АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология
|
Подвижные генетические элементы (транспозоны)
Привычные представления о стабильности генетической организации были сильно поколеблены в 70-х годах исследованиями подвижных генетических элементов у бактерий. Первые такие элементы у бактерий получили название инсерционных последовательностей ( IS ) или вставок. У Е. coli они были выявлены как причина возникновения определенного типа мутаций. Эти мутации полностью подавляют экспрессию гена, в котором они происходят.
Исследование гетеродуплексных молекул, образованных ДНК мутанта и ДНК дикого типа, показало, что инсерционные мутанты содержат участки ДНК, встроенные в молекулу ДНК дикого типа (рис. 8.11). Было обнаружено, что несколько различных встраивающихся последовательностей могут вызывать мутации многих генов. Некоторые свойства наиболее известных из этих последовательностей представлены в табл. 8.1. Они различаются размером, но имеют некоторые общие черты строения. На концах содержатся одинаковые или почти одинаковые нуклеотидные последовательности, расположенные, однако, в обратном порядке. В случае IS1, например, концевые последовательности содержат по 23 нуклеотида, 18 из которых одинаковы для обоих
Рис. 8.11. Электронная микрофотография гетеродуплексной молекулы ДНК λgαl+/λgαl3. Одноцепочечная петля (указана стрелкой) -это вставка IS2 в гене gal+ [ _Ahmed Α., Scraba D. (1975). Mol. Gen. Genet., 136, 233.]
|
|
242 Организация и передача генетического материала
Таблица 8.1. Характеристика инсерционных последовательностей
| Название
| Число копий в клетке
Е. coli
| Длина
(н.п.)
| Число общих н.п. в инвертированном повторе
| Длина повтора
в ДНК-мишени
(н.п.)
| IS1
| 5-8 копий на хромосому
|
| 18/23
|
| IS2
| 5 на хромосому, 1
на F
|
| 32/41
|
| IS3
| 5 на хромосому, 1
на F
|
| 32/38
| 3 или 4
| IS4
| 1 или 2 копии на
хромосому
|
| 16/18
|
| IS5
| Известна только в
фагах λ и Ми
|
| 15/16
|
| IS10
IS50
|
|
| 17/23
8/9
|
| gd
| 1 на F, 1 или более
на хромосому
|
|
|
|
концов. Кроме того, когда инсерция встраивается в ДНК-мишень, небольшой участок последовательности ДНК-мишени повторяется около каждого конца инсерции. Эта повторяющаяся последовательность ДНК, окаймляющая инсерцию, содержит обычно от 5 до 9 нуклеотидов.
Инсерционные последовательности обладают следующими генетическими свойствами:
1. Наиболее характерная особенность -это способность перемещаться по геному. При этом происходит репликация инсерционной последовательности: исходный экземпляр остается в прежнем сайте, а копия встраивается в мишень. Сайты-мишени, куда встраиваются инсерционные последовательности, вообще говоря, почти не обладают специфичностью. Функции, обеспечивающие способность к перемещению (транспозиции), закодированы в самой инсерционной последовательности и жестко регулируются, поскольку транспозиция представляет собой редкое событие, происходящее на порядок реже, чем сами спонтанные мутации.
2. Инсерционные последовательности могут точно вырезаться; при этом происходит реверсия IS-индуцированной мутации к дикому типу.
3. В сайтах, смежных по отношению к инсерции, возникают делеции бактериальных генов (рис. 8.12).
4. В смежных по отношению к инсерции сайтах происходят инверсии бактериальных генов.
5. Инсерционные последовательности обеспечивают взаимодействие между такими генетическими элементами, как F-фактор и бактериальная хромосома.
Возможные механизмы реализации этих свойств мы обсудим в гл. 14, а здесь лишь прокомментируем последнее свойство.
Физическая карта F-фактора Е. coli изображена на рис. 8.13, А. Она содержит 94 500 н. п., в ее состав входят гены, обеспечивающие конъюга-
8. Бактериальный геном 243
| Рис. 8.12. Цветными линиями обозначены делеции, индуцируемые элементом IS1 в gal -опероне Е. coll.
|
ционный перенос хромосом (гены tra), и гены, обеспечивающие репликацию самого F-фактора. Кроме того, карта включает четыре инсерционных последовательности: две IS3', одну последовательность IS 2 и одну, так называемую γδ. Эти последовательности представляют собой сайты, которыми F-фактор встраивается в хромосому бактерии, что и приводит к возникновению клетки Hfr. Свидетельствующие об этом
Рис. 8.13. А. Физическая карта F-фактора Е. coli, на которой изображена локализация генов, необходимых для передачи хромосомы, и IS-элементы, ответственные за интеграцию F-фактора в бактериальную хромосому. Б. Физическая карта фактора устойчивости, на которой указаны области гомологии с F-фактором и сайты устойчивости к некоторым антибиотикам, окаймленные IS-элементами и образующие транспозоны. Обратите внимание на то, что транспозон Tn3, несущий ген amp, представляет собой часть более крупного транспозона Tn4.
|
|
244 Организация и передача генетического материала
данные были получены при изучении структуры F'-элементов посредством гетеродуплексного картирования. В ДНК F'-элемента бактериальная ДНК, интегрированная в F-фактор, отделена с обеих сторон от ДНК F-фактора идентичными инсерционными последовательностями. Способность F-фактора встраиваться в различные участки хромосомы Е. coli может быть обусловлена двумя событиями: кроссинговером между инсерционными последовательностями, входящими в состав как F-фактора, так и бактериальной хромосомы, либо транспозицией инсерционной последовательности F-фактора в мишень бактериальной хромосомы, приводящей к слиянию двух отдельных кольцевых репликонов в один (см. гл. 14).
Инсерционные последовательности относительно невелики и кодируют лишь функции, необходимые для их транспозиции. Второй класс подвижных элементов, так называемые транспозоны (Τn), содержат кроме того гены, не имеющие отношения к транспозиции, но сообщающие важные свойства клеткам бактерии-хозяина. Структурные свойства некоторых транспозонов представлены в табл. 8.2. Некоторые транспозоны, например Tn5, содержат на каждом конце известную инсерционную последовательность. Эти последовательности могут быть как одинаково, так и противоположно направленными. Другие транспозоны на концах содержат простые инвертированные повторы, по размерам близкие инсерционным последовательностям. Тот факт, что две одинаковые инсерционные последовательности могут функционировать согласованно, обеспечивая транспозицию инвертированного участка ДНК, как в случае Тп5, свидетельствует о том, что другие транспозоны, в настоящее время устроенные по-другому, могли эволюционно возникнуть из такой структуры в результате утраты большей части внутренних участков исходной предковой инсерционной последовательности. Так же как и в случае инсерционных последовательностей, перемещение транспозонов приводит к образованию повторов в последовательности ДНК-мишени по обоим концам транспозона.
Впервые транспозоны были обнаружены, когда оказалось, что некоторые гены устойчивости к антибиотикам связаны с инфекционными факторами устойчивости. Общая структура факторов устойчивости изображена на рис. 8.13, Б. При исследовании гетеродуплексной ДНК, образованной ДНК F-фактора, и фактора устойчивости обнаружена гомология по всей области tra-генов, что свидетельствует об эволюционном родстве этих структур. Последовательность ДНК, кодирующая устойчивость к тетрациклину, tet, обрамлена элементами IS 3 и встроена в область гомологии фактора устойчивости и F-фактора. В негомологичной области карты локализованы гены, кодирующие резистентность к ампициллину (amp), сульфонамиду (sul), стрептомицину (str), хлорамфениколу (cml) и канамицину (kan). Эти гены устойчивости порознь или группами обрамлены IS элементами или другими инвертированными повторами (указаны стрелками на рис. 8.13, Б). Отдельные гены устойчивости например, tet или amp, могут переноситься в другие эписомы или плазмиды, а также в хромосомы фагов и бактерий, почему и возник термин транспозон.
Наиболее крупный из известных транспозонов - это умеренный бактериофаг Mu. Mu может в форме профага встраиваться в любое место генома Е. coli, инактивируя гены, оказавшиеся на месте мишени. При литическом развитии Mu ДНК для репликации должна быть встроена
8. Бактериальный геном 245
Таблица 8.2. Характеристика некоторых транспозонов
| Транспозон
| Обусловливает
устойчивость
| Длина
(н.п.)
| Число общих
н.п. в инвертированном
повторе
| Длина повтора в ДНК-мишени (н.п.)
| Τn 1, Τn 2, Τn 3
| К ампициллину
|
|
|
| Τn 4
| К ампициллину,
стрептомицину,
сульфонамиду
|
| мало
| Включает Τn 3
| Τn 5
| К канамицину
|
| 8/9
| 9 Концы Τn 5 представляют собой противоположно ориентированные инсерции IS50
| Τn 6
Τn 7
| К канамицину
К триметоприму, стрептомицину
|
|
|
| Τn 9
| К хлорамфениколу
|
| 18/23
| 9 Концы Τn 9 представляют собой одинаково ориентированные
инсерции IS1
| Τn 10
| К тетрациклину
|
| 17/23
| 9 Концы Τn 10 представляют собой противоположно ориентированные инсерции
IS10
| Τn 204
| К хлорамфениколу
|
| 18/23
|
| Τn 402
| К триметопри-
му
|
|
|
| Τn 501
| К ионам ртути
|
|
|
| Τn 732
| К гентамицину,
тобрамицину
|
|
|
| Τn 903
| К канамицину
|
|
|
| Τn 1681
| К теплоустойчивому энтеротоксину
|
| 18/23
| 9 Концы Τn 1681 представляют собой инсерции IS1
| Бактериофаг Mu
|
| 38 000
| нет
|
|
в хромосому хозяина. Выделенная из фага Мu ДНК содержит, кроме линейного генома фага, присоединенные к каждому его концу короткие случайные последовательности ДНК бактерии-хозяина. В случае, когда участок бактериальной хромосомы заключен между двумя Мu-геномами, он может транспозироваться целиком. Интересно, что впервые подвижные генетические элементы были описаны Барбарой Мак-Клинток еще в 1951 году на кукурузе. Она назвала их контролирующими элементами, поскольку они встраивались по соседству с некоторыми генами, в частности, генами, определяющими пигментацию зерен, и оказывали влияние на этот признак растения. Мак-Клинток описала также способность контролирующих элементов
246 Организация и передача генетического материала
перемещаться по геному. В настоящее время стало ясно, что подвижные генетические элементы составляют неотъемлемую часть генома как прокариотических, так и эукариотических организмов. Описание структуры этих элементов на молекулярном уровне началось с прокариот, поскольку соответствующие методы исследования ДНК прокариотических организмов были разработаны в 70-х годах, тогда как метод рекомбинантных ДНК, позволяющих на том же уровне исследовать ДНК эукариотических организмов, стал доступен лишь в 80-х годах. Вспомним о подвижных элементах в гене white дрозофилы (рис. 6.17).
Генетическое картирование Е. coli
Метод прерванной конъюгации удобен при физическом картировании генов, довольно удаленных друг от друга, но не может использоваться при картировании маркеров, находящихся на близком расстоянии. Такие локусы картируют посредством рекомбинационного анализа, основанного на тех же принципах, которые были использованы при постановке трехфакторных скрещиваний (гл. 5 и 7).
Для рекомбинационного картирования требуется клетка реципиента с кольцевой ДНК хромосомы и ДНК донорной клетки. ДНК клетки-донора может вводиться в клетку реципиента различными способами: с помощью Hfr-хромосомы (при конъюгации), вместе с фагом-вектором (трансдукция), или путем прямой передачи ДНК из клетки донора в клетку-реципиент, как это описано в гл. 4 в отношении пневмококков (трансформация). Образующаяся при этом частично диплоидная клетка называется мерозиготой. Мерозиготы нестабильны, поскольку донорная ДНК представляет собой фрагмент целого репликона. Генетические
| Рис. 8.14. Генетическое картирование посредством рекомбинационного анализа мерозигот, возникающих в результате конъюгации. Отбирается дистальный маркер С. Расстояние на генетической карте между В и С определяется как умноженное на 100 отношение числа рекомбинантов bС к числу рекомбинантов С. Поскольку в отличие от скрещивания между мейотическими организмами, реципрокные рекомбинанты в таком скрещивании не образуются, расстояния на генетической карте, определяемые таким образом, не аналогичны расстояниям, определяемым при скрещивании мейотических организмов.
|
8. Бактериальный геном 247
маркеры, содержащиеся в донорной ДНК, могут реплицироваться и сохраниться в потомстве, только если они попадают в репликон клеткиреципиента в результате рекомбинации. Как показано на рис. 8.14, для того, чтобы часть донорной ДНК встроилась в хромосому реципиента и при этом сохранилась кольцевая структура хромосомы, требуется два (или даже несколько) кроссинговеров.
Дата добавления: 2015-12-16 | Просмотры: 835 | Нарушение авторских прав
|