АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

По организазации и проведению дезинфекции при кишечных инфекциях бактериальной этиологии

Прочитайте:
  1. Http://www.youlekar.ru/15547-.htmlХарактер повреждения плода при внутриутробных инфекциях. . Описание
  2. II. Пищевые отравления немикробной этиологии
  3. IV. ОБЩИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ПРОВЕДЕНИЮ ПРАКТИЧЕСКИХ ЗАНЯТИЙ.
  4. IV. Современные представления об этиологии и патогенезе полигенных форм инсулинонезависимого сахарного диабета
  5. Аборты незаразной этиологии.
  6. Алгоритм по клиническому распознаванию ОРЗ различной этиологии
  7. Алгоритм по клиническому распознаванию ОРЗ различной этиологии
  8. Алгоритм «Работа на репроцессоре OER-AW, предназначенный для чистки и дезинфекции высокого уровня гибких эндоскопов и их вспомогательного оборудования фирмы OLYMPUS».
  9. Антибактериальные препараты, применение которых при инфекциях мочевыводящих путей нерационально
  10. Антибиотики выбора для лечения поздних менингитов известной этиологии.

1. Общие положения

1.1. Настоящие Методические указания регламентируют организацию и проведение дезинфекционных мероприятий при острых кишечных инфекциях (ОКИ) бактериальной этиологии: сальмонеллезах, шигеллезах, иереиниозах (псевдотуберкулез и кишечный иерсиниоз), эшерихиозах и других кишечных инфекциях, кроме брюшного тифа и паратифов, дезинфекционные мероприятия при которых регламентированы приказом МЗ РК № 248 от 25.05.1992 г. «О мерах по дальнейшему укреплению и развитию дезинфекционного дела в РК».

1.2. Данные Методические указания разработаны с учетом следующих эпидемиологических особенностей указанных выше инфекций: возбудители выделяются в окружающую среду с экскретами человека; продолжительность их выживания на объектах внешней среды значительная и зависит она от температуры, влажности, массивности заражения, наличия биологического загрязнения, устойчивости их к воздействию физических и химических агентов; сохраняется значимость контактно-бытового пути передачи инфекции при ведущих основных путях (пищевого и водного).

1.3. С учетом устойчивости возбудителей к воздействию факторов внешней среды и дезинфицирующих агентов рекомендуемые дезинфекционные мероприятия унифицированы в отношении двух групп инфекций: 1) сальмонеллезов и кишечных иерсиниозов; 2) шигеллезов, эшерихиозов и псевдотуберкулеза.

1.4. При острых кишечных инфекциях проводится текущая заключительная и профилактическая дезинфекция.

2. Текущая дезинфекция:

2.1. Текущую дезинфекцию проводят в окружении больного в очаге и лечебно-профилактических учреждениях.

2.2. Текущая дезинфекция в очаге больного ОКИ организуется лечебным учреждением с момента выявления инфекционного больного до его госпитализации или выздоровления и проводится родственниками больного, либо самим больным, выборочно контролируется работниками санитарно-эпидемиологических станций или дезинфекционных станций.

2.3. Врач (фельдшер), выявивший больного кишечными заболеваниями, решает вопрос о госпитализации его в стационар. До госпитализации больного или в случае лечения больного на дому он -назначает лечение и организует проведение текущей дезинфекции, инструктируя одного из членов семьи о правилах соблюдения личной гигиены больным и мерах предупреждения заражения окружающих, о чем делается отметка в амбулаторной карте.

2.4. При организации текущей дезинфекции обращается внимание на:

- изоляцию больного, по возможности, с максимальным ограничением контакта с другими членами семьи;

- обеспечение его индивидуальным постельным бельем, полотенцем, посудой, приемником выделений и предметами ухода;

- обеспечение отдельного сбора и хранения до стирки грязного белья;

- использование больным, для повседневных нужд, легко обрабатываемых предметов;

- соблюдение чистоты в помещениях, особенно в местах общего пользования;

- наличие мух с целью последующего проведения дезинсекционных мероприятий;

- систематическое обеззараживание выделений больного и остатков пищи;

- содержание надворных туалетов и выгребных ям.

2.5. При проведении текущей дезинфекции население использует наиболее простые методы обеззараживания (кипячение, влажная уборка и др.).

2.6. При выявлении больного или подозрительного на острые кишечные заболевания в соматических больницах, отделениях для детей раннего возраста и новорожденных детей следует немедленно до перевода в инфекционную больницу изолировать его в отдельную палату или изолятор, где проводят текущую дезинфекцию.

3. Заключительная дезинфекция:

3.1. Заключительная дезинфекция проводится силами дезстанций, дезотделов СЗС, а также населением в домашних очагах.

3.2. Заключительная дезинфекция не проводится после выздоровления больного ОКИ, леченного на дому, а также после истечения инкубационного периода с момента выявления и изоляции больного,

3.3. Заключительная дезинфекция, выполняемая силами дезстанций, дезотделов СЭС.

3.3.1. Заключительная дезинфекция проводится в:

- домашних очагах, санитарно-неблагоустроенных, многонаселенных коммунальных квартирах, при наличии семейной очаговости, при дизентерии и других ОКИ;

- домашних очагах, где имеются дети раннего возраста (до двух лет), при сальмонеллезе и кишечном иерсиниозе по заключению врача, фельдшера ЛПУ или заявке эпидемиолога;

- общежитиях и гостиницах;

- благоустроенных детских дошкольных, в том числе специализированных учреждениях, школах-интернатах при возникновении групповых, заболеваний (двух и более случаев);

- неблагоустроенных детских учреждениях по каждому случаю;

- школах при возникновении групповых заболеваний (5 и более случаев);

- ЛПУ, только по заключению врача эпидемиолога;

- на пищеблоках организованных коллективов, предприятиях общественного питания, продукция которых послужила причиной возникновения групповой заболеваемости (5 и более случаев) сальмонеллезом, кишечным иерсиниозом и псевдотуберкулезом,

3.3.2. Дезинфекционная бригада выполняет заключительную дезинфекцию в очагах в следующем порядке:

- перед входом в очаг орошают из гидропульта входную дверь с двух сторон, затем обеззараживают проход \"дорожку\" к помещению, где находился больной (бактерионоситель), после этого руководитель бригады определяет объем предстоящей работы, готовят дезинфицирующий раствор необходимой концентрации для обеззараживай для помещений и отдельных объектов;

- при наличии мух в очагах вначале при закрытых окнах и дверях их уничтожают, используя инсектициды;

- после проведения дезинсекции открывают форточку (окно), приступают к обеззараживанию, в первую очередь, наиболее опасных в эпидемиологическом отношении объектов (выделения больного, горшки, белье нательное и постельное, посуда чайная и столовая, остатки пищи, дверные ручки, игрушки, уборочный материал, предметы ухода за больным (табл. 1}.

3.3.3. Камерную дезинфекцию вещей проводят по эпидпоказаниям. Для этого оформляют документацию на вещи, складывают их в мешок и выносят из очага, предварительно оросив мешок дезраствором. После чего приступают к дезинфекции всех помещений и мебели; обрабатывают места общего пользования: ванную, коридор, туалет. При наличии дворовых санитарных установок производят их дезинфекцию и дезинсекцию, после чего обеззараживают мусоросборники и территорию двора (в местах фекального загрязнения почвы) и т.д. В очагах сальмонеллезов и иерсиниозов особое внимание следует уделять обеззараживанию мест хранения, переработки и раздачи продуктов питания. В очагах кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза, по эпидпоказаниям и заключению врача -дезинфекциониста, необходимо предусмотреть проведение дератизационных мероприятий, главным образом в местах хранения и переработки пищевых продуктов.

3.3.4. По окончании работы в очаге члены бригады меняют халаты, упаковывают их для последующей камерной дезинфекции, моют руки с мылом.

3.4. Заключительная дезинфекция, выполняемая силами населения,

3.4.1. Заключительная дезинфекция проводится после изоляции больного ОКИ или при подозрении на них в домашних очагах: санитарно-благоустроенных, малонаселенных квартирах, при отсутствии семейной очаговости, а также детей раннего возраста.

3.4.2. Заключительную дезинфекцию силами населения организует персонал лечебного учреждения, выявивший данного больного. Врач (фельдшер), выявивший больного ОКИ, проводит инструктаж его или членов семьи о правилах и мерах предупреждения окружающих; оставляет памятку, разработанную с учетом особенностей местных условий, дает указания медицинской сестре о сроках проведения заключительной дезинфекции силами населения и рекомендует режимы обеззараживания отдельных объектов. В амбулаторной карте больного участковый врач отмечает дату, часы установления диагноза и организации дезинфекции силами населения и ее выполнения. В экстренном извещении (форма 58) делает отметку о санитарном состоянии и содержании очага. При необходимости для организации заключительной дезинфекции по указанию лечащего врача в очаг выходит медицинская сестра.

3.4.3. Для учреждении, работающих по принципу одновременной госпитализации и дезинфекции при значительной загруженности участковых медсестер в период сезонного подъема заболеваемости кишечным и инфекциями, организацию проведения заключительной дезинфекции силами населения осуществляет медсестра по эвакуации инфекционных больных санэпидстанций (дезстанций). Эвакуатор проводит инструктаж члена семьи больного о проведении дезинфекции и оставляет памятку.

3.4.4. Член семьи, проводящий дезинфекцию, надевает легко стирающуюся одежду, косынку, желательно резиновые перчатки и приступает к обеззараживанию комнаты больного, затем обрабатывает места общего пользования. Лицо, проводящее обработку, после завершения ее тщательно моет перчатки, снимает рабочее платье, косынку, помещает их в бак (таз) для кипячения, затем моет руки, принимает душ.

3.4.5. При выполнении заключительной дезинфекции населением применяют наиболее простые способы обеззараживания:

- кипячение белья, посуды, игрушек (в течение 15 мин с момента закипания);

- влажную уборку помещений (пол, подоконники, двери и т.д.), мебели, кухни, туалета с применением моюще-дезинфицирующих средств бытового назначения или 2%-ного мыльно-содового или другого моющего раствора.

3.4.6. При выполнении заключительной дезинфекции в очагах ОКИ силами населения камерную дезинфекцию не проводят.

3.4.7.Дезинфекционны отдел (отделение) санитарно-эпидемиологической станции или дезинфекционная станция ежегодно проводят инструктаж персонала лечебно-профилактических учреждений о правилах проведения заключительной дезинфекции силами населения в очагах инфекционных заболеваний.

3.5. Заключительная дезинфекция в лечебно-профилактических учреждениях.

3.5.1. В инфекционных больницах заключительная дезинфекция регламентирована приказом МЗ РК N 916 от 4 августа 2003г «Об утверждении Инструкции по санитарно- противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц (отделений)».

3.5.2. В соматических стационарах, после изоляции больных ОКИ, заключительную дезинфекцию проводит персонал больницы по режимам, указанным. в табл. 1

3.5.3. В случае выявления больного ОКИ на амбулаторно-поликлиническом приеме, после изоляции больного, в кабинете (боксе), а также в помещениях, где находился больной, проводят заключительную дезинфекцию силами персонала данного учреждения по режимам, указанным в табл. 1. При выявлении на приеме инфекционного больного персонал обязательно меняет халаты и моет руки двукратно теплой проточной водой с туалетным мылом.

4. Профилактическая дезинфекция

4.1. Профилактическая дезинфекция проводится с целью предупреждения накопления патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на объектах внешней среды, а также их переносчиков (насекомые, грызуны и др.), возникновения острых кишечных инфекций и их распространения.

4.2. Профилактическая дезинфекция проводится в:

- лечебно-профилактических учреждениях, ДДУ, школах, школах

- интернатах силами персонала;

- на предприятиях общественного питания, а также по производству, переработке пищевых продуктов и сырья животного происхождения работающими и силами дезинфекционных станций или дезотделений СЭС.

4.3. В лечебно-профилактических учреждениях проведение профилактических мероприятий регламентировано приказом «Об утверждении Инструкции о санитарно-противоэпндемическом режиме больниц и о порядке осуществления органами и учреждениями санитарно-эпидемиологической службы государственного санитарного надзора за санитарным состоянием лечебно-профилактических учреждений»/.

5. Дезинфекционные мероприятия в детских дошкольных учреждениях:

5.1. После изоляции больного в группе, которую он посещал, проводят заключительную дезинфекцию, см. п. 3.3.1. После проведения заключительной дезинфекции в группе на период карантина проводят дезинфекционные мероприятия по режимам, указанным в табл. 3.

5.2. В период, нахождения в изоляторе больного или подозрительного на ОКИ проводят текущую дезинфекцию, а после выведения из него больного гам организуют проведение заключительной дезинфекции.

5.3. При отсутствии изоляции между группами объем дезинфекционных мероприятий определяется степенью контакта' детей, посещающих эти группы.

5.4. Дезинфекцию проводят в отсутствии детей по окончании смены работы детского учреждения или во время прогулки детей по договоренности с персоналом детского учреждения.

5.5. При проведении дезинфекции со всех кроватей группы заболевшего снимают постельное белье и обеззараживают его кипячением с моющими средствами в специально выделенной комнате (при возможности) или замачивают в дезинфицирующих растворах.

Белье больного обеззараживают в отдельной емкости. Постельные принадлежности с кровати больного и рядом стоящих кроватей обеззараживают в дезинфекционной камере. При совместном хранении постельных принадлежностей последние отправляют на камерную обработку. При наличии наматрацников их подвергают обеззараживанию. В этом случае матрацы на камерную обработку не отправляют, а проводят механическую чистку щеткой или пылесосом, а также путем вытряхивания и пр. При обеззараживании объектов используют дезинфицирующие средства и методы, указанные в табл. 1 и 3, В случае наличия мух в детских учреждениях до дезинфекции проводят дезинсекцию (табл. 2).

5.6. Заключительную дезинфекцию в загородных детских учреждениях (детские учреждения, выезжающие на лето за город, пионерские лагеря и т.д.) проводят дезотделения местных санитарно-эпидемиологических станций.

5.7. Ответственность за организацию и выполнение текущей, заключительной дезинфекции в детских дошкольных учреждениях несут администрация и медперсонал учреждения.

6. Дезинфекционные мероприятия в школах:

6.1. При единичных случаях острых кишечных инфекций заключительную дезинфекцию выполняет персонал школ. При возникновении групповых заболеваний (5 и более случаев) заключительную дезинфекцию выполняют силам и дезбригад.

6.2. Обязательному обеззараживанию подлежат: буфет, столовая и санитарные узлы. По указанию эпидемиолога перечень объектов может быть расширен.

6.3. Ответственность за организацию и выполнение текущей, заключительной и профилактической дезинфекции в школах несут администрация и медицинский персонал школы.

7. Контроль за качеством дезинфекционных мероприятий:

7.1. Контроль качества дезинфекции осуществляется: визуальным и лабораторным (бактериологический и химический) методами в

соответствии с приказом "О мерах по дальнейшему укреплению и развитию дезинфекционного дела.

7.2. Обязательному контролю со стороны медперсонала подлежат очаги кишечных инфекций, находящиеся в санитарно неблагоустроенных, многонаселенных коммунальных квартирах, общежитиях, очаги, где проживают дети до двух лет, а также очаги по указанию эпидемиолога. При посещении очага медицинская сестра контролирует правильность проведения текущей дезинфекции, выполняемой силами населения.

7.3. Бактериологический контроль качества заключительной дезинфекции, выполняемой населением, не проводят.

7.4. При бактериологическом контроле смыв производится с площади не менее 200-300 кв.см на 2-3 смежных участках обследуемого объекта. При заборе проб с игрушек, посуды и т.п. смывы тампоном производятся с поверхности всего объекта.

7.5. Ускорения методика (одноэтапная) бактериологического контроля качества дезинфекции. Этот процесс – метод с использованием среды Хейфеца основан на возможности учета кишечной палочки в посевах только по изменению цвета среды без выделения чистой культуры и ее идентификации. Среда Хейфеца дает возможность получить окончательный результат через 18-24 часа после посева смывов. В сомнительных случаях пользуются трехэтапным методом исследования смывов. Состав среды Хейфеца: 10 г пептона, 5г маннита, 5г поваренной соли, 1 л водопроводной воды; после кипячения устанавливают рН раствор в пределах 7,4-7,6, а затем добавляют индикаторы: 1 мл 5%-ного спиртового раствора розоловой кислоты и 2,5 мл 0,1%-ного водного раствора метиленовой сини. При указанной рН цвет среды красно-фиолетовый. Красный цвет без фиолетового оттенка указывает на то, что среда имеет высокую щелочность и должна быть забракована. При производстве смывов после дезинфекции хлоросодержащими препаратами к предложенной рецептуре добавляют 10г гипосульфита.

Приготовление индикаторов:

а) 0,5 г порошка розоловой кислоты помещают в маленький флакончик с притертой крышкой и залявают 10 мл спирта; через 24 часа индикатор готов. Срок действия раствора 1 месяц;

б) 0,1 г метиленовой сини заливают 100 мл дистиллированной воды, нагревают до кипения; срок действия раствора неограничен. Готовую среду стерилизуют кипячением или нагреванием в кипящей водяной бане в течение 5 минут. Среду разливают в пробирки (8-10 мл), подвергают однократному прогреванию текущим паром в течение 20-30 мин. Засеянные пробирки ставят в термостат при 37 0С на 18 часов. По истечении указанного времени результаты учитывают по признаку изменения цвета среды. При наличии зеленого цвета среды и обильный характерной мутности регистрируют рост кишечной палочки.

7.6. Стандартная (трехэтапная) методика исследования смывов. Для бактериального контроля эффективности обеззараживания в очагах инфекции кишечной группы используют питательные среды Эйкмана или Хейфеца. Последняя среда обеспечивает более высокую высеваемость кишечной палочки в смывах, чем среда Эйкмана. Посевы на среде Эйкмана выдерживают в термостате при температуре 43 °С, на среде Хейфеца -при 37 0С 18 часов. На следующий день из пробирок, в которых имеется помутнение, платиновой петлей делают высев на среду Эндо в чашки Петри. Для получения изолированных колоний петлю с забранным материалом погружают у края чашки Петри в толщу агара, а затем извлекают петлю, делают ей в том же месте ряд штрихов. После этого наносят штрихи на остальную поверхность среды Эндо. Засеянные чашки Петри ставят в термостат при 370С на сутки. При отсутствии роста колоний на среде Эндо исследование на этом заканчивают. При наличии колоний делают мазок из одной половины колонии и окрашивают его по Грамму. Из другой половины колонии производят посев уколом в полужидкий столбик с глюкозой. Поскольку обычный критерий металлический блеск на среде Эндо - не является достаточным для распознания кишечной палочки, мазка и посев в полужидкую среду Гисса с глюкозой делают не только из колонии с характерным металлическим блеском, но и из колоний красного цвета и бесцветных. Засеянные пробирки с глюкозой помещают в термостат при 43 0С на 2-3 часа. Окончательный результат дают при наличии кислоты и газообразования в полужидком столбике с глюкозой и типичных грамотрицательных палочек при микроскопировавании мазков.

7.7. Оценка результатов исследований проб с поверхности обеззараженных объектов и с белья. Удовлетворительная оценка дезинфекции - при отсутствии роста кишечной палочки во всех исследованных пробах. Неудовлетворительная оценка - при обнаружении

кишечной палочки хотя бы в одной из них.

Примечание.

ЗАПРЕЩАЕТСЯ:

- проводить обработку горшков дезраствором в присутствии детей;

- хранить квачи для мытья горшков и унитаза вне хозяйственного шкафа;

- обеззараживать белье в помещениях групп;

- бак для обеззараживания посуды ставить на стол, табуретку, детский стул;

- хранить банки с дезрастворами для ветоши в местах, доступных детям.

Методика контроля качества стерилизации.

Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. Он предусматрива­ет определение эффективности и параметров стерилизации.

Надежность воздушной стерилизации зависит от конструкции стерилизатора, его исправности, схемы и объема загрузки, используемой защитной упаковки, применяе­мых методов оперативного и периодического контроля, подготовки персонала, обсу­живающего стерилизатор.
Проблема надежности особенно актуальна при эксплуатации аппаратов уста­ревших типов, при отсутствии доступных методов контроля стерилизации.

Контроль эффективности стерилизации в воздушном стерилизаторе осуществ­ляется бактериологическим методом и химическими термовременными индикаторами.

Бактериологический метод контроля проводят с помощью биотеста — объекта из определенного материала, обсемененного тест-микроорганизмами. В качестве носителей используют небольшой флакон, содержащий споры B.Licheniformis. Конт­роль проводят в соответствии с утвержденной методикой. Существуют и готовые сертифицированные тесты со спорами B.Licheniformis с цветными питательными средами, позволяющими провести бактериологический контроль непосредственно в ЦСО при наличии в нем термостата.

Контроль воздушной стерилизации химическими термовременными ин­дикаторами. Для оперативного контроля ранее рекомендовали многочисленные хи­мические вещества, точка плавления которых соответствует температуре стерилиза­ции. Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными инди­каторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего возду­ха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации.

Надежность оперативного контроля существенно повышается при использова­нии индикаторов интегрированного действия, в частности, НП фирмы «Винар» ИС-160 и ИС-180, изменяющая окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полос­ки индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Если окраска индикатора после стерилизации в какой-либо точке свет­лее эталона, все изделия считаются нестерильными.

Пакеты из пергаментной бумаги, используемые для упаковки, при стерилизации в современной стерилизующей аппаратуре имеют подобный индикатор, нанесенный в фабричных условиях.

Надежность паровой стерилизации зависит от нескольких факторов:

  • соблюдения условий эксплуатации;
  • точности контрольно-измерительных приборов, установленных на стерилизаторе;
  • полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий;
  • герметичности камеры стерилизатора.

Методы периодического контроля паровых стерилизаторов изложены в системе «чистый инструмент». Они включают:

  • проверку точности манометра;
  • проверку точности регистрации самописцами температуры и давления;
  • контроль герметичности камеры стерилизатора;
  • контроль качества автоматического вакуум-теста;
  • контроль эффективности сушки текстильных материалов;
  • проверку полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий. Определение эффективности бактериологическим методом в паровом сте­рилизаторе осуществляется тестами, содержащими споры B.Stearothermophilus в соответствии с методикой, утвержденной МЗ РК.

Оперативный контроль паровой стерилизации проводят химическими индика­торами интегрированного действия (термо-временными).

Индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота и др.), которые все еще используются в некоторых ЛПУ, не являются индикаторами стерильности, поскольку регистрируют только температуру, но не учитывают стерилизационную выдержку (время стерилизации). Индикаторы фирмы «Винар» ИС-120 и ИС-132, также, как и в воз­душном стерилизаторе, изменяют окраску до учета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки.

При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки сте­рилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все из­делия считаются нестерильными.

Техника забора материала от больного до лабороторного исследования.

Методика взятия носоглоточного отделяемого на менингококк

Необходимые приборы и материалы: чашку с сывороточной средой, пробирку с тампоном, шпатель, лоток, направление в бактериологическую лабораторию.

Методика проведения:

1. Подогреть чашку до температуры 37˚ С;

2. Промаркировать чашку;

3. Погнуть стержень тампона под 45˚ в пробирке;

4. Усадить пациента лицом к источнику света;

5. Попросить пациента широко открыть рот;

6. Придавить шпателем язык пациента книзу и кпереди;

7. Ввести тампон концом вверх в носоглотку, не касаясь слизистых, зубов, десен;

8. Возьмите мазок с задней поверхности мягкого неба и задней стенки носоглотки;

9. Выведите тампон из ротовой полости, не касаясь слизистых зубов, языка;

10. Приоткройте чашку со средой с одной стороны;

11. Сделайте посев тампоном на питательную среду;

12. Закройте чашку;

13. Подготовьте материал к доставке при температуре 37˚ С (на грелке или в контейнере).

Методика взятия мазков из зева и носа на дифтерию.

Необходимые приборы и материалы: стерильная пробирка со средой, стерильная петля.

Сбор испражнений может осуществляться разными способами: из унитаза, горшка, судна, пеленки ребенка, т.е. из «открытого стула», а также непосредственно из прямой кишки с помощью петли.

Кал из «открытого стула» берем стерильной петлей из 3-5 мест и помещаем в стерильную пробирку со средой. Собирая материал для посева, можно брать слизь, гной, фиброзные пленки, избегая примеси крови, так как в ней содержится бактерицидные вещества, разрушающие микробы. Емкость из которой забираем кал, не должен иметь следов дезинфицирующих средств.

При взятии кала из прямой кишки пациента необходимо проинформировать, как будет проводиться манипуляция

Методика поведения:

1. Подготовить пробирку со средой и петлей, промаркировать и выписать направление;

2. Объяснить пациенту цель исследования, как будет проводиться взятие посева;

3. Уложить пациента на кушетку на бок с согнутыми и подтянутыми к животу ногами;

4. Левой рукой раздвинуть ягодицы пациента;

5. Петлю из пробирки взять в правую руку;

6. Ввести петлю в прямую кишку на глубине 5-6-8 см;

7. Сделать легкое вращательное движение петлей;

8. Вывести петлю из прямой кишки;

9. Погрузить петлю в пробирку со средой, не касаясь краев пробирки, и и оставить ее в пробирке;

10. Закрыть пробирку ватной пробкой;

11. Прикрепить направление к пробирке;

12. при взятии кала из судна также оформляют направление, кал забирают металлической петлей или стеклянной трубочкой из 3 мест (избегая примесей крови) в количестве 2-3 г;

анализ отправляют в бактериологическую лабораторию в течении 47 часов. Хранить материал до доставки необходимо в холодильнике на нижней полке.


Дата добавления: 2015-02-06 | Просмотры: 2086 | Нарушение авторских прав



1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 |



При использовании материала ссылка на сайт medlec.org обязательна! (0.017 сек.)