Тема: Токсикологический анализ при отравлениях алкалоидами
Цель занятия: Изучить методы определения алкалоидов.
Методы определения алкалоидов. Исследование на алкалоиды основано на реакции осаждения их и образовании солей алкалоидов с кислотами. Некоторые алкалоиды образуют осадки, растворимые в избытке реактива. Для выделения алкалоидов из растений и патологического материала пользуются растворимостью кислых и виннокислых солей алкалоидов в 90° спирте, подкисленном винной кислотой.
Реактивы: 1 5%-ный водный раствор танина.
2 1%-ный водный раствор пикриновой кислоты.
3 5%-нын водный раствор сулемы (HgCb).
4 Раствор Люголя.
5 Реактив Мейера.
6 Реактив Драгендорфа.
7 Реактив Фреде.
8 Реактив Марки.
9 Реактив Менделина.
10 Реактив Эрдмана
Извлечение алкалоидов. В колбу помещают 10 г сухих растений, превращенных в мелкий порошок, и смешивают с 1%-ным раствором уксусной кислоты (можно с, 1%-ным раствором винной или щавелевой и другими слабыми кислотами). Смешивание производят из расчета 1: 10, т. е. одна часть растения и 10 частей кислоты. Колбу помещают в кипящую водяную баню и нагревают до кипения, периодически 'взбалтывая. После водяной бани охлаждают, взбалтывая в течение 15 минут, фильтруют через складчатый фильтр. В полученном фильтрате определяют наличие алкалоидов следующим образом.
На часовое стекло наносят каплю фильтрата и рядом каплю (меньшую по размеру) реактива на алкалоиды. Капли смешивают стеклянной палочкой. Для этой цели требуются 3—4 реактива, так как многие алкалоиды по-разному относятся к алкалоидным реактивам. Поэтому берут несколько часовых стекол, т. е. столько, сколько имеется реактивов. При наличии алкалоидов на часовом стекле после смешивания фильтрата с реактивом обра зуется осадок или муть разной окраски и консистенции. При отсутствии осадка или мути, что имеет значение как фактор, исключающий наличие алкалоидов, смесь реактива с извлечением остается прозрачной.
Определение алкалоидов при помощи индикаторной бумаги (по В. М. Серову). Метод основан на окрашивании индикаторной бумаги при наличии алкалоидов.
Реактивы. 1 2%-ный водный раствор йодида калия.
2 10%-ный водный раствор платннохлористоводородой ки-
слоты.
3 Полоски хроматографической или фильтровальной бумаги, размером 3X7 см, пропитанные до половины смесью реактивов № 1 и № 2. Пропитывание производят смесью растворов: 1 мл йодида калия + 0,1 мл раствора платинохлористоводородной кислоты. Смесь платинохлористоводородной кислоты с йодидом калия нестойка, тогда как пропитанная и высушенная хроматографическая бумага сохраняет свою активность в течение месяца в склянке из темного стекла.
При исследовании окрашенную часть полоски индикаторной бумаги разделяют простым карандашом на четыре равные части: на первой части пишут цифру 1, на второй —3 и далее 5 и 15. Указанные цифры соответствуют количеству капель исследуемой вытяжки, наносимой на указанный участок. На чистом конце хроматографической бумаги пишут номер экспертизы, дату и объект исследования. Исследуемую вытяжку каплями с интервалами во времени (очередная капля наносится после испарения предыдущей) наносят на определенный участок индикаторной бумаги. При наличии алкалоидов на красном фоне индикаторной бумаги появляются цветные пятна. Если содержание алкалоидов велико, то цветИИ пятно появляется после нанесения первой капли исследуемой хлороформенной вытяжки.
При сомнительных данных индикаторную бумагу следует отмывать дистиллированной водой в течение 2— 5 минут. Если алкалоид образовал красное пятно, которое было слабо видно на общем красном фоне, то красный цвет индикаторной бумаги исчезнет, а окрашенное красное пятно йодплатината алкалоида останется на белом фоне индикаторной бумаги. Чувствительность этого метода в пределах 1: 10 000—1: 100 000.
Идентификация алкалоидов методом хроматографии. Метод хроматографии основан на различии коэффициентов распределения исследуемых веществ между двумя несмешивающимися жидкими фазами. Неподвижной фазой является вода ИИвляяафии ческой бумаги, а для подвижной фазы применяется Н-бутиловый спирт. Вместо Н-бутилового спирта можно применять пропиловый спирт, толуол, ацетон, бензол.
Реактивы. 1 Полоски.хроматографической или фильтровальной бумаги размером 20X40 см.
2 Н-бутиловый спирт: 40 мл спирта + 60 мл 5%-ного раствора уксусной кислоты или 100 мл спирта + 50 мл 20%-ного раствора ледяной уксус ной кислоты.
3 Реактив Драгендорфа; приготовляют два раствора: раствор А — 0,85 г основного нитрата висмута растворяют в 50 мл 25%-ного раствора уксусной кислоты; раствор Б —8 г йодистого калия растворяют в 20 мл дистиллированной воды.
Рабочий раствор готовят перед употреблением, для этого берут 120 мл 25%-ного раствора уксусной кислоты и в него добавляют 5 мл раствора А и 5 мл раствора Б.
Исследование проводят следующим образом. Хлоро форменной вытяжке, давшей положительную групповую реакцию на алкалоиды по индикаторной бумаге (стр. 182), -дают самоиспариться до густоты сиропа. Затем при помощи микропипетки 0,02 мл сиропа наносят на хрома-тографическую бумагу и оставляют до полного высыхания. Линия нанесения исследуемой вытяжки должна быть с интервалами 2—2,5 см, от нижнего края хроматографической бумаги — на расстоянии 5—6 см и от бокового края —2 см. Как только исследуемый раствор высохнет, хроматографическую бумагу помещают в сосуд вертикально, так, чтобы нижний край ее касался реактива № 2, который предварительно помещен в этот сосуд. Образовавшиеся пятна на бумаге после высыхания исследуемой вытяжки должны находиться от уровня реактива № 2 на расстоянии 3 см.
После закрепления хроматографической бумаги в сосуде реактив № 2 начнет подниматься по ней вверх, увлекая за собой соли алкалоидов. Скорость продвижения солей алкалоидов по хроматографической бумаге различна, в результате чего происходит перераспределение алкалоидов. Как только линия продвижения реактива № 2 достигнет высоты 30—40 см (для чего потребуется от 12 до 48 часов), каждый алкалоид будет занимать подходящую для данного исследования высоту на хроматографической бумаге. После этого хроматографическую бумагу извлекают из сосуда, отмечают простым карандашом линию, которой достиг реактив № 2, и высушивают в потоке горячего воздуха. Высушенную бумагу предварительно исследуют в ультрафиолетовых лучах, выдерживают в парах йода или обрабатывают реактивом № 3. При этом пятна различной окраски (красные, оранжевые, бледно-оранжевые и др.), образовавшиеся на бумаге, обводят простым карандашом и сравнивают с хроматограммами, полученными в аналогичных условиях из ядовитых растений. Сравнение пятен производят с учетом окраски и места нахождения их на бумаге (расстояние от нижней границы реактива № 2). При сравнении делают заключение о наличии того или иного алкалоида.
Определение никотина биологическим методом. Лягушке вводят под кожу препарат никотина (яд различных видов табака), помещают се под стеклянный колпак и наблюдают постепенное развитие угнетения центральной нервной системы, которое обусловливает лягушке характерное (никотинное) положение. При сидячем положении передние ноги прижаты к животу, в то же время задние конечности располагаются под прямым углом к позвоночнику, голени судорожно подогнуты к бедрам. Если голени оттянуть, они вновь примут прежнее положение. При этом наблюдается ригидность передних лап.
Контрольные вопросы:
1 Извлечение алкалоидов?
2 Определение алкалоидов при помощи индикаторной бумаги?
3 Идентификация алкалоидов методом хроматографии?
4 Определение алкалоидов никотина биологическим методом?
Дата добавления: 2015-02-06 | Просмотры: 1622 | Нарушение авторских прав
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 | 22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 | 29 | 30 | 31 | 32 | 33 | 34 | 35 | 36 | 37 | 38 | 39 | 40 | 41 | 42 | 43 | 44 | 45 | 46 | 47 | 48 |
|