АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология
|
Дифференцировка лимфоцитов на кластеры дифференциации
По поверхностным CD-маркерам
Изучение лимфоцитов начинается с их выделения из крови. Мононуклеарные лейкоциты (лимфоциты, моноциты) отделяют от других клеток крови (гранулоцитов и эритроцитов) центрифугированием в градиенте плотности специальной смеси препаратов (фиккол, верографин). Имеющие большую плотность эритроциты и гранулоциты образуют осадок на дне пробирки, а мононуклеарные клетки образуют кольцо на поверхности градиентной смеси, откуда могут быть перенесены в отдельную пробирку и отмыты от градиентной смеси. Дифференцировка популяций и субпопуляций лимфоцитов связана с выявлением поверхностных CD-маркеров – антигенов (табл. 19) с помощью соответствующих специфических антител. Суть метода заключается в связывании дифференцировочных антигенов (поверхностных CD-маркеров) лимфоцитов с моноклональными антителами и дальнейшим их окрашиванием антиглобулиновыми антителами, меченными флюрохромом (метод непрямой иммунофлюоресценции). Затем происходит подсчет меченых клеток.
Таблица 19
Количественное содержание лимфоцитов крови здоровых людей
Популяция/субпопуляция
| CD-маркер
| Относительное количествоклеток, %
| Абсолютное количество клеток, 109/л
| Лимфоциты (всего)
|
|
| 1,50-2,40
| Естественные киллеры
|
| 6-20
| 0,10-0,60
| Т-лимфоциты (всего)
|
| 55-80
| 0,80-2,20
| Т-хелперы
|
| 31-51
| 0,60-1,60
| (Т-киллеры, цитотоксические клетки)
|
| 19-37
| 0,30-0,80
| В-лимфоциты
|
| 5-19
| 0,10-0,50
| NK-клетки
|
| 6-26
7-31
| 0,09-0,6
| Определение количества лимфоцитов разных популяций (субпопуляций) по поверхностным маркерам проводится с помощью двух методик:
· Люминесцентной или световой микроскопии мазков крови или взвеси мононуклеаров, обработанных соответствующими моноклональными антителами, меченными флюорохромом или ферментом (для одного образца занимает неделю);
· Автоматического подсчета клеток с использованием проточного цитофлюориметра (для одного образца занимает несколько часов).
В крови у взрослых содержание Т-лимфоцитов (CD3+-клетки) обычно составляет 1,1-1,7·109/л (56-78%). Повышенное их количество свидетельствует о гиперреактивности иммунитета, что также наблюдается при острых и хронических лимфолейкозах. Снижение абсолютного числа Т-лимфоцитов говорит о недостаточности клеточного иммунитета, что довольно часто встречается при воспалениях разнообразной этиологии. Повышение числа Т-лимфоцитов в динамике заболевания – клинически благоприятный признак. Полное завершение болезни обычно сопровождается и нормализацией количества Т-лимфоцитов.
Увеличение абсолютного числа CD4+-клеток (Т-лимфоциты-хелперы) свидетельствует о стимуляции иммунной системы каким-либо антигеном и служит подтверждением гиперреактивных синдромов. Снижение числа Т-хелперов говорит о гипореактивном синдроме с нарушением регуляторного звена иммунитета. Особенно наглядно это определяется при ВИЧ-инфекции. Повышение количества CD8+-клеток (цитотоксических Т-лимфоцитов) определяется практически при всех вирусных, бактериальных, протозойных инфекциях. Относительное увеличение CD8+-клеток обычно обусловлено уменьшением числа Т-хелперов, хотя такую закономерность наблюдают не всегда. Уменьшение количества цитотоксических Т-лимфоцитов служит подтверждением недостаточности клеточно-эффекторного звена иммунитета, что особенно важно при лечении хронических вирусных заболеваний (вирусных гепатитов, герпеса и др.).
Снижение количества NK-клеток – признак клеточно-эффекторного иммунодефицита, обусловленного онкологическими заболеваниями и тяжелыми вирусными инфекциями, приемом иммунодепрессантов. Увеличение количества NK-клеток связано с активацией антитрансплантационного иммунитета, т.е. является признаком клеточно-опосредованной цитотоксичности.
В настоящее время типируются и другие маркеры, их сейчас насчитывается около 250 разновидностей. Особенно это важно в онкогематологии для уточнения диагноза.
Анализ функциональной активности Т- и В-лимфоцитов
1. Функциональную полноценность Т-лимфоцитов косвенно оценивают с помощью кожно-аллергической пробы, отражающей интенсивность реакций ГЗТ в отношении наиболее микробных антигенов (стрептококковых, туберкулина, дифтерийного анатоксина). Антиген вводят внутрикожно и через 48 часов измеряют диаметр инфильтрата – уплотнения, отражающий интенсивность реакции ГЗТ.
2. Для количественной оценки пролиферации Т- и В-лимфоцитов в ответ на распознавание конкретного антигена оценивают пролиферативную активность клеток в реакции бласттрансформации лимфоцитов. Взвесь лимфоцитов обрабатывают поликлональным митогеном (Т-лимфоциты – препаратом из растений семейства Бобовые, В-лимфоциты – компонентами клеток бактерий), инкубируют и добавляют 3Н-тимидин. Через 2-3 суток инкубации измеряют включенную клетками радиоактивность (3Н-тимидин включается в ДНК клеток при их активной пролиферации).
3. Функции Т-лимфоцитов оценивают по их способности продуцировать цитокины. Для этого после активации культуры Т-лимфоцитов определяют типы цитокинов и их количество в культуральной среде. Количество цитокинов определяют по их биологической активности или выявляют как антигены с помощью специфических моноклональных антител (МКАТ) и иммуноферментного анализа (ИФА).
4. Функции В-лимфоцитов косвенно оценивают по уровням иммуноглобулинов и изогемагглютининов в сыворотке крови.
5. Реакция торможения миграции лейкоцитов. В основе метода лежит способность лимфоцитов после повторного контакта с антигеном, к которому они ранее были сенсибилизированы, продуцировать различные лимфокины, в том числе влияющие на миграцию индикаторных клеток (гранулоцитов, моноцитов, макрофагов). Реакцию торможения миграции лейкоцитов (РТМЛ) ставят в капиллярах или под слоем агарозы. Проводят инкубацию лейкоцитов крови в присутствии и в отсутствие причинного микробного агента, после чего измеряют зоны миграции (в %) в присутствии антигена по сравнению с контролем (принятым за 100%). В случае выявления сенсибилизации к антигену наблюдается торможение миграции лейкоцитов (индекс ниже 100%).
Дата добавления: 2015-01-12 | Просмотры: 1493 | Нарушение авторских прав
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 | 22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 | 29 | 30 | 31 | 32 | 33 | 34 | 35 |
|