АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Правила работы с паровыми стерилизаторами следующие

1. Перед началом стерилизации проверить исправность манометров, упру-гость резиновой прокладки, герметичность крепления крышки стерилизацион-ной камеры.

2. Наполнить котелок водой через воронку до уровня отметки на кожухе водомерной трубки и закрыть верхний кран водоуказательной колонки.

3. Загрузить материалы в стерилизационную камеру и плотно закрыть крыш-ку стерилизатора.

4. Закрыть спускной кран и выключить нагревательную систему.

5. После достижения давления пара в котле 2,0±0,2 кгс/см открыть спускной кран, а затем вентиль патрубка, соединяющего котелок со стерилизационной камерой. Появление из крана непрерывной струи пара следует считать началом продувки (вытеснение воздуха из стерилизационной камеры), которая должна продолжаться не менее 30 мин.

6. Закрыть спускной кран и довести давление в стерилизационной камере до нужного уровня, учитывая соотношение показания манометра и температуры кипения воды (табл. 1).

7. Окончив стерилизацию, выключить электрический подогрев и закрыть кран на патрубке.

8. Открыть спускной кран и постепенно выпустить пар из стерилизационной камеры в сосуд с водой.

9. После снижения давления в стерилизационной камере до 0 ⁰С открыть крышку стерилизатора и приступить к его разгрузке; при открытии крышки ранее указанного срока стерилизуемая жидкость вскипает и может вытолкнуть пробки из сосудов вследствие быстрого падения давления. Режимы стерилизации представлены в таблице 1.

Таблица 1

Соотношение показаний манометра и температуры

кипения воды

Основные используемые режимы стерилизации следующие: 15 – 30 мин. при избыточном давлении 0,5 атм (стерилизуют питательные среды с углеводами); 15-45 мин при избыточном давлении 1,0 атм (стерилизуют питательные среды без углеводов, воду, растворы, фильтры, посуду); 10 – 30 мин при избыточном давлении 1,5 атм (обеззараживают условно-патогенный материал).

Контроль режима стерилизации осуществляется с помощью химических тер-мотестов и искусственных биотестов.

Химические термотесты представляют собой вещества, изменяющие свой цвет или физическое состояние при стерилизации, в частности вещества, имеющие различную температуру плавления (табл. 2).

Таблица 2

Показатели температуры плавления порошков-индикаторов

На 100 г порошка индикатора прибавляют 0,01г сафранина, 0,005 г фуксина или метиленового синего.

Запаянные ампулы с порошком, смешанным с краской, помещают в стери-лизационную камеру. При достижении в камере определенной температуры порошок плавится, образуя сплав, окрашенный в цвет добавленной краски.

Бактериологический контроль режима стерилизации заключается в том, что в стерилизационную камеру помещают искусственные биотесты – пробирки с полосками марли, фильтрованной бумаги или шелковинками, зараженными микроорганизмами с известной устойчивостью к температурным воздействиям. На чашки с питательным агаром засевают 3-4 различных штамма споровых па-лочек из группы Bacillus mesentericus, выдерживающих кипячение в течение 2 ч. Посевы ставят в термостат на 48 ч., после чего их выдерживают при комнатной температуре в течение 5 суток. Затем культуры смывают с поверхности агара водой с помощью шпателя, сливают в колбочку со стерильными бусами и энер-гично встряхивают в течение 2-3 мин. Полученную взвесь микробов фильтруют через рыхлый ватный фильтр для удаления крупных частиц и разводят по стан-дарту до концентрации 2 млрд микробных клеток в 1 мл.

Кусочки марли или бельевой ветоши площадью около 1 см² пропитывают микробной взвесью и раскладывают на дно пробирок, закрытых ватно-марле-выми пробками. Пробирки необходимо на несколько часов поставить в умерен-но теплое место (термостат, батарея центрального отопления) для того, чтобы биотесты проросли. После этого их можно хранить в лаборатории в течение года.

Зарубежные фирмы поставляют биотесты, представляющие собой полоски с нанесенными на них спорами одного или двух видов бактерий, со спорами из-вестной численности, со спорами и определенным количеством культуральной среды, суспензиями спор и т. д.

Биотесты закладывают в центральную часть каждого бикса или мешка, содер-жащих белье, перевязочный и другой материал, подлежащий стерилизации. После вскрытия бикса или мешка (во время работы) биотесты направляют в лабораторию.

В лаборатории в пробирку с биотестом заливают 5-10 мл сахарного бульона и посевы инкубируют в течение 48 ч. при 37 ⁰С.

При наличии визуального роста готовят мазки или высевы на мясо-пептонный агар для идентификации культуры.

Стерилизация текучим паром (дробная стерилизация) — это обеспложива-ние объектов, разрушающихся при температуре выше 100 ⁰С (питательные срды с аммиачными солями, молоко, желатин, крахмал некоторые углеводы). Обеспложивание проводят в паровом стерилизаторе при открытом спускном кране и незавинченной крышке или в аппарате Коха по 15-30 мин. в течение 3 дней подряд. При первой стерилизации погибают вегетативные формы микро-бов, некоторые споры при этом сохраняются и прорастают в вегетативные осо-би в процессе хранения питательных сред при комнатной температуре. После-дующая стерилизация обеспечивает достаточно надежное обеспложивание объекта.

Тиндализация — это стерилизация вещест, легко разрушающихся при вы-сокой температуре (витамины, аминокислоты); стерильность достигается пов-торным прогреванием объекта при температуре 60 ⁰С по 1 часу ежедневно в течение 5-6 дней подряд.

Пастеризация — это обеспложивание многих пищевых продуктов (вино, пиво, соки), при этом достигается только частичная стерильность; споры микро-организмов не уничтожаются. Обеспложивание проводят при 65-80 ⁰С в течение 10-60 мин, затем резко охлаждают. Последующее хранение при низкой температуре (4-5 ⁰С) препятствует прорастанию спор и размножению оставшихся в продукте микроорганизмов.

Стерилизация ультрафиолетовыми лучами применяется для обеспложи-вания воздуха в микробиологических лабораториях, кондитерских цехах.

Ультрафиолетовые лучи (250 – 270 нм) используются для стерилизации центрифужных пробирок, наконечников для пипеток, материалов из термолабильной пластмассы. Время облучения определяется мощностью лампы, временем воздействия, степенью и видовым составом микроорганизмов загрязненного материала. Вегетативные формы более чувствительны к облучению, чем споры, которые в 3 – 10 раз более устойчивы. Ограничением при использовании данного метода стерилизации является низкая проникающая способность УФ-лучей и высокая поглощающая способность воды и стекла.

Рентгеновское и g-облучение также эффективно для стерилизации пластмасс, пищевых продуктов, но требует строгого соблюдения правил безопасности. Наиболее чувствительны к g-облучению вегетативные клетки бактерий, затем идут плесневые грибы, дрожжи, бактериальные споры и вирусы. В большинстве случаев для надежного уничтожения микроорганизмов достаточно дозы облучения 2,5 Мрад. g-обучение используется для стерилизации антибиотиков, витаминов, гормонов, стероидов.

Радиационный метод применяют обычно на специальных установках при промышленной стерилизации изделий однократного применения.

Дата добавления: 2015-09-03 | Просмотры: 893 | Нарушение авторских прав