АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология

Диагностика эймериозов и изоспорозов

Для выявления наличия ооцист эймерий и изоспор из фекалий, содержимого кишечника и другого материала исполь­зуется несколько методов.

Метод нативного мазка наиболее простой и легко выпол­нимый в любых условиях, не требующий специальной аппара­туры и реактивов для обнаружения ооцист.

На чистое предметное стекло пипеткой наносят 2-4 кап­ли чистой воды (дистиллированной, водопроводной), к ним добавляют небольшое количество фекалий и перемешивают. Мазок накрывают покровным стеклом и исследуют под малым (х 8,10) и средним (х 40) объективом. Вместо фекалий можно исследовать таким же образом соскобы оболочек кишечника.

При небольшой степени заражения ооцист выявить таким методом трудно, однако при высоком заражении он дает возможность сравнительно достоверно определить интенсив­ность инвазии.

Более точные результаты получают при использовании различных растворов, имеющих большой удельный вес. В та­ких растворах ооцисты через некоторое время всплывают на поверхность.

Наиболее распространенными флотационными методами являются следующие: методы Фюллеборна, Дарлинга, Щербовича, Котельникова и Хренова и др. (см. Гельминтоовоскопия).

Исследование эймериид в пораженных органах. Для ис­следования на наличие эймериид у животных отбирают ку­сочки тонкого и толстого кишечника, у кроликов, кроме того, печень, у гусей также почки. Материал помещают в фиксиру­ющую жидкость – 10%-ный раствор формалина или 96%-ный этиловый спирт. Лучше всего использовать нейтральный формалин, для приготовления которого используют порошок углекислого кальция (мел), 10% его добавляют к объему фор­малина и дают отстояться 5-6 дней, затем хранят с осадком.

Фиксацию материала лучше производить в стекляннойпосу­де. В зимнее время в качестве фиксирующей жидкости лучше использовать этиловый спирт. Ее, независимо от времени года, рекомендуется через сутки заменять. Если в одну банку поме­щают кусочки органов от разных животных, их рекомендует­ся завернуть в марлевые мешочки. Внутрь банки с фиксиру­ющим материалом помещают бумажную этикетку, на которой графитным карандашом указывают вид животного, его номер и дату взятия материала.

Приготовленные гистологические срезы лучше всего окра­шивать гематоксилин-эозином.

При необходимости сохранения ооцист эймериид на дли­тельное время используют 5%-ный раствор формалина, 0,1%-ный раствор калия двухромовокислого, жидкость Барбагалло (3%-ный раствор формалина на изотоническом растворе натрия хло­рида).

Дата добавления: 2015-09-03 | Просмотры: 787 | Нарушение авторских прав