АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Физические свойства крови

Удельный вес крови по Гаммершлягу. Для определения пользуются смесью, состоящей из 20 частей хлороформа и 55 частей бензола с удельным весом 1,050—1,055. В эту смесь осторожно опускают 1—2 капли крови и наблюдают, осторожно помешивая, тонут они 'в смеси или поднимаются наверх. Смотря по положению капли, прибавляют затем то хлороформа, то бензола до тех пор, пока капля крови не окажется устойчиво взвешенной в смеси жидкостей. В этот момент удельный вес смеси, который может быть легко установлен при помощи ареометра, равен удельному весу исследуемой крови. Исследование рекомен­дуется проводить как можно быстрее, так как вследствие процессов диффузии удельный вес крови быстро изменяется. Таким же образом определяют удель­ный вес сыворотки крови и плазмы.

У лошади удельный вес крови колеблется в норме в пределах 1,050—1,060. При сгущениях крови от потери большого количества воды, например, при поносах, сильном потении, рвоте и т. д., наблюдают повышение удельного веса. При нефритах причина такого же повышения, с одной стороны, потеря воды вследствие образования отёков, с другой—задержка почкой плотных составных частей мочи. Довольно значительные понижения удельного веса крови, опускающегося иногда до 1,025, связывают с анемиями как первичного, так и вторичного происхождения, гидремическими состояниями, при кахексиях.

Скорость свёртывания крови по Фирордту. В небольшой капилляр длиной в 5 см, с просветом в 1 мм набирают небольшой высоты (7₂—1 см) столбик крови. Затем проводят через просвет капилляра белый, хорошо обезжиренный конский волос длиной приблизительно 10—15 см и, удерживая волос за свободный конец, через каждые 30 секунд про двигают его на¹/,, см вперёд. Так как жидкая кровь не смачивает поверхности волоса, первое время он остаётся совер­шенно чистым. Начало свёртывания устанавливают по красноватому его окра­шиванию приставшими сгустками крови, постепенно усиливающемуся по мере повышения свёртывания. После того как кровь окончательно свернулась, воло­сок, как и в начале опыта, кровью не смачивается и не изменяет, таким образом, своей окраски.

Ещё удобнее следующий примитивный способ. На поверхность хорошо обезжиренного, совершенно сухого стекла, ближе к его краю, наносят каплю исследуемой крови и сейчас же, повернув стекло другим концом, устанавли­вают под углом в 50°. Капля, стекая по стеклу, оставляет след на его поверх­ности, по которому через каждые 30 секунд проводят остриём булавки. На­чало свёртывания определяется по появлению нитей фибрина на конце бу­лавки.

Наибольшей быстротой свёртывания отличается кровь собак и овец; у ло­шадей свёртывание идёт гораздо медленнее, чем у других домашних живот­ных. Из заболеваний, обусловливающих замедленное свёртывание, следует отметить прежде всего morbus maculosus, болезни из группы геморрагического диатеза, анемии различного происхождения, нефриты. Быстрое свёртывание наблюдают при гемоглобинемиях, крупозной пневмонии.

Вязкость крови. Под вязкостью понимают сопротивление, или внутреннее трение, жидкости, которое отражается на скорости прохождения её по капил­лярной трубке (при определённой температуре и давлении). Вязкость крови згщсит от количества гемоглобина, числа и объёма эритроцитов. Известное влияние оказывают затем газовый состав крови, а также количественные коле­бания лейкоцитов.

Все способы определения вязкости крови основаны на законе Пуазелля, по которому скорасть тока жидкости обратно пропорциональна вязкости. Наиболее простой и удобный — это способ Детермана. Условно вязкость крови обозначают греческой -ц.

Вискозиметр Детермана представляет собой капилляр с двумя расшире­ниями, ёмкостью в 0,1 куб. см, расположенными на одинаковом расстоянии от его обоих концов. На стенке капилляра, выше и ниже каждого расшире­ния, нанесены чёрточки с метками.

Капилляр помещается в большой стеклянной муфте, которая удерживается в штативе в вертикальном положении. Перед определением муфта наполняется водой с температурой в 20°. Затем в капилляр насасывают кровь до метки выше нижнего расширения и, зажав плотно пальцем конец капилляра, чтобы не вы­ливалась набранная кровь, муфту устанавливают в штатив в вертикальном положении. Опустив затем палец, муфту быстро переворачивают и по секундо­меру отмечают время, когда кровь достигнет чёрточек, расположенных выше и ниже нижнего расширения капилляра. Поворачивая муфту, производя 3—4 определения и, взяв из них среднее арифметическое, делят его на ско рость продвижения воды. По Шнейдеру, вязкость крови лошади в среднем 4,28,а h сыворотки—1,65. У жеребцов и жерёбых маток она несколько выш отмеченной средней. В общем предельные колебания у здоровых животны не превышают 12%. В патологических случаях они идут значительно дальше.В числе заболеваний, сопровождающихся некоторым повышением h, следуетотметить воспаление лёгкого, перитонит, заболевания сердца, связанные с eгонедостаточностью, а также расстройства окислительной функции лёгкого.

Первичные и вторичные анемии, а также резкие кахексии имеют свои следствием некоторое понижение вязкости крови.

Ретракция кровяного сгустка. Под ретракцией понимают свойство кро самопроизвольно отделять сыворотку от сгустка при отстаивании. Методи исследования сводится к следующему: кровь набирают в хорошо вымытуюи очищенную спиртом и эфиром сухую пробирку диаметром в 1,5—2 cм и отстаивют при комнатной температуре в течение суток. Образование кровяного сгустка и отделение сыворотки у лошади начинаются обычно через 1—2—Зчаса и заканчивается через 12 часов. Через сутки отсасывают отделившуюся сыво­ротку и определяют отношение её к объёму всей взятой крови. Индекс ретракции у лошади в среднем равен 0,5. При исследовании необходимо строго придержи­ваться единой методики, так как, по существующим наблюдениям, результат во многом зависит от диаметра пробирки, положения её, а также и свойства самой стенки.

Степень ретракции крови колеблется в больших пределах, в зависимости от рода животного. У лошади она рззко выражена, у крупного рогатого скота очень слаба, а часто и вовсе не наступает. Ослабление ретракции связывают с уменьшением тромбоцитов и изменениями концентрации солей. Уменьшение ретракции кровяного сгустка с падением индекса до 0,3; 0,2; 0,1 наблюдается при многих лихорадочных и инфекционных заболеваниях. Полное отсутствие ретракции мы наблюдали иногда при инфекционной анемии, morbus maculo-sus, экссудативном плеврите и контагиозной пневмонии.

Особенно важное значение изменению ретракции крови придают при ста-хиботриотоксикозе. Клинический опыт и экспериментальные наблюдения показывают, что у лошадей при длительном скармливании грубых кормов, поражённых грибком stachybotrys altertians, первым изменением со стороны крови является постепенно усиливающееся падение ретракции, заканчиваю­щееся обычно полной потерей способности кровяного сгустка отделять сыво­ротку—так называемой ирретрактильностью. Другие изменения со стороны крови — тромбопения, лейкопения, изменения лейкоцитарной формулы и лейко­цитарного профиля — присоединяются несколько позже.

При кишечной форме стахиботряотоксикоза, протекающей скрытно, с явлениями лёгкого катара желудка и кишек, резкое падение ретракции крови и особенно полную иррзтрактильность рассматривают как симптом наступаю­щего перехода болезни в септическую форму — тяжёлое страдание, нередко заканчиваю дееся смертью. Таким образом, эта простая методика даёт воз­можность очень легко выделить из общей массы больных тех лошадей, у кото­рых, несмотря на как бы лёгкое клиническое течение, болезнь зашла далеко и грозит жизни. Разумная терапия с изъятием из рациона вредного корма и дача доброкачественного фуража помогают быстро восстановить здоровье животных и избавите хозяйство о г крупных потерь.

Осмотическая резистентность эритроцитов (ОРЭ). Красные кровяные тельца показывают большую устойчивость по отношению к изотоническим растворам, в которых они долго сохраняются, не подвергаясь влияниям среды, так как осмотического обмена между нею и клетками не происходит. Эритро­циты в гипертонических растворах быстро сморщиваются, отдавая среде свою воду; в гипотонических наблюдают набухание эритроцитов, вследствие посту­пления в клетку воды, выщелачивание гемоглобина и, наконец, полный распад эритроцитов, потерявших свое красящее вещество; однако, действие гипотони­ческого раствора зависит от его концентрации, так как только при низких разведениях получается быстрый и полный гемолиз всей массы взвешенных эритроцитов. Растворы, близкие по концентрации к изотоническим, разрушают лишь отдельные, наименее устойчивые клетки, вызывая лишь частичный гемо­лиз, в то время как главная их масса совершенно не изменяется. Таким обра­зом, устойчивость красных кровяных телец по отношению к гипотоническим растворам выражена далеко не одинаково у различных клеток. В то время как одни усиленно сопротивляются действию осмоса, другие быстро разрушаются под его влиянием. Эту начальную стадию гемолиза, которая выражена лишь появлением лёгкого желтоватого оттенка жидкости, обозначают как мини­мальную резистентность эритроцитов. Концентрация раствора, вызвавшего полный гемолиз, определяет собой максимальную резистентность. Колебания между той и другой носят название ширины резистентности.

Наиболее простым способом определения резистентностиэритроцитов является способ Лимбек — Рибьера. В серии пробирок, приготовленных для реакции, делают ряд разведений раствора NaCl с расчётом, чтобы концентра­ция жидкости в каждой следующей пробирке была на 0,02 ниже предыдущей. Для этого в первую из пробирок отмеряют 0,6 куб. см основного 1 % раствора NaCl, во вторую — 0,58куб. см, в третью—0,56 куб. см и т. д., уменьшая содер­жание основного раствора в каждой следующей пробирке на 0,02. Последняя из них содержит всего 0,30 куб. см основного раствора. Затем при помощи пи­петки в каждую из пробирок вносят дестиллированную воду с расчётом, чтобы объём всего раствора довести до 1 куб. см.

Приготовив ряд разведений, набирают пипеткой из гемоглобинометра Сали 20 мм крови и смешивают её с раствором в первой пробирке. Точное такое же количество крови отмеряют и во все остальные пробирки. Перемешав жидкость и выждав затем 10—15 минут, пробирки устанавливают в центрифугу на 5 минут и просматривают результаты. Там, где произошёл полный гемолиз, жидкость окрашена в яркокрасный цвет и является совершенно прозрачной. В пробирках с частичным гемолизом окраска выражена слабее и на дне можно заметить кроваво-красный осадок. Совершенно бесцветные растворы указывают на отсутствие следов гемолиза.

Таким образом, при исследовании нормальной крови в пробирках с раство­ром, близким к изотоническому, жидкость остаётся совершенно бесцветной и прозрачной. Лёгкое желтоватое окрашивание раствора указывает на начало гемолиза (минимальная резистентность), в то время как слабое покраснение— показатель ясного гемолиза. При сильном гемолизе, несмотря на вишнево-красную окраску жидкости, на дне пробирки можно заметить небольшой осадок. Полный гемолиз даёт резкую красную окраску жидкости без следов осадка (максимальная резистентность).

У здоровых лошадей минимальная резистентность колеблется в пределах 0,54—0,66, максимальная — между 0,4 0,48. Ширина резистентности — 0,4—0,66.

Изменяющаяся под влиянием болезненного процесса резистентность эри­троцитов в некоторых случаях даёт очень ценные диагностические указания. В настоящее время её выдвигают в качестве критерия при оценке регенератив­ной способности кроветворного аппарата. Молодые, только что выброшенные в кровяное русло эритроциты бедны Р₄0₅ и липоидами, вследствие чего они оказываются наименее устойчивыми формами и гемолизируются значительно раньше старых, насыщенных фосфором и липоидами. Чем старше клетка, тем резче выражена её устойчивость по отношению к гипотоническим растворам. Повышенная максимальная резистентность эритроцитов, являясь, таким обра­зам, следствием ослабления процессов регенерации костногз мозга, указывает, что главная масса эритроцитов состоит "из очень старых клеток.

Чем ниже минимальная резистентность, чем меньшую устойчивость пока­зывают эритроциты по отношению к гипотоническим растворам, тем энер­гичнее процессы регенерации, выбрасывающие в ток крови новые массы моло­дых, ещё не созревших клеток, тем моложе эритроциты.

Понижение минимальной резистентности обнаруживают при заболева­ниях, сопровождающихся усиленным гемолизом и гемолитической желтухой. При мышечном переутомлении наблюдают обычно снижение обоих видов рези­стентности на 0,02—0,04%.

Весьма ценным этот метод исследования считается также при пробных испы­таниях лошадей, отражая степень тренировки животного, его подготовку и способность к выполнению определённой нагрузки. У нетренированных лошадей максимальная резистентность высока; путём постепенного втягивания животных в работу её можно значительно снизить. У хорошо подготовленных лошадей максимальная резистентность значительно ниже.

Реакция оседания эритроцитов (РОЭ). Быстрота оседания эритроцитов in vitro зависит от действия целого ряда физиологических и патологических факторов. Особенно большое значение имеет свойство среды, окружающей эритроциты, т. е. плазмы крови, а также количество и свойства эритроцитов.

Основным регулятором скорости падения эритроцитов в настоящее время считают электростатические свойства крови, а именно — электроотрицатель­ный заряд эритроцитов. Благодаря отрицательному заряду эритроциты, взве­шенные в плазме крови, отталкиваясь друг от друга, хорошо противостоят действию силы притяжения и долго удерживаются во взвешенном состоянии. С уменьшением электрического заряда скорость падения пропорционально уве­личивается, поэтому всё, что уменьшает электрический заряд эритроцитов, увеличивает скорость их падения.

Как в норме, так и в патологических слу­чаях величина электроотрицательного заря­да определяется, главным образом, содер­жанием белка в плазме и соотношением белковых фракций плазмы. С увеличением количества белка и повышением содержания глобулинов величина заряда уменьшается и пропорционально ей растёт быстрота падения эритроцитов. Увеличение альбуминовой фрак­ции белков действует в обратном направле­нии, задерживая ход РОЭ.

Некоторое значение имеет далее количе­ство содержащегося в плазме фибриногена, который, оседая на эритроцитах, образует на их поверхности вязкий гель. Вследствие адсорбции фибриногена, эритроциты, сопри­касаясь друг с другом, склеиваются в куч­ки, агглютинируются и быстро падают на дно. С увеличением процентного содержания фибриногена в плазме скорость РОЭ соответ­ственно повышается.

Кроме того, на быстроту оседания эритро­цитов оказывают влияние щелочной резервкрови, липоидно-холестериновый коэфициент и содержание различных солей. Считают, что уменьшение щелочного резерва замедляет ход РОЭ, повыше­ние щёлочности крови ускоряет его. Среди кристаллических веществ, раство­рённых в плазме, соли кальция и бария действуют ускоряющим образом, соли калия и натрия, наоборот, задерживают оседание. Холестерин, снимая отри­цательный заряд эритроцитов, действует подобно глобулинам, увеличивая при повышении его содержания быстроту оседания эритроцитов. Лецитин влияет противоположным образом.

По мнению некоторых, среди факторов, определяющих быстроту падения, наибольшее значение имеет количество эритроцитов. Действительно, ряд поста­вленных экспериментов показал, что одна и та же кровь даёт различные скоро­сти оседания, в зависимости от числа красных кровяных телец. Увеличивая их содержание (в условиях опыта), удаётся задержать ход РОЭ; с усменьшением количества эритроцитов быстрота оседания резко повышается (Пирогов). Таким образом, несмотря на крайнюю простоту и примитивность методики, РОЭ представляет собой очень сложную биологическую реакцию, подчинён­ную действию ряда факторов. Конечные результаты, несмотря на выраженное влияние одного какого-либо фактора, являются равнодействующей всех этих влияний, взятых вместе. Поэтому нет ничего удивительного в том, что одни и те же изменения, например, ускорение оседания эритроцитов, наблюдаются при очень многих, совершенно между собой различных заболеваниях.

Помимо внутренних факторов, на ходе РОЭ отражаются и внешние усло­вия: температура окружающей среды, количество и концентрация растворов,прибавленных для задержки свёртывания, и, наконец, положение сосуда, в котором производится реакция.

Среди многочисленных способов определения быстроты оседания эритроци­тов наиболее демонстративные результаты даёт способ Вестергрена. Реакцию по Вестергрену производят в особых пипетках, длиною 30 см, при 2,5 мм ширины и объёме, равном 1 куб. см. На боковой поверхности их нанесены деления от О до 200. Пипетку заряжают цитратной или • оксалатной кровью и, установив уровень столба на 0, укрепляют при помощи особого зажима в особой под­ставке. Цитратный раствор крови приготовляют в градуированном цилинд­ре, смешивая 1 куб. см 3,8% раствора лимоннокислого натрия с 4 куб. см крови. Установив пипетку, наблюдают за ходом реакции, отмечая уровень оседающего столба эритроцитов через 15, 30, 45 минут, 1, 2 и 24 часа. По­казания первого часа имеют особенное значение при резком ускорении хода реакции.

В ветеринарной практике для определения РОЭ применяют обычно градуи­рованные на 100 делений пробирки, получившие название эритроседиометров. Для предупреждения свертывания пользуются оксалатом натрия. Небольшое количество этого препарата (около 0,02 г) кончиком ножа насыпают в эритро-седиометр, затем при помощи венной пункции набирают кровь до верхней метки, закрывают пробирку пробкой и осторожно перемешивают, стараясь не пенить кровь. Установив эритроседиометр в подставку, ведут затем наблюде­ние за скоростью оседания эритроцитов, отмечая уровень столба через 15, 30, 45, 60 минут, 2 и 24 часа.

В медицине особенно широкое распространение получила микрометодика РОЭ ю Панченко, которая представляет собой некоторую вариацию метода Вестерграна.

Результаты реакции оседания дают в виде небольшой таблички, отмечаю­щей уровень столба через указанные промежутки времени: 15, 30, 45, 60 Минут, 2 и 24 часа.

Предложенные для учёта конечных результатов различными авторами индексы не удовлетворяют клинициста, так как они не отражают всех особен­ностей хода реакции, значительно уступая в этом отношении табличка.

У здоровых животных РОЭ протекает по двум типам.

У крупного рогатого скота и плотоядных РОЭ идёт очень медленно, причём главная масса эритроцитов оседает после 2 часов, в промежутке между 2—24 ча­сами. В этом отношении кровь указанных животных имеет много общего с кровью человека.

У лошади оседание эритроцитов идёт по другому типу, заканчиваясь, глав­ным образом, в течение первого часа, причём на долю остальных 23 часов при­ходится не более 3—5—8% всего столба. Главная масса эритроцитов (до 50— 60% первоначального столба) оседает в промежутке между 15 и 45 минутами. В течение первых 15 минут осаждается только 5—20—30% всего столба. Столько же приблизительно падает на долю последней четверти первого часа.

Показывая большую чувствительность к изменениям физико-химического состава крови, РОЭ имеет большое клиническое значение.

Среди изменений хода РОЭ чаще всего наблюдается ускорение осаждения. Замедление встречается сравнительно редко. У лошади ускорение РОЭ наблю­дают при очень многих лихорадочных и инфекционных заболеваниях: при ан­гине, мыте, инфекционном катаре верхних дыхательных путей, при конта­гиозной плевропневмонии, сапе, катарах лёгкого, гемоглобинемии. Степень изменений бывает различной, в зависимости от характера страдания, актив­ности процесса, его глубины и силы, а также от степени интоксикации. Поразительно быстрое оседание эритроцитов наблюдают при инфекционной анемии и morbus maculosus. Во многих случаях осаждение при этих заболева­ниях заканчивается почти полностью в течение первых 15 минут. С улучшением процесса изменяется и РОЭ; падение эритроцитов происходит несколько медленнее, однако, реакция остаётся ещё долгое время ускоренной. Только при пол­ном восстановлении здоровья РОЭ возвращается к норме.

Особенно большое значение реакции оседания эритроцитов придают в диаг­ностике инфекционной анемии лошадей. При латентной и хронической форме этой инфекции, когда клиническое исследование не даёт существенных изме­нений, на которые можно было бы опереться при постановке диагноза, реакция оседания часто показывает ясное ускорение, являясь одним из немногих симп­томов, указывающих на какое-то заболевание. На основании резкого ускоре­ния РОЭ при массовом обследовании неблагополучного по инфекционной ане­мии конского состава удаётся выделить лошадей, подозреваемых в заболева­нии, а при дальнейшей проверке больных и подозреваемых положительная РОЭ расценивается как новый объективный признак болезни. Кроме того, воз­можность определить по результатам РОЭ содержание эритроцитов в 1 куб. мм крови, установить волюметрический объём и индекс оседания повышают зна­чение этой простой методики в диагностике инфекционной анемии лошадей.

Наиболее резкое замедление РОЭ мы наблюдали при инфекционном энцефа-ломиэлите лошадей и механических илеусах. Замедление оседания эритроци­тов при этих страданиях настолько резко выражено, что ход РОЭ совершенно меняется и становится аналогичным РОЭ у крупного рогатого скота. Менее резкое замедление наблюдается при различных гастроэнтеритах, некоторых формах колик, сгущении крови (альгидные состояния) и заболеваниях, свя­занных с резкими желтухами.

Помимо чисто диагностических целей, РОЭ пытаются использовать в каче­стве подсобного метода при определении утомляемости лошади, её пригодности к определённой работе, действия тренировки, при установлении норм на­грузки и т. д. Критерием при этого рода исследованиях является замедление РОЭ, причём степень утомляемости определяется величиной отклонения от ра­нее установленной (прямым опытом) для каждого животного нормы. Особенно большое замедление в ходе РОЭ получается у нетренированных лошадей. По­степенно, по мере привыкания к определённому аллюру, нагрузке, продолжи­тельности работы, отклонения делаются менее выраженными.

Конечные результаты РОЭ, помимо скорости оседания, дают представление о количестве эритроцитов в крови и делают возможным определение индекса осаждения и волюметрического индекса. Для определения содержания красных кровяных телец уровень столба после 24-часового оседания помножают на коэфициент 0,21, в результате получают количество эритроцитов (в миллионах) в 1 куб. мм крови. Так как ошибки не превышают 0,5 млн. в ту и другую сто­рону, эта простая методика имеет практическое значение и иногда заменяет камерный подсчёт красных кровяных телец.

Под волюметрическим индексом понимают отношение столба эритроцитов к общей массе крови. Его определяют делением высоты столба эритроцитов после 24-часового оседания на 100. У здоровых лошадей колебания волюметри­ческого индекса не превышают 1:2—1:3. При анемиях отношения делаются значительно шире и доходят до 1:5—1:6—1:7.

Для определения индекса осаждения уровень столба отстоявшейся плазмы после 15-минутного оседания делят на высоту конечного столба плазмы после 24-часового оседания. Результаты получаются в виде десятичной дроби. У здоровых лошадей индекс осаждения колеблется в пределах от 0,2 до 0,5. При ускорении РОЭ индекс соответственно повышается, приближаясь к еди­нице (0,7—0,8—0,9).

Резервная щёлочность крови. Определение резервной щёлочности крови, т. е. количества СО₂, которое может быть связано с бикарбонатами, произво­дится для выяснения изменения кислотно-щелочного равновесия организма. Однако определение щелочного резерва крови ещё не даёт возможности судить о степени расстройства, так как, с одной стороны, между реакцией крови и тканей не существует строгого параллелизма, с другой — кроме щелочного резерванеобходимо определение следующих катионов и анионов: Cl₂, HCO₃, Mg, Са, К и др.

Газометрическое определение резервной щёлочности крови по ван-Сляйку и электрометрическое определение рН крови по Михаэльсу не нашли, вслед­ствие сложности методики, широкого распространения в клинике. Для определе­ния истинной реакции крови чаще пользуются колориметрическим способом Михаэльса. Исследование производят в компараторе Вальполя. В пробирку компаратора вливают 1 куб. см исследуемой сыворотки и 5 куб. см физиологи­ческого раствора. Смесь обрабатывают 1 куб. см 0,3% водного раствора мета-нитрофенола, пробирку помещают в компаратор и определяют рН сыворотки путём сравнения с эталонными растворами.

Для клинического определения реакции крови пользуются методом учёта кислотной ёмкости крови. Несложная методика определения состоит в том, что к 10 куб. см n/lOOHCl прибавляют 0,2 куб. см исследуемой крови; смесь взбалтывают и титруют из микробюретки n/ 10щёлочью до помутнения жид­кости и выпадения хлопьев.

Если вычесть количество израсходованной на титрование щёлочи из единицы, то разность, умноженная на коэфициент 20, показывает (в миллиграммах) щёлочность 100 куб. см крови.

У здоровой лошади щелочной резерв даёт колебания от 620 до 470 мг, у коровы — от 540 до 460 мг.

Довольно резкое понижение щелочного резерва установлено у беговых лоша­дей; небольшой сравнительно отдых быстро восстанавливает нормальные соотно­шения. Ещё более резкие снижения щелочного резерва обнаруживают при родильном парезе и ацетонемии крупного рогатого скота, при нефритах, уремии, эклампсии и, особенно, при диабете.

Повышенную щёлочность крови отмечают при крупозной пневмонии, morbus maculosus, при шоке, пироплазмозе. Данными определения щелочного резерва, кроме того, можно пользоваться при постановке прогноза, хотя, ко­нечно, они не всегда имеют абсолютное значение; во всяком случае, при рав­ных азотемиях прогноз тем хуже, чем ниже щелочной резерв [крови.

Дата добавления: 2015-09-27 | Просмотры: 841 | Нарушение авторских прав