|
АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология
|
Техника забора и транспортировки биологического материала для проведения микробиологического исследования
| Мате- риал
| Техника забора
| Примечание
| | Кровь
| Пробы крови забирают из кубитальной вены. Кожу в месте пункции предварительно обрабатывают йодом (или йод + спирт) в течение 1 минуты с помощью ватного тампона - следует использовать концентрические движения от места пункции к периферии. Непосредственно перед забором крови кожу обрабатывают 70% спиртом. При проведении венепункции используют стерильные перчатки, иглу и шприц. Путем венепункции получают как минимум 10 мл крови (у детей 2 мл). Кровь собирается в шприц и вводится затем во флаконы с питательной средой; соотношение объемов крови и среды должно быть не более 1:10. Резиновую крышку флакона перед проколом иглой обрабатывают спиртом. Пробы крови для анализа на анаэробную флору лучше собирать в вакуумные пробирки типа Vacutainer. Пробы крови следует немедленно доставить в микробиологическую лабораторию; при невозможности немедленной транспортировки следует избегать охлаждения проб - их следует инкубировать при температуре 37-С.
| 1. Следует избегать забора крови из катетеров. 2. Кровь для анализа забирается до назначения антибиотиков, в крайнем случае - непосредственно перед введнием очередной дозы препарата. 3. Для получения опти-мальных результатов следует забирать как минимум 3 пробы в течение 24 часов, а лучше 5-6 раз в течение 48 часов.
| | Поверхностные раны
| Первоначально следует удалить отделяемое раны в поверхностных слоях. Затем забирают материал из глубоких участков, а также из краев раны с помощью стерильного тампона, который помещают в транспортную среду, а при отсутствии последней - в стерильный контейнер, который маркируется. Гной следует аспирировать в шприц.
| Не доставлять тампоны с исследуемым материалом в лабораторию в открытом виде без контейнера. При подозрении на анаэробную инфекцию следует также произвести биопсию тканей; материал для анализа следует транспортировать в герметичных контейнерах.
| | Абсцессы
| После дезинфекции кожи (см. кровь) жидкость или гной аспирируют путем пункции полости абсцесса стерильной иглой. При немедленной транспортировке в лабораторию аспират может быть оставлен в шприце после тщательного удаления из него воздуха; иглу при этом следует снять, наконечник шприца закрыть стерильным колпачком. При отсроченной транспортировке материал для анализа помещают в герметичный контейнер.
| При отсроченной транспортировке следует избегать охлаждения полученного материала.
| При гнойно-хирургической инфекции типичным является выявление нейтрофильного типа экссудата. Гнойные экссудаты имеют нейтрофильный тип (в лейкограмме нейтрофилы составляют 90-95 %). Гнойный экссудат отличается от серозно-гнойного тем, что все нейтрофильные лейкоциты находятся в стадии цитолиза и деструкции. Гнойный экссудат имеет щелочное или нейтральное значение рН. Уровень белка превышает 3 %.
С целью оценки фаз раневого процесса применяют морфологический анализ раневых отпечатков.
Оценка стадий репаративной реакции в ране проводится по классификации М. Ф. Камаева (1971), где автор выделяет три типа:
· дегенеративно-некротический тип;
· дегенеративно-воспалительный тип;
· регенеративный тип
Дата добавления: 2015-10-19 | Просмотры: 633 | Нарушение авторских прав
|
