АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Лабораторная диагностика чумы

Чума является особо опасной инфекцией., поэтому выделение и

изучение возбудителей чумы проводят только * специальных проти­вочумных учреждениях - противочумных станциях, специальных ла­бораториях, научно-исследовательских институтах - при строгом соблюдении особого режима. С диагностической целью проводят бак-териоскопический, бактериологический, биологический и серологи­ческий методы исследования, а также экспресс-диагностику.

Исследуемые материалы. В зависимости от клинической фор­мы чумы от больного берут; пунктат из бубона, отделяемое кожной язвы, кровь, мокроту, мочу, испражнения. Подлежит исследованию секционный материал: лимфатические узлы, кровь, внутренние орга­ны. Исследуют также больных животных и их трупы, блох, пищевые продукты, воду, воздух и другие обьекты внешней среды. Материал берут, соблюдая особые правила предосторожности, работают в про­тивочумном костюме. Взятый материал помещают в банки с притер­той пробкой, которые укладывают в герметический контейнер и доставляют в лабораторию специальным транспортом.

Бактериоскопическое исследование. Из взятого материала го­товят мазки и фиксируют их в смеси Никифорова Мазки окрашивают по Граму и м'зтиленовым синим по Леффлеру (для выявления бипо­лярной окраски). При обнаружении в мазках грамотрицательных мел­ких бактерий овоидной формы, окрашенных биполярно, выдают предварительный положительный результат.

Можно применить прямую РИФ, обработав мазки противочум­ной люминесцирующей сывороткой (экспресс-метод).

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал за­севают несоответствующие питательные среды: кровь (5-10 мл) в кол­бу с бульоном Хоттингера или МПБ, объемом 100 мл, остальные материалы на чашки с агаром Хоттингера. Для стимуляции роста в питательный агар добавляют кровь кролика или лошади - цельную (0,1-0,2%) или гемолизированную (1-2%) и сульфит натрия, который кроме стимулирующего эффекта, подавляет рост посторонней микро­флоры. В качестве ингибитора посторонних бактерий добавляют так­же и генцианвиолет (в концентрации 1:50000). Посевы выдерживают в термостате при 25-28°С. Уже через 10-12 часов на чашках Петри появляются микроколонии., напоминающие осколки битого стекла; к 24 часам из них формируются R-колонии в виде «кружевных платоч:-ков» с возвышенным бугристым центром; после 48 часов колонии гру­беют, центральная часть колонии приобретает коричневый цвет.

В бульоне образуется рыхлая пленка, от которой опускаются нити, на дне накапливается осадок.

Выделенную чистую культуру идентифицируют по морфологичес­ким, культуральным, биохимическим и серологическим свойствам., по чувствительности к чумному бактериофагу и патогенности для живот­ных. Проводя идентификацию, следует в первую очередь дифференци­ровать возбудителя - Ypestis -01- Yersinia pseudotuberculosis. Ypestis биохимически активна, ферментирует с образозанием кислоты ряд углеводов, восстанавливает нитраты в нитриты, не раз­жижает желатину, не образует индол.

Серологическую идентификацию проводят диагностическими сыворотками. Наиболее специфична РИГА (РОНГА) с эритроцитар» ным антительньш диагностикумом, нагруженным моноклональными антикапсул ьными (F_t) антителами. Биологическое исследование проводят одновременно с други­ми методами. Исследуемым материалом заражают морских свинок или мышей внутрибрюшинно, подкожно или накожно в выбритый и ска­рифицированный участок кожи морских свинок - («австрийский ме­тод»). Этот метод применяют, если материал загрязнен посторонней микрофлорой.

Морские свинки погибают через 3-4 дня при внутри брюшинном заражении и через 5-7 дней - при накожном. Из крови и внутренних органов делают мазки-отпечатки для микроскопического исследова­ния и выделяют чистую культуру, которую идентифицируют. При вскрытии учитывают патологические изменения: воспаление лимфа­тических узлов, геморрагически-некротические очаги в селезенке и других органах, экссудаты в полостя?:. В мазках-отпечатках из орга­нов выявляют большое количество грамотрицательных биполярно окрашенных палочек.

Серологический метод. Для обнаружения антигенов использу­ют РИФ, РНАТ, ИФА и РП.

Антителе в сыворотке крови выявляют в реакциях РИГА и ИФА для установления ретроспективного диагноза, а также при обследова­нии грызунов в природных очагах чумы.

Важное значение имеет экспресс-диагностика чумы, позволяю­щая в более ранние сроки начать лечение больных и проводить мероп­риятия по борьбе с этой особо опасной инфекцией. К ускоренным методам диагностики относят РИФ, ИФА, фагодиагностику и метод быстрого роста Y.pestis на обогащенных и элективных средах.

Специфическая профилактика и лечение чумы

Специфическая профилактика осуществляется по эпидемиоло­гическим показаниям - эпизоотия чумы среди грызунов, выявление больных чумой домашних животных, возможность завоза инфекции больным человеком, а также выборочно особо угрожаемым контин-гентам - сотрудникам противочумных учреждений и лицам, имеющим постоянную или временную связь с территориями, где наблюдаются эпизоотии (животноводы, агрономы, охотники, заготовители, архео­логи, геологи и т.д.).

Применяется чумная живая вакцина, представляющая собой жи­вые бактерии вакцинного штамма чумного микроба EV линии НИИ-ЭГ, лиофильно высушенные. Вакцинацию проводят однократно внутрикожньш, подкожным, накожным или ингаляционным способа­ми. Ревакцинацию проводят через один год, а при неблагоприятной эпидемиологической обстановке - через 6 месяцев

Лечение. Больные чумой подлежат строгой изоляции и обязатель­ной госпитализации. Этиотропное лечение зависит от формы заболевания. Препарата­ми выбора являются антибиотики левомицетин, стрептомицин, тетра­циклин, аминогликозиды и другие.

Bacillus anthracis - возбудитель сибирской язвы

Сибирская язва - острая зоонозная инфекция, протекающая с тяжелой интоксикацией, серозно-геморрагическим воспалением кожи и лимфоузлов, вовлечением внутренних органов, развитием сепсиса. Преобладает кожная форма сибирской язвы, значительно реже встре­чаются легочная и кишечная формы.

Возбудитель - B.anthracis - относится к семейству ВасШасеае, роду Bacillus. Это крупные неподвижные грамположительные папочки размерами 6-10x1-2мкм, располагающиеся цепочками В организме об­разуют полипептидные капсулы, во внешней среде - центрально распо­ложенные споры, не превышающие диаметра вегетативной клетки.

В.anthracis хорошо растет на обычных питательных средах - МПБ, МПА и других в аэробных условиях. На жидкой среде наблюдается при­донный рост в виде «клочка ваты», среда остается прозрачной. На чаш­ках с МПА через сутки образуются R-колонии 3-5 мм в диаметре, плоские, серебристо-серого цвега с зернистой поверхностью и бахромчатыми кра­ями, состоящие из переплетенных цепочек бактерий (колонии сравнива­ют с «львиной гривой» или «головой медузы»), Сибиреязвенные палочки обладают выраженной биохимической активностью,

Антигены. В. anthracis км&т грушоспецифичестй полисахарг1?>-ныи термоетабильный антиген, связанный с клеточной стенкой и ви-доспецифическгш капсулъный термопабияьный антиген. Антигенной активностью обладает также протективный антиген и образуемый при его участии летальный и отечный токсины.

Вегетативные формы В.anthracis не обладают значительной рези-стентностью во внешней среде, споры возбудителя сибирской язвы, наоборот, исключительно устойчивы. В воде споры В.anthracis выжи­вают около 10 лет; в почве ~ многие десятилетия; при кипячении -сохраняют жизнеспособность от 10 минут до 1 часа, под действием дезинфицирующих - веществ гибнут через 1-2 часа и позже. Выделка кожи и меха, обработка шерсти, сушка и засолка мяса не уничтожают сибиреязвенных спор.

Дата добавления: 2014-12-11 | Просмотры: 1763 | Нарушение авторских прав