АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Теоретические сведения. Первые сведения об общей организации и тонкой структуре клетки были получены с помощью оптических методов

Прочитайте:
  1. II. Сведения о работах, на выполнение которых осуществляется закупка,
  2. А. Общие сведения по внутрибольничной инфекции.
  3. Анатомо-физиологические сведения о прямой кишке. Классификация заболеваний. Методы обследования больных.
  4. Анатомо-физиологические сведения о щитовидной железе. Классификация заболеваний. Методы исследования щитовидной железы. Профилактика.
  5. Вопрос 1: Местная анестезия: общие сведения, показания и противопоказания к проведению местной анестезии, способы местной анестезии.
  6. Вопрос 1: Отморожение: определение понятия, общие сведения.
  7. Вопрос 1: Сепсис: определение понятия, общие сведения.
  8. Вопрос 5: Влажная (гнилостная) гангрена: общие сведения, этиопатогенез, клиника, лечение.
  9. Вопрос 7: Пролежни: общие сведения, этиопатогенез, клиника, лечение, профилактика.
  10. Вопрос 8: Язва: общие сведения, этиопатогенез, классификация, осложнения, лечение.

Первые сведения об общей организации и тонкой структуре клетки были получены с помощью оптических методов. По мере совершенствования оптических приборов и улучшения техники микроскопирования росли и знания о микроморфологии клетки и ее отдельных компонентов. Дальнейшее развитие световой микроскопии, а также люминесцентной и электронной позволило существенно повысить разрешающую способность оптических приборов; темнопольная и фазово-контрастная микроскопия облегчила наблюдение живой клетки.

Изучение морфологии и строения клеток микроорганизмов, величина которых измеряется в большинстве случаев микромет­рами (мкм=0,001 мм=10-6 м), возможно только с помощью микроскопов, обеспечивающих увеличение исследуемых объектов в сотни (световая микроскопия) и десятки тысяч (электронная микроскопия) раз. Изображение в световом микроскопе форми­руется вследствие того, что объект и различные элементы его структуры избирательно поглощают свет с различной длиной волны (абсорбционный контраст) или вследствие изменения фазы световой волны при прохождении света через объект (фазовый контраст). Световая микроскопия включает обычную просвечи­вающую микроскопию (светло- и темнопольную), фазово-контрастную и люминесцентную.

Устройство микроскопа. Существуют различные модели учебных и исследовательских световых микроскопов. Внешний вид и принципиальное устрой­ство одного из них приведены на рисунке 2. Подобные микроскопы позволяют оп­ределить форму клеток микроорганизмов, их размер, подвиж­ность, степень морфологической гетерогенности, а также харак­терную для микроорганизмов способность к дифференцирующему окрашиванию. Рассмотрим некоторые особенности оптической системы светового микроскопа, так как от зна­ния их зависит успех наблюдения объекта и надежность получа­емых результатов.

Механическая часть или штатив состоит из ножки, основания, тубусодержателя, предметного столика, монокулярной насадки (тубуса), револьверного устройства, рукоятки грубой фокусировки (макрометрического винта), рукоятки тонкой фокусировки (микрометрического винта).

Тубус – зрительная труба микроскопа. В верхнее отверстие тубуса свободно вставляется окуляр, на нижнем конце тубуса находится вращающееся вокруг своей оси револьверное устройство (револьвер), в которое ввинчиваются объективы. Вращая револьвер, можно быстро сменить объективы во время работы с микроскопом, подводя любой объектив под тубус. Объектив должен быть центрирован, т.е. установлен на оптическую ось микроскопа. Для этого револьвер поворачивают вокруг своей оси до появления щелчка.

Предметный столик служит для размещения на нем изучаемого препарата. Препарат закрепляют на столике зажимами (клеммами). В центре предметного столика находится отверстие для прохождения лучей света и освещения препарата. В некоторых конструкциях микроскопа предметный столик может передвигаться с помощью винтов, расположенных по периферии предметного столика. Это дает возможность рассмотреть препарат в различных полях зрения.

  1окуляр 2 – монокулярная насадка (тубус) 3 – револьверное устройство 4 - объектив 5 – предметный столик 6 - конденсор 7 – корпус коллекторной линзы 8 – патрон с лампой 9 - шарнир 10 – рукоятка перемещения кронштейна конденсора 11– рукоятка тонкой фокусировки (микрометрический винт) 12 – рукоятка грубой фокусировки (макрометрический винт) 13 - тубусодержатель 14 – винт для крепления насадки

Рис. 2. Схема устройства светового биологического микроскопа

Рукоятки грубой и тонкой фокусировки (макро- и микровинты) служат для перемещения тубуса вверх и вниз, что позволяет установить его на необходимом расстоянии от препарата. При вращении винтов по часовой стрелке тубус опускается, а при вращении против часовой стрелки – поднимается. При вращении макрометрического винта объектив ориентировочно устанавливается на фокус, т.е. на то расстояние от препарата, при котором он делается видимым. Оборот макровинта позволяет переместить тубус на 20 мм. Микрометрический винт служит для точной установки на фокус. Полный оборот его перемещает тубус на 0,1 мм. С микровинтом следует обращаться очень осторожно: допустимо вращение микровинта не более чем на 180 0С в ту или иную сторону.

Оптическая часть является наиболее ценной частью микроскопа. Она состоит из объективов и окуляра.

Окуляр (от лат. oculus – глаз) состоит их двух плосковыпуклых линз, заключенных в общую металлическую оправу. Верхняя линза – глазная (увеличивающая), нижняя – собирающая. Расстояние между линзами равно полусумме их фокусного расстояния. У окуляров с большим увеличением фокус короче, поэтому меньше и длина окуляра. Между линзами имеется диафрагма, ограничивающая поле зрения и задерживающая краевые лучи света. Отечественные микроскопы снабжены тремя сменными окулярами, увеличение которых указано на корпусе окуляра (7×; 10×; 15×).

Объективы ввинчиваются в гнезда револьверного устройства и состоят из системы линз, заключенных в металлическую оправу. Передняя (фронтальная) линза объектива является самой маленькой и единственной, дающей увеличение. Остальные линзы в объективе только исправляют недостатки полученного изображения (явления сферической и хроматической аберрации) и называются коррекционными.

В гнезда револьверного устройства ввинчиваются четыре объектива, увеличение которых указано на корпусе объектива (8×; 20×; 40×; 90× или 100×). Каждый объектив характеризуется своим фокусным расстоянием (расстоянием между предметным стеклом и фронтальной линзой): объектив 8× имеет фокусное расстояние около 9 мм, объектив 40× – 0,65 мм, объектив 90× – 0,15 мм.

Объективы подразделяются на сухие и иммерсионные. При работе с сухими объективами (8×, 20×, 40×) между фронтальной линзой и препаратом находится воздух. В этом случае лучи света проходят среды с различными показателями преломления (покровное стекло, воздух), часть их отклоняется и не попадает в объектив. При работе с иммерсионными объективами (90× или 100×) для устранения светорассеяния расстояние между фронтальной линзой объектива и препаратом заполняют иммерсионным (кедровым) маслом, показатель преломления лучей света которого близок к показателю преломления лучей света, проходящего через стекло.

Общее увеличение микроскопа определяется как произведение увеличения объектива на увеличение окуляра. Например, если в работе используют окуляр 15×, а под тубусом находится объектив 90×, то увеличение рассматриваемого с помощью микроскопа объекта составит ×1350. Однако общее увеличение еще не ха­рактеризует всех возможностей микроскопа. Увеличенное изобра­жение может оказаться как четким, так и нечетким. Отчетливость получаемого изображения определяется разрешающей способностью микроскопа, которая зависит от длины волны используемого света и числовой апертуры оптической сис­темы микроскопа. Повысить разрешающую способность можно двумя путями: либо освещать объект более короткими лучами света, например ультрафиолетом, что требует применения дорогостоящей кварцевой оптики, либо увеличивать показатель преломления среды, граничащей с лин­зой, с тем, чтобы приблизить его к показателю преломления стекла, на котором находится объект (п стекла —1,5). Для этого меж­ду фронтальной линзой объектива и исследуемым объектом помещают каплю жидкости с пока­зателем преломления большим, чем показатель преломления воздуха, например, каплю воды (п = 1,3), глицерина (п — 1,4) или кедрового (иммерсионного) масла (п = 1,5). Для каждой указанной жидкости выпускают специальные объективы, которые называются иммерсионными.

Числовая апертура объектива указана на его оправе. Объек­тивы микроскопа 18× и 40× имеют апертуру соответст­венно 0,20 и 0,65. У масляного иммерсионного объектива с уве­личением 90× апертура 1,25. На оправе этого объектива на­несено также обозначение «МИ» — масляная иммерсия — и чер­ное кольцо. На оправе объектива водной иммерсии имеется обозна­чение «ВИ» — водная иммерсия — и белое кольцо. Этот объектив увеличивает в 70 раз (70×) и имеет апертуру 1,23.

Осветительная часть микроскопа состоит из двухлинзового конденсора, ирис-диафрагмы и патрона с низковольтной лампочкой накаливания, питающейся через понижающий трансформатор от сети напряжения 120…220 В. Конденсор служит для лучшего освещения препарата. Он собирает световые лучи в пучок и направляет их через отверстие предметного столика на препарат. С помощью рукоятки для перемещения кронштейна конденсора его можно перемещать вверх и вниз, благодаря чему меняется угол сходимости лучей и, следовательно, степень освещения объекта. Чем выше положение конденсора, тем лучше освещен препарат. Ирис-диафрагма располагается под конденсором и служит для регулировки потока света, поступающего в конденсор. Она состоит из металлических серповидных пластинок. Расширить или сузить отверстие диафрагмы можно с помощью специального рычажка. При вращении его по часовой стрелке отверстие ирис-диафрагмы увеличивается и, следовательно, увеличивается степень освещения объекта. При работе с иммерсионными объективами степень освещения препарата должна быть максимальной, поэтому шторку ирис-диафрагмы открывают, а конденсор поднимают в крайнее верхнее положение. При работе с сухими объективами, как правило, рассматривают неокрашенные объекты. Для достижения контрастности конденсор опускают вниз, а отверстие ирис-диафрагмы уменьшают.

Микроскопия в темном поле. Микроскопия в темном поле основана на освещении объекта косыми лучами света. Эти лучи не попадают в объектив, поэтому поле зрения выглядит темным. Если препарат содержит клетки микроорганизмов, то косые лучи, проходя через такой препарат, в значительной степени отражаются от поверхности клеток и на­столько уклоняются от своего первоначального направления, что попадают в объектив. Тогда наблюдатель видит на черном фоне интенсивно светящиеся объекты, даже если их диаметр в 10 раз меньше, чем предел разрешения объектива. Такое освещение пре­парата достигается применением специального конденсора. Темнопольный конденсор имеет затемненную среднюю часть, поэтому центральные лучи света, идущие от осветителя, задер­живаются, а в плоскость препарата попадают только боковые лу­чи, отраженные от зеркальных поверхностей, расположенных внутри конденсора. При микроскопировании в темном поле можно увидеть объек­ты, величина которых измеряется сотыми долями микрометра, т.е. лежит за пределами видимости обычного микроскопа. Однако на­блюдение объектов в темном поле позволяет различить только их контуры, но не дает возможности рассмотреть внутреннее строе­ние.

Микроскопия с фазово-контрастным устройством. Микроскопия с фазово-контрастным устройством основана на том, что с его помощью различия в фазе световых лучей, возни­кающие при прохождении их через прозрачные объекты, превра­щаются в амплитудные, в результате чего объекты становятся контрастными. Глаз человека выявляет различия в длине волны света (цвет) и ее амплитуде (интенсивность, яркость), но не в со­стоянии заметить смещение фазы. Неокрашенные клетки микро­организмов хорошо видны в проходящем свете обычного светлопольного микроскопа только в том случае, когда значительная часть энергии света, прошедшего через них, поглощается. При этом выходящая из объекта (клетки) световая волна имеет мень­шую амплитуду, т. е. яркость, и этот объект воспринимается гла­зом наблюдателя как более темный, контрастный по сравнению с окружающей средой. Однако многие микроорганизмы, размеры которых лежат в пределах разрешающей способности микроско­па, мало отличаются по прозрачности (плотности) от окружаю­щей среды. Амплитуда световой волны, проходящей через клетки таких микроорганизмов, почти не меняется, поэтому объекты пло­хо различимы или даже невидимы в обычный светлопольный микроскоп. Поле зрения кажется наблюдателю почти однород­ным.

Объект можно сделать более контрастным, либо почти до пре­дела закрывая диафрагму конденсора, либо окрашивая клетки, либо применяя фазово-контрастное устройство. Первое нежела­тельно, так как снижает апертуру конденсора и тем самым замет­но уменьшает разрешающую способность микроскопа. Окраши­вание препарата дает хорошие результаты, но в большинстве слу­чаев оно осуществляется после фиксации микроорганизмов, что не всегда желательно. Основная ценность метода фазового контраста состоит в том, что он дает возможность наблюдать живые объек­ты, не прибегая к их фиксации и окрашиванию. Применение фазово-контрастного устройства не позволяет увеличить разрешаю­щую способность микроскопа, но дает возможность увидеть прозрачные объекты более четко и даже выявить некоторые структуры и включения в клетках крупных бактерий.

Оптическая система, используемая для получения фазового контраста, состоит из фазовой пластинки и кольцевой диафрагмы. Фазовая пластинка расположена в задней фокальной плоскости объектива и представляет собой прозрачный диск, на котором напылено кольцо из металлов. Кольцевая диафрагма расположена под конденсором и представляет собой прозрачную щель в виде кольца на непроницаемой для света пластинке. Световая волна, проходя через клетки микроорганизмов, отстает по фазе пример­но на 1/4, относительно прямых волн, прошедших только через окружающую среду. В объективе микроскопа эти две волны ин­терферируют. Результирующая волна имеет ту же длину и ам­плитуду, что и прямая, но несколько отличается от нее по фазе. Этого отличия оказывается недостаточным, чтобы частицу можно было заметить в обычный микроскоп. Для превращения разности фаз в разность амплитуд служит фазовая пластина, которая до­полнительно сдвигает дифрагированный луч на 1/4.

Фазовый эффект создается в результате интерференции пря­мых лучей, не отклонившихся при прохождении через препарат, и боковых, дифрагированных лучей, которые благодаря прохожде­нию через объект и через фазовую пластинку либо совпадают по фазе с прямыми, либо сдвинуты относительно них на 1/2, т. е. находятся в противофазе. В первом случае обе волны складыва­ются и изображение объекта становится более светлым, чем ок­ружающий фон. Это светлый, негативный, контраст. По принципу негативного контраста устроен так называемый аноптральный микроскоп. Во втором случае дифракционная волна вычитается из прямой и объект выглядит более темным — темный, позитивный, контраст. Кроме того, кольцевая диафрагма уменьшает интенсивность центрального светового пучка, что также усилива­ет контрастность. Все фазовые объективы имеют на оправе обоз­начение «ф». Ими можно пользоваться и при обычной микроско­пии, но из-за наличия фазового кольца они дают изображение пониженной четкости.

Люминесцентная микроскопия. Люминесцентная микроскопия основана на способности мно­гих веществ биологического происхождения и красителей све­титься под воздействием падающего на них света. Молекулы веществ, способных к люминесценции, поглощают энергию падающего света и переходят в возбужденное состояние, которое ха­рактеризуется более высоким энергетическим уровнем. В таком состоянии они находятся непродолжительное время и вновь возвращаются к исходному энергетическому уровню. Этот переход сопровождается отдачей избытка энергии в виде света — люми­несценцией. Как правило, для возбуждения люминесценции объ­ект освещают ультрафиолетовыми лучами с длиной волны 300 — 400 нм или сине-фиолетовыми лучами с длиной волны 400 — 460 нм.

Ряд веществ биологического происхождения — хлорофилл, ви­тамин В2, алкалоиды, каротиноиды, порфирины, некоторые анти­биотики и другие соединения обладает собственной люминесцен­цией. В зависимости от содержания таких веществ в клетке ряду микроорганизмов, например, зеленым водорослям, некоторым дрожжам и бактериям, свойственна первичная люминесценция. Однако клетки большинства микроорганизмов люминесцируют очень слабо, поэтому их обрабатывают специальными красителя­ми — флуорохромами, обладающими люминесценцией. Люминес­ценцию объекта после обработки флуорохромами называют наве­денной, или вторичной.

Люминесцентная микроскопия увеличивает контрастность изо­бражения, дает возможность различить отдельные клеточные структуры и даже отметить их изменения при различных функ­циональных состояниях клетки. Этот вид микроскопии широко применяют для цитологических исследований, выявления живых и мертвых клеток, для изучения микроорганизмов в почвах, илах и ризосфере растений.

Люминесценцию в сине-фиолетовых лучах видимого света можно наблюдать с помощью обычного микроскопа, установив на пути лучей синий стеклянный или жидкий светофильтр, пропус­кающий сине-фиолетовые лучи видимого спектра. Синие лучи, мешающие выявлению люминесценции, убирают желтым свето­фильтром, который помещают на окуляр микроскопа. В результа­те наблюдатель видит на темном фоне люминесцирующие объек­ты. Однако для микробиологических исследований наиболее удо­бен люминесцентный микроскоп, в котором люминесценция воз­буждается сине-фиолетовыми лучами и ближним ультрафиолетом. Чаще свет, возбуждающий люминесценцию, направляется на пре­парат сверху, через объектив. При освещении объектов сверху (для возбуждения люминесценции) одновременно допускается освещение объектов снизу с помощью конденсора темного поля или фазово-контрастного устройства. Люминесцентный микроскоп также позволяет исследовать объекты в видимой обла­сти спектра в проходящем и отраженном свете в темном поле. Устройство люминесцентного микроскопа и порядок работы даны в описании каждой конкретной модели и здесь не приводятся.

Электронная микроскопия. В отличие от световых микроскопов электронные обслужива­ются специалистами по их эксплуатации. Предел разрешения электронного микроскопа на три порядка выше, чем светового, и достигает 0,1 нм. В практике биологических исследований дости­гается разрешение 0,5—1,0 нм. Получаемое при этом увеличение составляет 5000—50000 крат (на экране микроскопа и фотоплен­ке) и может быть повышено еще в 5—10 раз при фотопечати (в этом случае, однако, новых элементов структуры не выявляется, просто становятся видны мелкие детали, размеры которых мень­ше разрешения человеческого глаза, но больше размеров зерен фотоэмульсии).

Электронный микроскоп в отличие от светового позволяет ис­следовать только неживые высушенные объекты, так как образец находится в условиях высокого вакуума и интенсивного электрон­ного облучения. Принцип возникновения изображения в электрон­ном микроскопе иной, чем в световом. Как уже отмечалось, в световом микроскопе контраст обусловлен избирательным погло­щением света различных длин волн элементами структуры объек­та (адсорбционный контраст) или изменением фазы световой вол­ны при прохождении света через объект (фазовый контраст), тог­да как в электронном микроскопе контраст вызван отклонением ускоренных электронов тяжелыми атомами, входящими в состав тонкопленочного объекта (или искусственно внесенными в него при «химическом» контрастировании). Такой контраст называют дифракционным. Абсорбционный контраст в электронном микро­скопе — явление нежелательное (поглощение энергии электро­нов приводит к хроматической аберрации, а часто и к тепловому разрушению образца), и с ним приходится бороться, исследуя объект в виде ультратонких (30—100 нм) срезов и пленок.

Основной частью электронного микроскопа является вакуум­ная колонна, в которой последовательно расположены по прин­ципу осевой симметрии электронная пушка, содержащая катод и анод, а также ряд магнитных линз и люминесцирующий экран. Электронная пушка обеспечивает эмиссию и ускорение электро­нов. Часть электронов проходит через отверстие в центре анода (центральную апертуру) и образует электронный луч, который фокусируется первой магнитной линзой (конденсорной) и освеща­ет объект. Прошедшие через объект электроны фокусируются второй магнитной линзой (объективной), формирующей увеличен­ное изображение объекта, которое затем дополнительно увеличи­вается третьей магнитной линзой (проекционной) и проецируется на люминесцирующий экран или фотопленку.

Электронный микроскоп, создающий изображение благодаря прохождению (просвечиванию) электронов сквозь тонкопленоч­ный образец, называется просвечивающим или трансмиссионным (ТЭМ). Он позволяет выявить детали внутреннего строения мик­роорганизмов, а также особенности их взаимодействия в анали­зируемом образце. Предварительно образец фиксируют химичес­ки, заливают в различные смолы и контрастируют солями тяже­лых металлов. Часть электронов проходит через объект, часть в той или иной степени рассеивается тяжелыми атомами, связав­шимися с компонентами структуры, вследствие чего и формиру­ется контраст изображения. Необходимая для трансмиссионной микроскопии минимальная толщина образца обеспечивается при­менением специальных устройств для приготовления срезов — ультрамикротомов. Микроорганизмы и вирусы можно наблюдать в ТЭМ и без заливки в смолы. Для этого каплю суспензии поме­щают на пленку-подложку, высушивают и контрастируют хими­чески или физически — косым напылением металлов (оттенение).

В сканирующем электронном микроскопе (СЭМ) или в про­свечивающем электронном микроскопе со сканирующей пристав­кой изображение на телевизионном экране получается вследствие того, что первичный электронный луч, сканируя поверхность об­разца, взаимодействует с электронными оболочками атомов веще­ства объекта, что вызывает различные вторичные излучения. Их относительная интенсивность зависит от характеристик облучае­мой поверхности рельефа, химического состава и электропровод­ности. Различия в интенсивности вторичных излучений преобра­зуются в изменение амплитуды электрических сигналов, что реги­стрируется на экране или фотопленке. Достигаемое при этом по­лезное увеличение меньше, чем в ТЭМ, и, как правило, не превы­шает 50 000 крат (разрешение порядка 3—5 нм). Сканирующая электронная микроскопия позволяет получить трехмерное (сте­реоскопическое) изображение и наиболее эффективна для выяв­ления поверхностных структур микроорганизмов, определения формы и архитектоники объекта. Предварительно образец фикси­руют химически, высушивают специальными методами и напыля­ют в вакууме золотом, платиной или палладием для повышения интенсивности вторичноэлектронной эмиссии и создания на по­верхности электропроводящего покрытия, снимающего поверхност­ный заряд.

Контрольные вопросы

1. Перечислите виды микроскопии;

2. Расскажите устройство светового микроскопа МБР-2;

3. Раскройте принцип работы фазово-контрастного устройства;

4. Укажите, в чем заключается суть работы люминесцентного микроскопа;

5. Расскажите особенности электронной микроскопии.

 


Дата добавления: 2015-12-16 | Просмотры: 632 | Нарушение авторских прав







При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.006 сек.)