуда, оборудование: мерная посуда, (стаканы, цилиндры), флаконы из темнс стекла вместимостью 0,1 л с плотно пригнанными пробками, стеклянная палоч для размешивания растворов, весы с разновесом, рассчитанные не более чем 200 г при точности измерения до 0,01 г.

Приготовление исходного раствора: оба порошка (10 г амидопирина и 0,1 - Oi хлоридина) высыпают в мерную посуду объемом 100 мл и смешивают. Зат добавляют 50 - 60 т 96 % этилового спирта и смешивают до полис растворения всех ингредиентов. Таким образом, азопирам содержит 10 амидопирина, 0,10 — 0,15 % хлорида анилина, остальная часть приходится на 96 этиловый спирт.

Исходный раствор хранят в плотно закрытом флаконе в темноте при 4° С холодильнике) не более 2 мес, в темноте при комнатной температуре (18-23°С)- более 1 мес. Умеренное пожелтение раствора в процессе хранения без выпаде* осадка не снижает его рабочих качеств. Окислителем в реакции индикац является 3 % перекись водорода.

Приготовление рабочего раствора: непосредственно перед проверкой качес очистки изделия готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количес азопирама и 3% перекиси водорода (1:1) и 3-4 капли 30% уксусной кислоты. Методика постановки пробы: рабочим раствором обрабатывают исследуем! материалы. Протирают смоченными тампонами различные поверхности, заполня раствором шприцы, иглы, катетеры, другие полые предметы и т.д. Можно также исследуемый материал наносить по 1 - 2 капли азопирама и 3 % перекиси водор< разными пипетками.

Индикация загрязнения: при наличии следов крови немедленно или не позже ч< через 1,5 мин появляется окрашивание: сначала фиолетово-синее, быст

нм

юдящее в сиренево - пурпурное или буроватое. Раствор азопирама выявляет • и нобин, пероксидазы растительного происхождения, сильные окислители, а также •чину и кислоты - появляется бурое окрашивание. В среднем 100 мл раствора си очно для постановки 800 проб.

>(1 синости реакции: окрашивание, наступившее позже 2 мин после обработки iu-дуемых предметов, не учитывается. Исследуемые предметы и материалы мм,' иметь комнатную температуру (не вЫше 25° С). Нельзя обрабатывать ичие предметы и держать раствор на ярком солнечном свету или при мшенной температуре (в близи нагревательных приборов). Рабочий раствор тирам с 3 % перекисью водорода и уксусной кислотой) должен использоваться •чоние 40-60 мин. К концу 1-го часа после его приготовления может появиться п.'нно розовое окрашивание.

■■I ИЙ раствор азопирама хранят в закрытой посуде в холодильнике при мературе 4-8° С не более 12 мес. Допускают небольшое пожелтение раствора в иессе хранения.

11 одф талеиновая проба.

in проба предназначена для определения остатков щелочных компонентов шцого препарата на инструментах. 1-2 капли 1 % спиртового раствора •опфталеина наносят на вымытое изделие. При появлении розового окрашивания, цетельствующего о наличии остатков моющего средства, инструменты повторно mi.тают проточной водой, нкш иоиновая проба.

помощью этой пробы определяют качество предстерилизационной обработки Фументов. Для приготовления реактива смешивают равные количества 5 % ртового раствора амидопирина с 3 % раствором перекиси водорода и 30 % тором уксусной кислоты (2-3 мл). При наличии крови после нанесения 2-3 ми, реактива на контролируемое изделие появляется сине-зеленое окрашивание, слия, дающие положительную пробу на кровь или моющее средство, исггывают повторно до получения отрицательного результата.

|)юль предстерилизационной очистки проводят санитарно-эпидемиологические и-(инфекционные станции 1 раз в квартал. Самоконтроль в ЛПУ проводится не с I раза в неделю и организуется старшей медсестрой или старшей акушеркой гления. герилизацня.

|ц

И:?ация - уничтожение микроорганизмов всех видов и их спор. рпиизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, мктирующие с кровью, слизистыми или инъекционными препаратами и проводят шчными методами: паром под давлением сухим горячим воздухом растворами химических веществ I азами радиоактивными лучами кипячением ринизация парОм. I и шчацию паром под давлением осуществляют в паровых стерилизаторах - I минах. Автоклавы бывают разных типов и конструкций, но принцип действия и.шов. Автоклав состоит из металлического котла с двойными стенками,   пространство между которыми заливают водой. Крышка автоклава гермети1 закрывается с помощью завинчивающихся болтов. Автоклав имеет маноме предохранительный клапан и кран для спускания воды и пара. Источник нагревания воды в автоклаве могут быть электричество или газ. При нагрева! автоклава вода закипает, образуется пар. При этом в камере повышается давление температура. Существует строгая физическая зависимость между давлением температурой пара: при 1 атм - 1200 С, при 1,5 атм - 1270 С, при 2 атм - 1340 С. Tai образом чем выше давление, тем выше температура. При давлении в 1 i стерилизация должна длиться 1 ч, при 1,5 атм 45 мин, а при 2 атм - 30 мин. В автоклавах стерилизуют: белье, перевязочный материал, хирургичеа инструменты, детали приборов и аппаратов, изготовленных из коррозийно-стош металлов и сплавов, шприцы с пометкой 200° С, стеклянную посуду, изделия резины. Для изделий из коррозийно-стойкого металла, стекла, изделий текстильных материалов, резины время стерилизации составляет 20 мин i давлении пара в стерилизационной камере 2 атм и рабочей температуре 132 Для изделий из резины, латекса и полимерных материалов при давлении п 1атм и температуре 120° С время стерилизации при ручном и автоматичеа управлении составляет 45 мин. Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках - биксах. Хирургичес белье, перевязочный материал укладывают в стерилизационную коро(перпендикулярно ее крышки (на ребро), т.е. параллельно движению пара. Эффективность стерилизации зависит от плотности укладки. При смешат загрузке соблюдают следующее соотношение: 1 халат, 1 простыня, 3 полотенц: пары бахил, 14 хирургических шапочек. Резиновые перчатки перед стерилизацией, внутри и снаружи пересыпают талы для предохранения их от склеивания. Каждую пару перчаток завертыва отдельно в марлю и в таком виде помещают в стерилизационную короб Перчатки стерилизуют при температуре пара 120° С. Шприцы и иглы с пометкой 200° С стерилизуют в разобранном виде, укладывая по отдельности в двухслойную мягкую упаковку или в пергаментную бумг Упакованные шприцы помещают в стерилизационную коробку. Хирургический инструментарий комплектуют на определенный вид onapai завернутыми в двухслойную мягкую упаковку, затем укладывают в стерилизациош коробки, после заполнения прикрепляют бирку с указанием содержимого, дг и стерилизуют. Перед стерилизацией боковые отверстия биксов оставля открытыми. Паровой стерилизатор после окончания цикла стерилизации открыва стерилизационные коробки вынимают и помещают на стол, покрытый стерилы простыней. Боковые отверстия в стерилизационных коробках после стерилиза! немедленно закрывают. Этой же или второй простыней закрывают горя стерилизационные коробки. Категорически запрещается выдавать п стерилизованный материал до его полного охлаждения. После охлаждения бик выдают из стерилизационной или устанавливают в специально выделенный шк для хранения. Срок хранения простерилизованного материала в стерильн коробках с фильтром до 20 суток, без фильтра до 3 суток. В других вщ упаковки (пергамент, бязь) срок хранения до 3 сут. Каждый цикл стерилиза! отмечают в журнале.   , и |in пизация воздушным методом. Хирургические инструменты, детали и узлы приборов и апппаратов, режущие ми фументы стерилизуют в специальных сухожаровых шкафах, которые работают hi шсктричестве. Стерилизации подвергают сухие изделия. Внутрь шкафа- и рмлизатора устанавливают сетки с хирургическими инструментами, подобранными |п«определенной операции. Стерилизацию шприцов проводят в упаковке из •умш и. Швы конвертов заклеивают 10% клеем из поливинилового спирта или 5% Ф.шмальным клейстером. X мрургические инструменты, изделия из стекла и силиконовой резины стерилизуют 87.I'■< температуре 180° С в течении 1 ч, при температуре 160° С -2 ч. 11 целия, про стерилизованные в бумаге, могут храниться 3 сут, в заклеенных шкетах - 20 сут. Изделия, про стерилизованные без упаковки, должны быть ^пользованы непосредственно после стерилизации • ни цкшь стерилизации. "п гроль работы паровых и воздушных стерилизаторов осуществляют следующими itei одами: • физическим • химическим • бактериологическим I in контроля используют средства измерения температуры, давления, времени, ммические тесты и термохимические индикаторы и биотесты. ■тический метод контроля работы стерилизаторов осуществляют с помощью ре тл и измерения температуры (термометр, термометр максимальный), давления м.иювакуумметр) и времени (секундомер, часы). 1 ммнческий метод контроля предназначен для оперативного контроля одного или |i < кольких параметров, характеризующих режимы работы паровых и воздушных ь рппизаторов. Химический метод контроля работы стерилизаторов осуществляют помощью химических тестов и термохимических индикаторов. Химический тест 88.уществляют при помощи запаянной с обоих концов стеклянной трубки, и помненной смесью химических соединений с красителем или только химическим • и (мнением (веществом), изменяющим агрегатное состояние и цвет при <ц 111жении точки плавления., Для контроля температурных режимов работы применяют различные химические • 11 | и соединения - для паровых стерилизаторов: мочевина (карбамид) с и юным красителем - температура плавления 132° С, порошок серы 117°С, иипирин, амидопирин 110°С, резорцин 119°С, бензойная кислота 121°С. 'I и контроля стерильности используют также термоиндикаторную бумагу, •меняющую свой цвет при определенной температуре и времени экспозиции. him воздушных стерилизаторов: тиомочевина (тиокарбамид) без красителя - гммература плавления 170° С. ипкованные в стеклянные трубки химические вещества нумеруют и размещают в ни рольные точки паровых и воздушных стерилизаторов. По окончании!• типизации стеклянные трубки извлекают из стерилизатора и визуально ||" пеняют изменение агрегатного состояния и цвета. Если они равномерно f " и.шились и изменили свой цвет, значит, заданная температура стерилизации hi I постигнута, результат контроля удовлетворительный. При неудовлетворительном | tv т.тате контроля - равномерного расплавления и изменения цвета стеклянных с химическими веществами не происходит - это говорит о том, что     аданная температура стерилизации не была достигнута. Аппарат прекраща) использовать, проверяют правильность соблюдения требуемого режи стерилизации, правильность загрузки и исправность аппарата. Бактериологический контроль стерильности при стерилизации в автокла! проводят не реже 1 раза в месяц. Стерилизация химическим методом. Под методами холодной стерилизации понимают стерилизацию химически веществами. Эти вещества применяют в виде растворов и газов. Термин холод] стерилизация применим ко всем способам, при которых температура не превыщ температуры коагуляции белка (от 45 до 60° С). Хирургические инструменты из коррозионно-стойких материалов и сплавов, изде! из резины, пластических масс, в том числе с металлическими частя стерилизуют: 6 % раствором перекиси водорода, 1 % раствором дезоксона-1, 2,5 раствором глутарового альдегида, сайдексом, гигасептом который пе использованием разводят 1: 30 (применяется для стерилизации эндоскопов nyi замачивания с погружением). Для химической стерилизации изделий медицинского назначения используют 0,0 0,05 % нейтральный анолит, окись этилена. Для стерилизации химическими растворами используют эмалированные, стеклянн или пластмассовые ёмкости с плотно закрывающейся крышкой. Изделия полност погружают в раствор на время стерилизации Стерилизацию изделий из полимерных материалов, резины, стекла, коррозий! стойких материалов проводят: 89.6 % раствором перекиси водорода при температуре 18° С в течении 360 м и при температуре раствора 50° С - 180 мин; 90.1% раствором дезоксона-1 при температуре не ниже 18° С в течении мин. Стерилизацию изделий из полимерных материалов, резины, стекла, мета рекомендуется проводить 2,5 % раствором глутарового альдегида при температ не менее 18° С, выдерживая их 360 мин. Газовая стерилизация. Г азовая стерилизация применяется для эндоскопических инструмент принадлежностей для анестезии и реанимации, аппаратов экстракорпораль» кровообращения, изделий из пластических масс, кетгута. Для этих uej используют пары формалина, оксид этилена в смеси с бромидом метила соотношении 1:2,5. Стерилизация осуществляется в автоматических газо; камерах. Медицинские изделия упаковывают в полиэтиленовую пла пергаментную бумагу, бумажные пакеты. С помощью газовой стерилизации еле; обрабатывать лишь те объекты, которые не выдерживают стерилизацию в автою или сухожаровом шкафу. Радиационнная (лучевая стерилизация). Лучевая стерилизация применяется на предприятиях медицинской промышленно! выпускающих изделия одноразового пользования. Стерилизующее действие оказывают бета - и гамма - излучения, источником кото служат радионуклиды кобальта или цезия. Радиационная стерилизация имеет преимуществ: 91.она позволяет стерилизовать предметы из термолабильных разрушают! при высокой температуре материалов, которые чаще всего применяйте   типической практике (шовный материал, эндопротезы, одноразовые шприцы ка гетеры, лекарственные растворы). медицинские изделия в герметичной упаковке остаются стерильными долг» месяцы. пряОотана также стерилизация ультразвуком и электротоками разной частоты, '■рп'ччация кипячением- этим методом стерилизуют металлические инструменты гкичнные и резиновые изделия. После тщательного мытья инструментов щеткамt м i.i пом производят их кипячение в 2 % растворе соды в течение 45 минут с •мгн га закипания воды. Инструменты загрязненные анаэробной инфекцией, кипятят ЮОно 2-3 раза по 45 минут. Сложные инструменты кипятят в разобранном виде. |«|)|<лизацию осуществляют в специальных стерилизаторах, представляющих собой г типическую коробку с плотно закрывающейся крышкой и электрическим ннн|)свом. Инструменты закладывают на специальную сетку и помещают в ц>И!Жзатор. После стерилизации сетку вынимают специальными крючками и iMi щают на стерильный стол, где и производят раскладывание инструментов. 92.►пннные предметы (шприцы, мензурки, пробирки) стерилизуют кипячением in т.но от инструментов. Шприцы кипятят в разобранном виде. Стеклянные it пмегы перед стерилизацией обёртывают марлей и опускают в холодную или pi кл подогретую воду. Шприцы и иглы для спинномозговой анестезии кипятят [/и т.но в дистиллированной воде. Если кипячение инструментов проводится в [мчной воде, то для избежания оседания накипи на инструментах, на дно»|)и иизатора кладут тонкий слой ваты. оговление шариков, салфеток, тампонов и турунд.нчпнния: для использования в стерильном виде при операциях перевязках. М'ччдимый материал: гигроскопическая марля. ноиное правило складывания перевязочного материала - обязательное [шшрачивание краев марли внутрь для предотвращения попадания мелких

Ментов нитей в. рану. )[ пгцовательность действий: для приготовления малых, средних, больших шариков готовят кусочки марли | ммером 6x7, 11x12, 17x17 см, складывают их пополам, обёртывают вокруг указательного пальца, образуют кулек, внутрь которого заворачивают < иободные концы. Шарики складывают в марлевые мешочки по 50 штук, и приготовления больших, средних, малых салфеток готовят куски марли 1мгром 20x25, 30x40. 60x40 см. Края нарезанной марли завертывают внутрь, и.питают вдвое по длине и ширине. Салфетки складывают по 10 штук и 93.н.т.йот полоской марли. ч приготовления тампонов берут кусок марли длиной 5 м. Дважды складывают iHiiiiii.no. Полученные 4 слоя марли разрезают поперечно на куски длиной 20,30, I'M hiщонление большего тампона: подрезанные края кусков марли загибают внутрь на 5 - 6 см и в том же направлении дважды складывают пополам "Нразовавшуюся полоску 60 хЮ см складывают почти пополам нижняя половина должна быть на 5 - 6 см длиннее верхней uvixjm тампон складывают еще раз пополам, а свободный край нижнего слоя марли заворачивают на тампон для захватывания его во время операции   средним тампон готовят так же, с той только разницеи, что ооразованную полос складывают дополнительно вдоль поперечной нити и затем вдоль продольной малый тампон складывают дважды пополам в продольном и поперечном направлении после подворачивания внутрь на 1-2 см одного из коротки: краев куска марли, а затем более длинных краев с некоторым заходо! друг на друга; турунды делают из кусков бинта шириной 5 см и длиной 40-50 см. концы бинт подворачивают внутрь на 1-1,5 см и затем складывают д соприкосновения, а затем еще раз и для закрепления протягивают чере край стола. Турунды и тампоны хранят свёрнутыми в клубочках.

Дата добавления: 2015-11-02 | Просмотры: 489 | Нарушение авторских прав