АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

F-фактор: генетический элемент, определяющий пол бактерий

F-фактор обладает поразительной способностью определять пол, казалось бы, бесполых бактерий. Его существование было обнаружено генетиками, когда они пытались определить, происходят ли скрещивания

232 Организация и передача генетического материала

Рис. 8.2. Использование множественно ауксотрофных штаммов для демонстрации скрещивания у Е. coll. В этом скрещивании met +, biо +, thr + и 1еи+ -селективные маркеры, a ton и lac - неселективные маркеры. [ WatsonJ.D. (1976). Molecular Biology of the Gene, 3rd éd., W. A. Benjamin, Menlo Park, Calif.] [Имеется перевод: Уотсон Дж. 1978. Молекулярная биология гена. М., Мир.]

между различными линиями Е. coli. Для этого исследовали возможность генетической рекомбинации между различными мутантными штаммами. Множественные ауксотрофы бактерий, полученные посредством нескольких последовательных этапов мутагенеза и селекции, смешивали и смесь высевали на минимальную среду. Появление колоний должно было свидетельствовать о возникновении рекомбинантов дикого типа, как это изображено на рис. 8.2.

Использование множественных ауксотрофов гарантирует, что колонии дикого типа, способные к росту на минимальной среде, возникают именно в результате рекомбинации, а не вследствие обратных мутаций. Если штамм, ауксотрофный по одной аминокислоте, ревертирует к дикому типу с частотой 1·10⁶, то появление колоний дикого типа на минимальной среде можно расценить и как результат реверсии, и как результат рекомбинации. Если же мутант ауксотрофен по двум аминокислотам, то частота реверсии к дикому типу должна составлять 10⁶ · 10⁶ = = 10¹². Однако, при использовании таких двойных ауксотрофов в эксперименте колонии дикого типа на минимальной среде образовы-

8. Бактериальный геном 233

Рис. 8.3. Электронная микрофотография клеток F + Е. coli (справа) и F ~ (слева). F-пили можно отличить от пилей другого типа, поскольку к ним прикреплены частицы фага, специфичного в отношении F + -штаммов. Известно несколько таких бактериофагов, наследственным веществом у них всех служит РНК. РНК фага вводится в клетку через пили (Prof. Charles С. Brinton, Jr. Judith Carnahan, University of Pittsburg).

вались с частотой примерно 1·10⁵, т.е. много чаще, чем этого можно было бы ожидать, основываясь на предположении об обратных мутациях. Эти эксперименты обнаружили существование у Е. coli двух половых типов, обозначенных символами F ⁺ и F ^–. Затем было установлено, что клетки типа F ⁺ содержат F-фактор, или эписому, тогда как в клетках F ~ -типа эта эписома отсутствует.

Дальнейшие исследования бактерий двух типов привели к поразительному и совершенно неожиданному открытию: оказалось, что Fфактор инфекционен. Когда обладавшие F-фактором и чувствительные к стрептомицину клетки (Str^S, F ⁺) смешивали со стрептомицинустойчивыми бактериями (Str^R, F ^–), и эту смесь высевали на агар, содержащий стрептомицин, то колонии образовывали, естественно, лишь Stг^R-клетки, т. е. клетки, несущие аллель sir^R. Большинство из этих колоний оказалось F ⁺ -, а не F ^– -типа. F-фактор содержит множество генов, сообщающих ему инфекционность. Некоторые из этих генов кодируют белки пилей, структур типа трубочек, расположенных на поверхности F ⁺ -клеток (рис. 8.3). F-пили соединяются с соответствующими рецепторами на поверхности F ~ -клеток, что приводит к образованию цитоплазма тического мостика между двумя клетками. В процессе роста F⁺клеток F-фактор реплицируется по тета-типу, так же как и бактериальная хромосома. Однако, когда между F ⁺ - и F ^– -клетками возникает цитоплазматический мостик, F-фактор переходит к реплика-

234 Организация и передача генетического материала

Рис. 8.4. Схематическое изображение механизма, с помощью которого ДНК F-фактора передается от F + -клетки F ~ -клетке в процессе репликации по типу катящегося кольца.

ции по сигма-типу (см. гл. 4). 5'-РО₄ одноцепочечный конец реплицирующегося F-фактора проникает в F ^– -клетку, и там синтезируется комплементарная цепь. Репликация ДНК F-фактора приводит к переносу копии F-фактора в F ^– -клетки, превращая их в F ⁺ -клетки (рис. 8.4).

Как уже упоминалось ранее, F-фактор представляет собой эписому, которая может либо существовать самостоятельно, либо встраиваться в репликон бактерии. В встроенном состоянии F-фактор может переносить бактериальную хромосому в F ^– -клетки. Частота возникновения рекомбинантов дикого типа для генов бактериальной хромосомы при скрещивании F ⁺ - и F ^– -штаммов очень низка (порядка одной клетки на 10⁵ родительских клеток), поскольку лишь небольшое число клеток F⁺культуры участвует в образовании рекомбинантов, хотя частота инфицирования F-фактором довольно высока. Однако, из F ⁺ -культуры можно выделить штаммы, при скрещивании которых с F ^– -клетками рекомбинанты образуются гораздо чаще (частота рекомбинации > 10^–2). Эти штаммы обозначаются символом Hfr (от англ, high frequency recombination -высокая частота рекомбинации). В них F-фактор в свободном, автономном состоянии отсутствует, он встроен в бактериальную хромосому. Когда клетки Hfr вступают в контакт с клетками F ^–, между ними образуется цитоплазматический мостик, называемый конъюгационной трубкой, и интегрированный F-фактор инициирует репликацию бактериальной хромосомы по типу катящегося кольца с того сайта, в который он встроен. Эта репликация приводит к переносу бактериальной хромосомы в F ^– -клетку (рис. 8.5).

Когда копия бактериальной хромосомы клетки Hfr попадает в клетку F ^–, становится возможной рекомбинация между генетическими маркерами, содержащимися в хромосоме клетки Hfr, и генами, содержащимися в хромосоме F^– -клетки (рис. 8.5). При конъюгации клеток Hfr и F^– часто происходит разрушение соединяющей их конъюгационной трубки и, соответственно, обрыв хромосомы Hfr. В результате в F^–клетку целая Hfr-хромосома попадает довольно редко.

После того, как конъюгация инициирована, возникновение рекомбинантов дикого типа определяется исключительно жизнеспособностью F ^–-родителя. К такому выводу можно прийти при анализе результатов реципрокных скрещиваний, выполняемых на минимальной среде, содержащей стрептомицин.

8. Бактериальный геном 235

Рис. 8.5. Мобилизация бактериальной хромосомы при включении F-фактора в клетке Hfr. При конъюгации репликация хромосомы начинается с встроенного F-фактора. Отрезок F-фактора входит 5'-концом в F – -клетку и увлекает за собой ДНК Hfr-клетки. Если конъюгацию прервать до того, как в клетку перейдет вся Hfr-xpoмосома, то клетка-реципиент сохоанит F– -тип.

Скрещивание 1: Hfr, Thr ⁺ Leu ⁺ Str^s x F ^–, Thr ^– Leu ^– Str^R

Результат: колонии образуют лишь рекомбинанты Thr⁺ Leu⁺ Str^R.

Скрещивание 2: Hfr, Thr^– Leu^– Str^Rx F^–, Thr⁺ Leu⁺ Str⁵.

Результат: колоний нет.

Первое скрещивание показывает, что применение стрептомицина устраняет колонии, которые в противном случае образовались бы из клеток родителя Hfr. Формировать колонии могут только рекомбинанты дикого типа, поскольку родители F ^– -типа не могут расти на минимальной среде в отсутствие треонина и лейцина. Второе скрещивание показывает, что для образования рекомбинантов необходима жиз-

236 Организация и передача генетического материала

неспособность родителя F ~, а не Hfr. Рекомбинантные колонии Str^R не образуются, поскольку ген sfr^R локализован слишком далеко от сайта, с которого начинается передача хромосомы и потому почти никогда не попадает в F ^– -клетку.

То, что поступление бактериальных генов из Hfr в F ^– -клетку происходит последовательно, всегда начиная с сайта интеграции F-фактора в бактериальную хромосому, дает возможность картировать гены по порядку их попадания в F ^– -клетку (подробнее мы обсудим это в следующем разделе). Как показано на рис. 8.5, проникновение хромосомы в F ^– -клетку всегда начинается с нуклеотидной последовательности интегрированного F-фактора. При этом в F ^– -клетку поступает не весь Fфактор. Для того чтобы в клетку попала оставшаяся его часть, необходимо, чтобы в F ^– перешла вся Hfr-хромосома. Это случается очень редко из-за спонтанных разрывов конъюгационной трубки, и поэтому большинство отбираемых рекомбинантов остаются принадлежащими F ^– -типу.

Дата добавления: 2015-12-16 | Просмотры: 914 | Нарушение авторских прав