Лабораторная диагностика чумы
Чума является особо опасной инфекцией., поэтому выделение и
изучение возбудителей чумы проводят только * специальных противочумных учреждениях - противочумных станциях, специальных лабораториях, научно-исследовательских институтах - при строгом соблюдении особого режима. С диагностической целью проводят бак-териоскопический, бактериологический, биологический и серологический методы исследования, а также экспресс-диагностику.
Исследуемые материалы. В зависимости от клинической формы чумы от больного берут; пунктат из бубона, отделяемое кожной язвы, кровь, мокроту, мочу, испражнения. Подлежит исследованию секционный материал: лимфатические узлы, кровь, внутренние органы. Исследуют также больных животных и их трупы, блох, пищевые продукты, воду, воздух и другие обьекты внешней среды. Материал берут, соблюдая особые правила предосторожности, работают в противочумном костюме. Взятый материал помещают в банки с притертой пробкой, которые укладывают в герметический контейнер и доставляют в лабораторию специальным транспортом.
Бактериоскопическое исследование. Из взятого материала готовят мазки и фиксируют их в смеси Никифорова Мазки окрашивают по Граму и м'зтиленовым синим по Леффлеру (для выявления биполярной окраски). При обнаружении в мазках грамотрицательных мелких бактерий овоидной формы, окрашенных биполярно, выдают предварительный положительный результат.
Можно применить прямую РИФ, обработав мазки противочумной люминесцирующей сывороткой (экспресс-метод).
Бактериологическое исследование. Исследуемый материал засевают несоответствующие питательные среды: кровь (5-10 мл) в колбу с бульоном Хоттингера или МПБ, объемом 100 мл, остальные материалы на чашки с агаром Хоттингера. Для стимуляции роста в питательный агар добавляют кровь кролика или лошади - цельную (0,1-0,2%) или гемолизированную (1-2%) и сульфит натрия, который кроме стимулирующего эффекта, подавляет рост посторонней микрофлоры. В качестве ингибитора посторонних бактерий добавляют также и генцианвиолет (в концентрации 1:50000). Посевы выдерживают в термостате при 25-28°С. Уже через 10-12 часов на чашках Петри появляются микроколонии., напоминающие осколки битого стекла; к 24 часам из них формируются R-колонии в виде «кружевных платоч:-ков» с возвышенным бугристым центром; после 48 часов колонии грубеют, центральная часть колонии приобретает коричневый цвет.
В бульоне образуется рыхлая пленка, от которой опускаются нити, на дне накапливается осадок.
Выделенную чистую культуру идентифицируют по морфологическим, культуральным, биохимическим и серологическим свойствам., по чувствительности к чумному бактериофагу и патогенности для животных. Проводя идентификацию, следует в первую очередь дифференцировать возбудителя - Ypestis -01- Yersinia pseudotuberculosis. Ypestis биохимически активна, ферментирует с образозанием кислоты ряд углеводов, восстанавливает нитраты в нитриты, не разжижает желатину, не образует индол.
Серологическую идентификацию проводят диагностическими сыворотками. Наиболее специфична РИГА (РОНГА) с эритроцитар» ным антительньш диагностикумом, нагруженным моноклональными антикапсул ьными (Ft) антителами. Биологическое исследование проводят одновременно с другими методами. Исследуемым материалом заражают морских свинок или мышей внутрибрюшинно, подкожно или накожно в выбритый и скарифицированный участок кожи морских свинок - («австрийский метод»). Этот метод применяют, если материал загрязнен посторонней микрофлорой.
Морские свинки погибают через 3-4 дня при внутри брюшинном заражении и через 5-7 дней - при накожном. Из крови и внутренних органов делают мазки-отпечатки для микроскопического исследования и выделяют чистую культуру, которую идентифицируют. При вскрытии учитывают патологические изменения: воспаление лимфатических узлов, геморрагически-некротические очаги в селезенке и других органах, экссудаты в полостя?:. В мазках-отпечатках из органов выявляют большое количество грамотрицательных биполярно окрашенных палочек.
Серологический метод. Для обнаружения антигенов используют РИФ, РНАТ, ИФА и РП.
Антителе в сыворотке крови выявляют в реакциях РИГА и ИФА для установления ретроспективного диагноза, а также при обследовании грызунов в природных очагах чумы.
Важное значение имеет экспресс-диагностика чумы, позволяющая в более ранние сроки начать лечение больных и проводить мероприятия по борьбе с этой особо опасной инфекцией. К ускоренным методам диагностики относят РИФ, ИФА, фагодиагностику и метод быстрого роста Y.pestis на обогащенных и элективных средах.
Специфическая профилактика и лечение чумы
Специфическая профилактика осуществляется по эпидемиологическим показаниям - эпизоотия чумы среди грызунов, выявление больных чумой домашних животных, возможность завоза инфекции больным человеком, а также выборочно особо угрожаемым контин-гентам - сотрудникам противочумных учреждений и лицам, имеющим постоянную или временную связь с территориями, где наблюдаются эпизоотии (животноводы, агрономы, охотники, заготовители, археологи, геологи и т.д.).
Применяется чумная живая вакцина, представляющая собой живые бактерии вакцинного штамма чумного микроба EV линии НИИ-ЭГ, лиофильно высушенные. Вакцинацию проводят однократно внутрикожньш, подкожным, накожным или ингаляционным способами. Ревакцинацию проводят через один год, а при неблагоприятной эпидемиологической обстановке - через 6 месяцев
Лечение. Больные чумой подлежат строгой изоляции и обязательной госпитализации. Этиотропное лечение зависит от формы заболевания. Препаратами выбора являются антибиотики левомицетин, стрептомицин, тетрациклин, аминогликозиды и другие.
Bacillus anthracis - возбудитель сибирской язвы
Сибирская язва - острая зоонозная инфекция, протекающая с тяжелой интоксикацией, серозно-геморрагическим воспалением кожи и лимфоузлов, вовлечением внутренних органов, развитием сепсиса. Преобладает кожная форма сибирской язвы, значительно реже встречаются легочная и кишечная формы.
Возбудитель - B.anthracis - относится к семейству ВасШасеае, роду Bacillus. Это крупные неподвижные грамположительные папочки размерами 6-10x1-2мкм, располагающиеся цепочками В организме образуют полипептидные капсулы, во внешней среде - центрально расположенные споры, не превышающие диаметра вегетативной клетки.
В.anthracis хорошо растет на обычных питательных средах - МПБ, МПА и других в аэробных условиях. На жидкой среде наблюдается придонный рост в виде «клочка ваты», среда остается прозрачной. На чашках с МПА через сутки образуются R-колонии 3-5 мм в диаметре, плоские, серебристо-серого цвега с зернистой поверхностью и бахромчатыми краями, состоящие из переплетенных цепочек бактерий (колонии сравнивают с «львиной гривой» или «головой медузы»), Сибиреязвенные палочки обладают выраженной биохимической активностью,
Антигены. В. anthracis км&т грушоспецифичестй полисахарг1?>-ныи термоетабильный антиген, связанный с клеточной стенкой и ви-доспецифическгш капсулъный термопабияьный антиген. Антигенной активностью обладает также протективный антиген и образуемый при его участии летальный и отечный токсины.
Вегетативные формы В.anthracis не обладают значительной рези-стентностью во внешней среде, споры возбудителя сибирской язвы, наоборот, исключительно устойчивы. В воде споры В.anthracis выживают около 10 лет; в почве ~ многие десятилетия; при кипячении -сохраняют жизнеспособность от 10 минут до 1 часа, под действием дезинфицирующих - веществ гибнут через 1-2 часа и позже. Выделка кожи и меха, обработка шерсти, сушка и засолка мяса не уничтожают сибиреязвенных спор.
Дата добавления: 2014-12-11 | Просмотры: 1751 | Нарушение авторских прав
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 | 22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 | 29 |
|