АкушерствоАнатомияАнестезиологияВакцинопрофилактикаВалеологияВетеринарияГигиенаЗаболеванияИммунологияКардиологияНеврологияНефрологияОнкологияОториноларингологияОфтальмологияПаразитологияПедиатрияПервая помощьПсихиатрияПульмонологияРеанимацияРевматологияСтоматологияТерапияТоксикологияТравматологияУрологияФармакологияФармацевтикаФизиотерапияФтизиатрияХирургияЭндокринологияЭпидемиология
|
ПРОМИСЛОВЕ ВИРОБНИЦТВО БАР 13 КУЛЬТУРИ КЛІТИН РОСЛИН
В основі промислового виробництва БАР із культури клітин рослин лежить ряд послідовних стадій і операцій: одержання високопродуктивних продуцентів, розробка найбільш сприятливих умов культивування продуцента БАР із максимальним
біосинтезом цієї речовини, добір і впровадження в практику відповідних методів виділення та очищення БАР, створення готових препаратів і контроль якості. Робота на кожному з цих етапів має проводитися кваліфікованими фахівцями (технологами, біотех-нологами, генетиками).
9.2.1. ПІДГОТОВКА СЕРЕДОВИЩА
ДЛЯ КУЛЬТИВУВАННЯ ПРОДУЦЕНТА
I ПОСІВНОГО МАТЕРІАЛУ (ПЕРША СТАДІЯ)
Підготовка середовища. Для кожного продуцента БАР, для кожного наново утвореного калусу і суспензійної культури рослин розробляється своє оптимальне середовище, яке повинне задовольняти основним вимогам: а) забезпечувати добрий ріст біомаси і максимально утворювати БАР (алкалоїди, глікозиди, полісахариди, терпеноїди та ін.); б) містити доступні за вартістю компоненти; в) забезпечувати застосування найбільш економічних і ефективних способів виділення та очищення БАР.
Середовище для культивування'. Компоненти середовища для вирощування калусних і суспензійних культур можна розділити на шість груп, що звичайно відображає порядок готування концентрованих вихідних розчинів:
1) основні поживні речовини (макроелементи);
2) мікроелементи;
3) джерела заліза;
4) органічні добавки (вітаміни);
5) джерела вуглецю;
6) регулятори росту рослин.
Хімічний склад деяких живильних середовищ наведено в табл. 9.4—9.6.
Середовища Мурасіге—Скуга (MC) і Шенка—Хільдебранд-та (ПІХ) належать до найбільш використовуваних у роботі з культурами клітин рослин і виявилися ефективними для росту різних одно- і дводольних рослин. Ix вважають середовищами з високим вмістом солей (у порівнянні з низькосольовим середовищем Уай-та). Середовище ШХ від інших середовищ відрізняється дуже високим, десятикратним вмістом мезоінозиту. Середовища MC і ШХ містять залізо в хелатній формі в комплексі з етилендіамідтетраа-цетатом (ЕДТА). Це забезпечує його доступність при pH до 8,0 протягом усього періоду росту культури, тоді як за відсутності характеристичного агента нестача може виникнути дуже швидко.
У реактор із мішалкою за допомогою вакууму вносять по черзі приготовлені розчини, дотримуючись такої черговості:
— розчин макросолей;
— агаризований розчин;
Таблиця 9.4 Середовище Мурасіге—Скуга
Компоненти
| Молярність у середовищі
| Концентрація вихідного розчину, мг/мл
| Основні неорганічні поживні речовини
| NH4N03
| 2,06 -102
| 33 000
| KNOg
| 1,88 -102
| 38 000
| СаС12 • 2Н20
| 3,00 -103
|
| MgS04 • 7Н20
| 1,50-103
|
| КН2Р04
| 1,25-10а
|
| Джерела мікроелементів
| КІ
| 5,00-10-6
|
| н3во3
| 1,00*10"*
|
| MnS04 • 4Н20
| 9,99-Ю"5
|
| ZnS04 • 7Н20
| 2,99» 10"5
|
| Na2Mo04 • 2Н20
| 1,00 «10-6
|
| CuS04 • 5Н20
| 1,00 *10г7
|
| СоСІ • 6Н20
| 1,00 -Ю-7
|
| Джерела заліза
| FeS04 • 7Н20
| 1,00-Ю-4
|
| Иа2ЕДТА • 2Н20
| i,oo*io-*
|
| Органічні речовини
| Мезоінозит
| 4,90-10-4
| 20 000
| Нікотинова кислота
| 4,66 -10-6
|
| Піридоксин • НС1
| 2,40-10-4
|
| Тіамін • НС1
| 3,00-Ю-7
|
| Гліцин
| 3,00-Ю-8
|
| Джерела вуглецю
| Сахароза
| 8,80-Ю"2
| додавати у вигляді порошку (ЗО г/л)
| — розчин феруму хелату;
— розчин мікроелементів;
— розчин кальцію нітрату;
— розчин цукру.
Суміш ретельно перемішують протягом 15 хв, потім 1—2 хв проводять вертикальне перемішування барботуванням при вклю-
Таблиця 9.5 Модифіковане середовище Шенка—Хільдебрандта (pH = 6,7)
Таблиця 9.6
Склад інших середовищ, широко використовуваних для культивування клітин рослин
Компоненти
| Молярність у середовищі
| Концентрація вихідного розчину, мг/мл
| Основні неорганічні речовини
| KNOg • 7Н20
| 2,5 -НГ2
| 101 000
| MgS04 • 7Н20
| 1,5 -ІО-3
| 24 640
| NH4H2P04
| 2,5-!О"3
| 14 680
| Мікроелементи
| MnS04 • 4Н20
| 5,9 • НГ5
|
| н3во3
| 1,3-НГ4
|
| ZnS04 • 7Н20
| 3,5 -КГ6
|
| КІ
| 6,0 • НГ6
|
| CuS04 • 5Н20
| 8,0-НГ7
|
| Na2Mo04 • 2Н20
| 4,1-10-7
|
| СоС12 • 6Н20
| 4,2 -ІО"7
|
| Джерела заліза
| FeS04 • 7Н20
| 5,4 • 10"5
|
| Na2EflTA
| 5,4-Ю-5
|
| Органічні речовини
| Тіамін • НС1
| 1,5-Ю-5
|
| Нікотинова кислота
| 4,1-КГ5
|
| Піридоксин • НС1
| 2,4-ІО"6
|
| Мезоінозит
| 5,6-Ю"3
| —
| Джерело вуглецю
| Сахароза
| 8,8-10-2
| —
| ченій мішалці. Обов'язково відбирають контрольні проби для визначення pH середовища (pH має бути в межах 5,6—6,2, температура розчину 152±2,5 °С).
Стерилізація живильних середовищ у промислових умовах здійснюється двома основними методами: періодичним і безперервним.
Періодичний метод стерилізації. Застосовують під час використання невеликих об'ємів середовища. Він полягає в тому, що середовище, нагріте до певної температури (120—125 °С) безпосе-
Компоненти
| Концентрація в середовищі для культивування, мг/мл
|
Середовище Уайта
| Середовище ШХ
| Середовище 135
| Середовище Хеллера
| Середовище Лисмайє-ра—Скута
| Ca(N03)2
|
| —
| —
| —
| —
| KN03
|
|
|
| —
|
| NaNO3
| —
| —
| —
| —
|
| NH4N03
| —
| —
| —
| —
| —
| NH4H2P04
| —
|
| —
| —
| —
| MgS04 • 7Н20
|
|
|
|
|
| СаС12 • 2H20
| —
|
|
|
|
| KC1
|
| —
| —
|
| —
| КН2Р04
|
| —
| —
| —
|
| NaH2P04
| —
| —
|
|
| —
| MnS04 • H20
| —
|
|
| —
| —
| MnS04 • 4Н20
| —
| —
| —
| 0,1
| 22,3
| КІ
| —
|
| 0,75
| 0,01
| 0,83
| н3во3
| —
|
|
|
| 6,2
| ZnS04 • 7H20
| —
|
|
|
| 8,6
| CuS04
| —
| 0,2
| 0,025
| —
| —
| CuS04 • 5H20
| —
| —
| —
| 0,03
| 0,025
| Na2Mo04 • 2H20
| —
| 0,1
| 0,25
| —
| 0,25
| СоС12 • 6Н20
| —
| —
| —
| —
| 0,025
| АЇСід
| —
| —
| —
| 0,03
| —
| FeCl2 • 6Н20
| —
| —
| —
|
| —
| Fe2(S04)3
| 2,46
| —
| —
| —
| —
| Na2EATA
| —
|
| —
| —
| 37,26
| Мезоінозит
| —
|
|
| —
|
| Тіамін • НС1
| —
|
|
| —
| 0,4
| Нікотинова кислота
| —
|
|
| —
| —
| Піродоксин • НС1
| —
| 0,5
|
| —
| —
| Дріжджовий екстракт
|
| —
| —
| —
| —
| Сахароза
| 20 000
| ЗО 000
| 20 000
| —
| ЗО 000
| рН
|
| 5,9
| 5,5
|
| 5,8
|
редньо у ферментаторах або в спеціальних парових стерилізаторах ГПСД-1700, витримується при цій температурі протягом 30— 60 хв (залежно від об'єму середовища або від його складу), після чого охолоджується до 27—30 °С.
Безперервний метод стерилізації доцільно застосовувати при використанні великих об'ємів середовища. Приготовлене середовище зі спеціальної посудини за допомогою насоса подається в стерилізаційну колону, через яку пропускається гостра пара (тиск пари близько 5 атм). Пара подається зверху по внутрішній трубі, яка має щілиноподібні прорізи, завдяки чому пара надходить у середовище і швидко його нагріває. Середовище в колону подається знизу і рухається по спіралі навколо внутрішньої труби.
Нагріте в колоні до необхідної для стерилізації температури (близько 125 °С) середовище надходить у спеціальний аппарат — видержувач, де воно витримується при температурі 120—125 °С. Час витримування залежить від складу середовища (5—10 хв.) 3 видержувача стерильне середовище надходить у змійовиковий холодильник. Тут воно охолоджується до 30—35 °С (на виході) і надходить у ферментатор. Безперервний метод стерилізації має багато переваг перед періодичним методом: можливість автоматичного регулювання процесу, швидке і рівномірне нагрівання середовища, забезпечення більш повної стерильності середовища та інші чинники.
Підготовка посівного матеріалу — одна з відповідальних операцій у циклі біологічного методу одержання БАР із культури тканин.
Культуру тканини (колекцію культури) заводу отримують з академій і університетів. Кожна культура має паспорт із докладним описом морфології, фізіології, характеристики середовища для культивування і збереження.
Для твердофазного методу культуру тканини вирощують на агаризованому стерильному живильному середовищі в колбах місткістю 0,25 л у термостатованому приміщенні або термостаті з температурою 27±1 °С. Через 38—46 діб росту тканину материнської культури ріжуть таким чином, щоб інокулюм складався із вертикального стовпа (верхній шар, середній і частина нижнього шару безагаризованого середовища). Не можна допускати дій на культуру деззасобів, бактерицидних ламп, тому що це призводить до інактивації росту. 3 однієї материнської культури пересаджують 7—9 дочірніх культур і через 38—46 діб росту в термостатованому приміщенні відбирають колби з культурами тканин кращих ростових ознак. Для таких культур характерні швидкий ріст, максимальне використання поживного середовища, колір тканини від ясно-жовтого до молочного, відсутність некротичних включень.
Для глибинного (суспензійного) методу культуру тканини попередньо вирощують на агаризованому стерильному середовищі в пробірці, потім із пробірок висівають у колби з рідким живильним середовищем і проводять дві генерації глибинного вирощування на качалках протягом 38—46 діб для кожної генерації. 3 другої генерації культури (у колбі) проводять висівання у невеликий (10 л) інокулятор, а потім культуру, яка добре розвивається, переносять в основний ферментатор. Для засівання в основному ферментаторі використовують від 5 до 10 об'ємних відсотків посівного матеріалу (інокуляту).
9.2.2. БІОСИНТЕЗ БАР (ДРУГА СТАДІЯ)
Стадія біосинтезу — основна біологічна стадія процесу одержання БАР із культури тканин.
Завдання цієї стадії — забезпечення для продуцента БАР таких умов розвитку, які б сприяли максимальному рівню біосинтезу БАР. Ефективність стадії біосинтезу залежить від рівня утворення БАР із культури тканини і визначається генетичними особливостями організму, складом живильного середовища, режимом розвитку продуцента. Вона також залежить від часу максимального утворення БАР, вартості компонентів середовища, пі-ногасників і енергетичних витрат, пов'язаних із процесом розвитку організму — продуцента БАР.
Нині виробництво БАР із культури тканин здійснюють двома способами ферментації: культивуванням на поверхні твердого середовища (твердофазна ферментація) і зануреним глибинним культивуванням (суспензійне).
Розвиток організму — продуцента БАР у ферментаторах. Процес розвитку організму—продуцента БАР у ферментаторах проходить за умови суворого контролю всіх стадій, дуже точного виконання розробленого регламенту умов нагромадження БАР. Велика увага приділяється підтримці заданої температури культивування, активної кислотності середовища pH, ступеня аерації і швидкості роботи мішалки. 3 огляду на споживання організмом основних поживних компонентів субстрату (джерела вуглеводу, азоту, калію, магнію, фосфору, амінокислот, вітамінів) контролюється утворення БАР.
Особливу увагу під час розвитку продуцента у ферментаторах звертають на процес піногасіння. При продуванні повітря через організм — продуцент БАР часто відбувається густе піноутворен-ня, що суттєво порушує проходження всього процесу розвитку штаму — продуцента БАР у ферментаторі. Основна причина появи великої кількості піни — висока в'язкість живильного середовища, обумовлена сильним нагромадженням біомаси.
Для боротьби з піною у ферментаторах при одержанні біомаси використовують різні поверхнево-активні речовини: рослинні олії (соєву, соняшникову), мінеральні масла (вазелінове, парафінове), спирти і жирні кислоти. Нерідко як піногасники використовують спеціальні синтезовані речовини (силікони, діазобуталкарбоміл та інші сполуки).
Вирощування тканини проводять протягом 70 діб. У цей період здійснюють мікробіологічний, біохімічний і візуальний контроль. Візуальний контроль проводять не рідше одного разу в 10 днів — відбраковують інфіковані тканини.
9.2.3. ПОПЕРЕДНЯ ОБРОБКА БІОМАСИ (ТРЕТЯ СТАДІЯ)
У процесі розвитку організму — продуцента БАР ці речовини майже повністю виділяються з клітин у навколишнє середовище. Однак у деяких випадках лише частина БАР виділяється в культуральне середовище, а інша частина зберігається усередині клітин. У деяких продуцентах БАР вони майже повністю містяться в клітинах організму.
Залежно від того, де антибіотична речовина зосереджена, застосовують відповідні методи її екстракції.
При твердофазному способі культивування з колби місткістю 0,25 л із добре вирощеної культурної тканини спочатку знімають сиру біомасу, потім сушать біомасу на листах при температурі 58±2 °С. Час сушіння біомаси залежить:
— від початкової вологості біомаси;
— товщини шару біомаси;
— температури сушіння.
Закінчення процесу сушіння визначають на дотик. Не повинно бути м'яких вологих грудок. Суха маса повинна мати забарвлення від жовтого до коричневого кольору, має бути пухкою, легко розсипатися при продавлюванні між пальцями. Залишкова вологість біомаси після висушування — не більше 12 %. Потім суху біомасу подають на стадію виділення та очищення БАР з аналітичним паспортом на вміст БАР.
При глибинному культивуванні, якщо БАР знаходиться в куль-туральній рідині, її виділяють методами екстракції розчинниками, які не змішуються з рідкою фазою, або осаджують у вигляді нерозчинної сполуки, або сорбують іонообмінними смолами.
Виділення БАР із клітин організму-продуцента здійснюють за допомогою екстракції органічними розчинниками. Якщо БАР містяться в культуральній рідині та в клітинах продуцента, первинною операцією їх виділення є переведення у фазу, з якої найбільш доцільно їх ізолювати. Для цього БАР, яка міститься в куль-
туральній рідині і в клітинах продуцента, переводять в осад, а потім її екстрагують.
Відділення нативного розчину від біомаси і завислих частинок проводять методами фільтрації або центрифугування.
Для процесу фільтрації використовують різні фільтрувальні апарати: фільтрпрес, нутч-, друк-фільтри, центрифуги, сепаратори.
Фільтрпреси використовують для обробки великих об'ємів культуральної рідини. Ці апарати складаються із плит і рам, що чергуються, і фільтрувальних перегородок між ними. Процес фільтрації здійснюється під тиском. Для фільтрації невеликих об'ємів культуральної рідини звичайно використовують нутч-, друк-фільтри. Перший апарат працює під вакуумом, другий — в умовах підвищеного тиску над рідиною, що фільтрується.
Для одержання рідини, звільненої від завислих частинок, найбільшого поширення набув метод центрифугування. Хороші результати досягаються при правильному виборі швидкості подачі рідини (кращий варіант — 15 000 об/хв).
Відділення міцелію або інших завислих частинок може також відбуватися в сепараторах. При швидкості обертання барабана, яка дорівнює 7000—7500 об/хв, завдяки відцентровій силі тверді частинки спрямовуються до стінок барабану, де й осаджуються, а відсепарована рідина спрямовується до центра барабана і піднімається в спеціальні камери.
9.2.4. ВИДІЛЕННЯ ТА ОЧИЩЕННЯ БАР (ЧЕТВЕРТА СТАДІЯ)
У процесі утворення БАР у біомасі (твердофазний спосіб культивування) і в культуральній рідині (глибинний спосіб культивування) разом із різними невикористаними компонентами середовища виділяються і різноманітні продукти обміну, продукти автолізу клітин. Видалення домішок — перша і дуже важлива стадія хімічного очищення БАР.
Стадія виділення і хімічного очищення включає низку процесів: від обробки нативного розчину до висушування готового очищеного препарату. На цій стадії, залежно від властивостей БАР, їх хімічної будови і місця основного накопичення застосовують різні методи виділення та очищення. Як основні методи застосовують екстракцію в системах рідина—рідина, екстракцію осадження, сорбцію на різних сорбційних матеріалах, мембранні методи очищення, кристалізацію, упарювання, висушування.
Однією з особливостей стадії виділення і очищення є те, що під час виділення БАР доводиться працювати з дуже невисокими концентраціями речовин, що виділяються, (не перевищують 2 %).
Наприкінці стадії очищення вже мають справу з більш високими концентраціями БАР, які досягають 20—30 %.
Мета очищення — витягування БАР із нативної рідини або з клітин продуцента, їх концентрування і звільнення (власне очищення) від супутніх домішок і нарешті одержання добре очищеного препарату, придатного для відповідного застосування.
БАР рослинного походження у деяких випадках під дією жорстких зовнішніх чинників (підвищеної температури, високої кислотності або лужності і т. ін.) втрачають свої властивості; інактиву-ються. Тому їх виділення та очищення необхідно проводити дуже обережно.
9.2.5. ОДЕРЖАННЯ ГОТОВОЇ ПРОДУКЦІЇ (П'ЯТА СТАДІЯ)
Відомо, що до БАР біотехнологічного походження, що використовуються у медичній практиці, висувають дуже високі вимоги:
— високий ступінь очищення;
— фармакологічна активність;
— стерильність.
Тому на цій стадії роботи, а також під час хімічного очищення препарату необхідно дотримуватися високого ступеня чистоти: підтримувати у надзвичайній чистоті не тільки використане обладнання, але й приміщення, де проходить біосинтез.
Після виділення і хімічного очищення БАР її необхідно висушити — видалити з препарату вільну і зв'язану воду. Оскільки деякі БАР, отримані за цією технологією, у тому або іншому ступені термолабільні, для їх висушування необхідно застосовувати методи, які не призведуть до втрати біологічної активності і не змінять кольору препарату. На сучасному етапі одержання БАР застосовують різні методи зневоднювання препарату. Крім звичайних методів сушіння, широкого поширення набуло ліофільне висушування БАР, що проводиться при порівняно низьких температурах (від -8 до -12 °С).
Прогресивним методом при роботі з великою кількістю розчину, що містить БАР, є висушування із застосуванням розпилювальних сушарок. Розчин БАР пневматично розпилюється до дрібних крапель у камері потоком нагрітого повітря. Процес висушування БАР проходить протягом кількох секунд. При цьому навіть термолабільні речовини не змінюють своїх властивостей.
Фасування порошків проводять в основному в посудини, виготовлені із оранжевого скла.
Готовий порошок піддається ретельному аналітичному, біологічному і фармакологічному контролю.
Дата добавления: 2016-03-26 | Просмотры: 769 | Нарушение авторских прав
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 | 22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 | 29 | 30 | 31 | 32 | 33 | 34 | 35 | 36 | 37 | 38 | 39 | 40 | 41 | 42 | 43 | 44 | 45 | 46 | 47 | 48 | 49 | 50 | 51 | 52 | 53 | 54 | 55 | 56 | 57 | 58 | 59 | 60 | 61 | 62 | 63 | 64 | 65 | 66 | 67 | 68 | 69 | 70 | 71 | 72 | 73 | 74 | 75 | 76 | 77 | 78 | 79 | 80 | 81 | 82 | 83 | 84 | 85 | 86 | 87 | 88 | 89 | 90 | 91 | 92 | 93 | 94 | 95 | 96 | 97 | 98 | 99 | 100 | 101 | 102 | 103 | 104 |
|