Определение патогенности.
Патогенность микроорганизма, выделенного при исследовании патологического материала, определяют с помощью биологической пробы (биопробы), т. е. заражением лабораторных животных: белых мышей и крыс, морских свинок, кроликов, голубей, кошек, а также собак (чаще щенков), кур, мелкого и крупного рогатого скота (телят), обезьян, лошадей и др. Выбор вида животного для биопробы основывается на его восприимчивости к исследуемому объекту. Для биопробы берут не только выделенную микробную культуру, но и непосредственно патологический материал, из которого для этой цели готовят взвесь растертой в стерильной ступке ткани органов, гной, слизь, разбавленные физиологическим раствором. Биологическая проба необходима также при установлении безвредности биологических препаратов (вакцин, сывороток).
Помещение для содержания лабораторных животных (виварий) должно иметь несколько отделений: карантинное, клиническое для выполнения определенных работ (взятие крови, заражение, вскрытие и др.), кладовую, кухню и др. Перед заражением животных метят: кроликов и морских свинок — металлическими сережками с номерами, белых мышей и крыс — раствором краски (фуксина, метиленовой сини и др.) (рис. 39).
Для удобства и безопасности работы животных фиксируют (рис. 40 и 41). Морских свинок помощник держит брюшком вверх так, чтобы средний палец левой руки находился на шее, а большой и 'указательный — под передними конечностями, правой рукой при
Рис 39. ключ к мечению зараженных животных
держивают задние конечности. Мышь берут одной рукой за кончик хвоста, другой — за кожную складку затылка, ближе к ушам, и повертывают в удобное для манипуляции положение.
Крыс фиксируют корнцан гами, захватив складку
Рис. 40. Фиксация и заражение мышей
| Рис. 41. Фиксация и заражение морских свинок
|
кожи затылка, плотно прижимают голову к поверхности стола, другой рукой держат за хвост и поворачивают в удобное положение, оттягивая корнцангом голову.
Животных заражают следующими методами: накожным (скарификация), внутрикожным, подкожным, внутримышечным, внутривенным, внутрибрюшинным, оральным, интраназальным, интрацеребральным и в переднюю камеру глаза. Используемые при этом инструменты (шприцы, иглы и др.) должны быть стерильными.
При скарификации скальпелем делают небольшой надрез кожи — насечку и в нее апплицируют исследуемый материал или бактериальную культуру. Испытуемый материал можно также втирать жесткой щеточкой. Место заражения выстригают и дезинфицируют.
При внутрикожном способе пальцами левой руки оттягивают кожу и в образующуюся между ними кожную складку вводят кончик иглы. Вводимая доза материала не должна превышать 0,2 мл. Показатель правильного введения — небольшая припухлость величиной с горошину.
При подкожном инфицировании пальцами левой руки оттягивают кожу; у кроликов — со стороны спины несколько сбоку, у белых мышей и крыс — со спины ближе к основанию хвоста. В образовавшийся «кармашек»-складку вводят иглу шприца, затем его содержимое. Объем вводимого вещества не должен превышать для мышей 1 мл, для крыс, морских свинок— 10 мл, кроликов — 20...25 мл.
При внутримышечном заражении инъецируемый материал чаше вводят с внутренней поверхности бедра. Голубей и
кур можно заражать также и в грудную мышцу. Доза введения мышам составляет 0,5 мл, морским свинкам и крысам — 3...5 мл, кроликам — 5...8 мл. Большой объем лучше вводить дробно в 2...3 места.
При внутрибрюши ином заражении животное фиксируют головой вниз, иглу шприца вводят в нижнюю треть живота, чуть отступя от белой линии.
Внутривенно исследуемый материал кроликам вводят в краевую вену уха, мышам и крысам — в вену хвоста. Перед заражением место инъекции протирают тампоном, смоченным ксилолом или теплой водой, чтобы вызвать наполнение сосудов кровью.
При интрацеребральном заражении животных фиксируют в спинном положении. У кроликов для этой цели трепанируют череп в участке между надбровным углом и черепным гребнем. Поле операции выстригают, дезинфицируют, пальцами левой руки растягивают кожу над глазницей параллельно черепному гребню и рассекают ее (раздвигают ее края), крестообразно разрезают надкостницу, маленьким трепаном прокалывают черепную кость и извлекают небольшой кусочек ее; из шприца вводят 0,2 мл исследуемого материала. После этого соединяют края надкостницы, края кожной раны заливают коллодием.
У мышей и крыс трепанацию не делают, а легким проколом костной ткани вводят кончик иглы и инъецируют материал.
Интраназально заражение осуществляют капельным способом, используя глазную пипетку. Предварительно животное слегка наркотизируют — к носу прикладывают вату, смоченную эфиром.
При оральном заражении исследуемый материал добавляют в корм, воду или вводят через небольшой зонд.
В случае гибели зараженного животного труп вскрывают, соблюдая правила асептики, и производят бактериологическое исследование.
Для вскрытия труп фиксируют в спинном положении (брюшком вверх) на деревянной доске или лотке с застывшим парафином; конечности растягивают и закрепляют мелкими гвоздиками. Кожно-шерстный покров дезинфицируют 5%-м раствором фенола или лизола. Разрезают кожу вдоль белой линии от промежности до грудино-ключичного сочленения, а затем делают поперечные надрезы (рис. 42). Отпрепарированные кожные лоскуты отводят в сторону. Так же надрезают брюшину, вскрывают брюшную полость, подрезают ребра, диафрагму, вскрывают грудную полость. При вскрытии обращают внимание на патологоанатомическую картину.
После этого прижигают поверхность сердца, печени, почки и других органов, пипеткой прокалывают нужный участок, насасывают небольшое количество крови и высевают ее на питательные среды, соблюдая стерильность. Если в органах имеются очаги поражения, то из них пастеровской пипеткой также производят посев на питательные среды. Наряду с посевами готовят и препараты-отпечатки из тканей органов: отрезают кусочек печени, селезенки, почки, лимфатических узлов и к поверхности разреза прикладывают предметное стекло; препарат высушивают, фиксируют, окрашивают и микроскоп ируют.
После окончания работы трупы утилизируют: помещают в металлические бачки, заливают хлорноизвестковым молоком или 5...10%-м раствором хлорной взвеси, затем сжигают.
Вирулентность (токсигенность) микроба измеряют в специальных условных единицах: абсолютная летальная доза {Del — dosis certae letalis) вызывает гибель 100 % зараженных животных; 50%-я летальная доза (LD50) — 50 % зараженных животных; 50%-я инфицирующая доза (Ш50) вызывает заболевание у 50 % зараженных животных. LD5q и Ш5о — наиболее точные показатели, поскольку отражают чувствительность к возбудителю (токсину) большинства взятых в опыт животных, a Del показывает чувствительность наиболее устойчивых особей.
Для расчета LD50 исследуемой культуры микроорганизма используют один из приведенных методов. Готовят суспензию бактерий с известным содержанием микробных клеток в единице объема. Затем делают последовательные (2, 5, 10-кратные) разведения суспензии на стерильном физиологическом растворе и равные объемы каждого разведения вводят (подкожно, внутрибрюшинно и т. д.) чувствительным лабораторным животным. Если определяют летальный эффект, то учитывают число погибших животных и рассчитывают LD5o ■ Поскольку обычно ни одна из доз возбудителя не приводит к гибели строго 50 % зараженных животных, то LD5o определяют статистическими методами.
Тест на плазмокоагулазу. Коагулаза — фермент бактерий (стафилококков), который в сочетании с некоторыми компонентами сыворотки коагулирует плазму. Благодаря коагула-зе вокруг стафилококковых поражений образуется фибринозный барьер, облегчающий персистенцию бактерий в тканях, кроме того, отложения фибрина на поверхности бактериальных клеток затрудняют их фагоцитоз.
Бактериальную массу исследуемой культуры, снятой петлей с поверхности агаровой среды, смешивают с 0,5 мл плазмы крови кролика (человека), не разведенной или разведенной стерильным физиологическим раствором в соотношении 1: 4, инкубируют при 37 °С; результаты учитывают через 4 и 24 ч. Положительная реакция — образование сгустка.
Тест на гиалуронидазу. Гиалуронидаза — фермент, расщепляющий гиалуроновую кислоту и, как следствие, деполиме-ризуюший межклеточное вещество. Рассматривают как фактор инва-зивности бактерий. Получение гиалуронового субстрата (из пупочных канатиков)—довольно сложная процедура. На практике удобнее использовать тест декапсуляции бактерий. В качестве субстрата в этом случае берут культуры бактерий, в капсульном веществе которых есть гиалуроновая кислота (P. multocida серовар A, S. equi).
На поверхность агара в чашке Петри дробно засевают культуру P. multocida или S. equi. Затем в виде линии высевают на поверхность среды культуру микроорганизма, у которого выявляют способность к синтезу гиалуронидазы. Чашки с посевами инкубируют 16...24ч при 37 °С. Если исследуемый микроорганизм выделяет гиалуронидазу, то она диффундирует в толщу питательной среды и разрушает капсулу тест-микроба. При анализе посевов в косо-проходящем пучке света колонии S. equi (P. multocida) вблизи «штриха» исследуемой культуры мелкие, серого или голубого цвета в отличие от флуоресцирующих отдаленных колоний.
Тест на гемолизин. Бактериальные гемолизины — обширная группа веществ-мембранотоксинов, которые вызывают нарушение целостности мембраны эритроцитов и их лизис.
Исследуемую культуру уколом или дробно засевают в чашки Петри с 5%-м кровяным агаром; посевы инкубируют 24 ч при 37 "С. Гемолизин, выделяемый растущей культурой бактерий, диффундирует в толщу агара и вызывает лизис эритроцитов, что проявляется в виде светлой (бета-гемолиз) или полупрозрачной (альфа-гемолиз) зоны вокруг колоний. Гемолитическую активность микроорганизма можно также определять при посеве в 1...5%-й кровяной бульон, который после культивирования выделяющего гемолизин микроба становится прозрачным за счет лизиса эритроцитов.
Тест на фибринолизин (стрептокиназу). Многие гемолитические стрептококки образуют стрептокиназу, которая активирует протеолитический фермент плазмы (плазминоген — плазмин), этот фермент —фибринолизин растворяет коагулированную плазму.
Исследуемую культуру микроорганизма засевают в виде «бляшки» на агар с 12% цитрированной плазмы. Посевы инкубируют 23...24ч при 37 °С. Положительный результат —появление зоны просветления вокруг колонии.
Тест на лецитиназу. Лецитиназа расщепляет при гидролизе лецитин. Состав желточного агара: пептон — 20 г, гидрофосфат натрия —2,5г, натрий—1 г, 0,5%-й раствор сульфата магния —0,1 мл, глюкоза— 1 г, агар— 12,5 г, вода дистиллированная — 500 мл. Устанавливают рН 7,2...7,4, стерилизуют 15 мин при 121 °С, охлаждают до 55 X, добавляют один стерильный желток на 500 мл среды, компоненты перемешивают и смесь разливают в чашки Петри.
Исследуемую культуру засевают дробно; культивируют 24...48 ч при 37...38 "С. Положительный результат —появление зоны помутнения вокруг колоний.
Тест на ДНК-азу. Исследуемую культуру бактерий засевают «штрихом» на питательный агар с ДНК и культивируют 24 ч при 37 "С. Затем на поверхность среды с бактериальной культурой наливают 1н. раствор соляной кислоты. Положительный результат — при гидролизе ДНК светлая зона вдоль «штриха» культуры.
Питательная среда с ДНК: в расплавленный МПА добавляют 10%-й раствор ДНК до конечной 0,2%-й концентрации, перемешивают компоненты, автоклавируют 15 мин при i 20 "С и разливают в чашки Петри.
Тесты на другие ферменты. Как факторы пато-генности можно рассматривать ферменты, катализирующие реакции с образованием токсических продуктов, например: уреаза гидролизует мочевину с образованием аммиака; декар-
боксилаза декарбоксилирует аминокислоты с образованием аминов и др.
Тест на адгезии ы. В адгезии бактерий принимают участие различные компоненты оболочки. Это свойство выявляют по способности исследуемого микроорганизма сорбироваться на различных эукариотических клетках (эритроциты, энтероциты) или других частицах (латекс). Еще один метод обнаружения адге-зинов связан с их использованием в качестве антигенов в серологических реакциях.
У эшерихий адгезивные свойства часто определяют по их способности агглютинировать эритроциты. В лунки планшетов вносят по 50 мкл 4%-й суспензии отмытых эритроцитов морской свинки, 1%-й раствор О-маннозы, суспензию исследуемых бактерий с концентрацией клеток 109/мл. Параллельно ставят реакцию в отсутствие маннозы. Результат учитывают через 30...60 мин. Положительная реакция— склеивание и оседание эритроцитов в виде «зонтика». Торможение агглютинации маннозой обозначают как маннозочувствительную ГА (гемагглютинация), отсутствие ингибирования — как маннозорезистентную ГА.
Дата добавления: 2015-09-27 | Просмотры: 1097 | Нарушение авторских прав
|