Определение аллергенспецифических IgE в РАСТ с применением флюоресцентной метки
К аллергену, сорбированному на целлюлозном носителе, добавляют сыворотку крови пациента. Затем добавляются меченные ферментом (β-галактозидазой) анти-IgE-АТ, которые связываются с образовавшимся конъюгатом. После отмывания несвязавшихся антител добавляют субстрат (4-метилимбеллиферил-β-D-галактозид), в случае ферментации которого образуются флуоресцентные вещества, концентрация которых выявляется при помощи ридера (FluoroCount).
В качестве примера метода,основанного на эффекте хемилюминесценции, можно привести МАСТ.
MACT (множественный аллергосорбентный тест) — метод определения аллергенспецифических IgE, аналогичный по принципу постановки РАСТ, где аллерген сорбирован на целлюлозных нитях, а в качестве индикатора реакции используются фотореагенты, свечение которых регистрируется на пленке Polaroid, на люминометре, на фотометре (рис. 8). Метод позволяет быстрее получить результаты исследования, дает возможность определять необходимые параметры даже у одного больного, не ожидая накопления проб для использования целого набора.
Рис. 8. Устройство для постановки МАСТ:
1 — MAST-панель в сборе; 2 — крышка; 3 — целлюлозные нити с адсорбированным аллергеном; 4 — корпус
Псевдоиммуноблот — метод, позволяющий одновременно выявлять специфические IgE-антитела к спектру аллергенов (к каждому из них) в сыворотке или другом материале. Псевдоиммуноблот основан на твердофазном ИФА, но в отличие от последнего обладает большей специфичностью (но меньшей чувствительностью), быстротой выполнения, минимальным объемом крови (менее 0,5 мл), возможностью одновременного тестирования с большим числом аллергенов (около 20 в каждой панели). Кроме того, сейчас применяется программная высокоточная обработка результатов.
Современные тест-системы построены по принципу двухуровневого определения аллергостатуса: на первом уровне производится стандартное аллергообследование, позволяющее определить группу аллергенов, к которой имеется чувствительность. После этого возможно проведение расширенного (более точного и сложного) определения чувствительности к конкретному аллергену.
Классический иммуноблот применяют в случае наличия четких указаний на причинный аллерген (данные анамнеза, элиминационного теста и др.) и отрицательных результатов тестирования на специфический IgE с охарактеризованными компонентами этого аллергена. В таких случаях из грубого экстракта аллергена получают блоты и проводят анализ сыворотки больного на наличие IgE, специфичных к минорным (не охарактеризованным) компонентам аллергена.
Микроэррей (microarrey) является сравнительно новым (разработан в 1990-х гг.) и весьма перспективным направлением в прикладной молекулярной биологии. В настоящее время наибольшее распространение получила технология микроэррея, основанная на ДНК-олигонуклеотидах, однако развивается и микроэррей с применением моноклональных антител и рекомбинантных антигенов. В частности, подобная технология применяется для диагностики и оптимизации лечения аллергий (рис. 9).
Рис. 9. Схема проведения микроэррея для диагностики аллергии
Исследование проводится в несколько этапов:
1. Приготовление микрочипа: рекомбинантные аллергены раскапываются на поверхность активированного предметного стекла (объем капли — нанолитры, количество антигена — десятки пикограмм). Одно стекло содержит 12 ячеек. Каждая ячейка содержит десятки (сотни) различных аллергенов и калибровочную кривую (возрастающие количества IgE) в триплетах. Таким образом, одновременно можно обследовать до 12 пациентов.
2–3. Ход теста:
а) раскапывание сывороток пациентов (15 мкл);
б) инкубация (IgE пациента соединяются с аллергенами);
в) добавление моноклональных антител против IgE, меченных флуорохромом;
г) сканирование микрочипа;
д) типичная сканограмма микрочипа:
– первые три ряда = калибровочная кривая (интенсивность свечения пропорциональна количеству фиксированных IgE);
– далее — профиль сенсибилизации пациента (специфичность и количество IgE в сыворотке пациента).
Тесты активации клеток аллергенами (CAST) являются современными методами диагностики ГНТ медиаторного типа, не обусловленной IgE (рис. 10).
Рис. 10. Принцип постановки CAST/FAST:
1 — стимуляция базофилов (IgE-зависимая, с помощью аллергена; с помощью анти-FceRI-антител; IgE-независимая, с помощью пищевых добавок, нестероидных противовоспалительных средств (аспирин), лекарственных препаратов); 2 — идентификация базофилов. Проводится только для FAST, обычно с помощью меченых антител против IgE или рецепторов к хемокинам CCR3; 3 — учет реакции. CAST учитывают с помощью количественного определения лейкотриенов (тИФА). FAST — путем определения процента активированных базофилов (экспрессирующих CD63) с помощью цитофлуориметрии
Ранее подобную реактивность выявляли в тестах повреждения лейкоцитов и стимуляции выделения гистамина базофилами, однако они слишком трудоемки, плохо воспроизводятся и не поддаются стандартизации. СAST/FAST ставится в несколько стадий:
1. Выделение лейкоцитов крови:
а) к стабилизированной крови добавляют декстран для осаждения эритроцитов;
б) надосадок центрифугируют для осаждения лейкоцитов (удаление декстрана и тромбоцитов);
в) осадок лейкоцитов ресуспендируют в буферном растворе, содержащем ИЛ3.
2. Стимуляция лейкоцитов:
а) с анти-FceRI-антителами (положительный контроль);
б) физиологическим раствором (отрицательный контроль);
в) аллергеном(ами) в различных концентрациях.
3. Супернатанты отбирают и немедленно определяют содержание лейкотриенов с помощью твердофазного ИФА. Для количественного определения необходимо использовать несколько разведений стандартов для построения калибровочной кривой.
4. Интерпретация теста. Для пищевых аллергенов нижний (пороговый) уровень (cut off) обычно равен 400 пг/мл; для пищевых добавок, лекарственных аллергенов, аэроаллергенов — около 40 пг/мл.
FAST отличается от CAST способом учета активированных базофилов: обнаружение и подсчет процента клеток, экспрессирующих CD63 и связанные IgE (рис. 11). Интересующие нас клетки должны иметь связанные на поверхности IgE, т. е. связывать анти-IgE-антитела, меченные FITC, и сильно светиться зеленым. Активированные тучные клетки, помимо этого, экспрессируют CD63, связывают анти-CD63-антитела, меченные РЕ, и светятся красным. Таким образом, тест положительный, если значительный (>5–15 %) процент клеток (точки на графике) обнаруживается во втором квадранте. В настоящее время существуют коммерческие наборы для постановки комбинированных тестов (CAST и FAST в одной пробирке).
Следует отметить, что CAST/FAST выявляет выделение лейкотриенов лейкоцитами как в связи, так и без наличия аллерген-специфических IgE. Основные показания для применения CAST/FAST: подозрение на ГНТ по медиаторному типу и отсутствие специфических IgE; наличие гиперчувствительности к пищевым добавкам и лекарственным аллергенам; диагностика аспириновой астмы и подобных состояний. CAST/FAST не рекомендуются как тесты для первичного аллергологического обследования (они сложнее, дороже и уступают стандартным тестам обнаружения специфических IgE (UniCAP и т. д.)).
а б
Рис. 11. Учет FAST:
а — отрицательный контроль; б — положительный контроль. Обозначения: PE — фикоэритрин (красное свечение); FITC — флуоресцеин (зеленое свечение); Q1-4 — квадранты на графике распределения клеток (Q1 — сильное красное свечение, слабое зеленое; Q2 — сильное красное и сильное зеленое; Q3 — слабое красное и слабое зеленое; Q4 — слабое красное и сильное зеленое свечение)
Методы, направленные на исследование проаллергических цитокинов и медиаторов иммунного воспаления.
Определение медиаторов и цитокинов в системном кровотоке (обычно методом твердофазного ИФА):
1. Выявление гистамина затруднено крайне высокой скоростью его инактивации (минуты), поэтому для обнаружения его наличия в системной циркуляции (анафилактический шок) чаще применяют определение метил-гистамина в моче (высокий уровень сохраняется несколько часов после исчезновения проявлений системной анафилаксии).
2. Определение триптазы в сыворотке крови. Триптаза содержится в гранулах тучных клеток и длительно (несколько часов) сохраняется в циркуляции.
3. Определение цитокинового статуса периферической крови (ИЛ4, ИФНγ, ИФНγ/ИЛ4) дает крайне общее представление о характере типа реагирования иммунной системы в момент проведения теста. Было популярно в 80-е гг. прошлого века. Позже — в 90-е гг. модель Th1/Th2 уступила место исследованию роли Т-регуляторов при аллергии.
4. Определение содержания клеток, секретирующих те или иные цитокины. В настоящее время имеется возможность определения этих параметров для аллергенспецифических клеток (технология тетрамеров). Чаще для указанных целей применяют проточную цитофлуориметрию и элиспот.
Определение цитокинов и медиаторов в тканях (позволяет выяснить природу воспаления, его интенсивность, преобладающие звенья патогенеза):
1. Определение NO в выдыхаемом воздухе: простой неинвазивный тест, позволяющий отслеживать интенсивность воспалительного процесса в дыхательных путях (контроль лечения бронхиальной астмы).
2. Определение медиаторов и цитокинов в смывах, экссудатах и другом отделяемом поврежденных тканей.
3. Определение клеток, синтезирующих цитокины и медиаторы на срезах из биопсий поврежденных тканей.
4. Количественное определение мРНК цитокинов и медиаторов в смывах, соскобах и биопсийном материале.
Необходимо отметить, что методы определения цитокинов при аллергических процессах используются, в основном, для научных целей.
Дата добавления: 2015-11-26 | Просмотры: 577 | Нарушение авторских прав
|